張曉音 張珊珊 吳 旻 吉昱斌 黃羽盛 鄭 鑫
(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,長春130118)
β-胡蘿卜素對脂多糖刺激巨噬細(xì)胞RAW264.7炎癥因子的影響及其機制①
張曉音 張珊珊 吳 旻 吉昱斌 黃羽盛 鄭 鑫
(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,長春130118)
目的:探討β-胡蘿卜素對脂多糖(LPS)刺激巨噬細(xì)胞RAW264.7炎癥因子的影響及其機制。方法:采用5 μg/ml 的LPS刺激巨噬細(xì)胞24 h后用不同濃度的β-胡蘿卜素(20、40、80、160 μmol/L)處理細(xì)胞3 h,MTT法測細(xì)胞活性,熒光定量PCR測炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α mRNA相對表達(dá)量,ELISA測炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α的分泌量,Western blot測NF-κB p65蛋白相對表達(dá)量。5 μg/ml的LPS和不同濃度的NF-κB抑制劑PDTC(1、5、10 μg/ml)共同處理巨噬細(xì)胞24 h,Western blot測NF-κB p65蛋白相對表達(dá)量,熒光定量PCR、ELISA測炎癥因子的表達(dá)和分泌。比較LPS+PDTC組和LPS+PDTC+β-胡蘿卜素組炎癥因子和NF-κB p65蛋白相對表達(dá)的變化。結(jié)果:與LPS組相比,不同濃度的β-胡蘿卜素對LPS刺激的巨噬細(xì)胞的細(xì)胞活性有提升作用,對炎癥因子和NF-κB p65蛋白的表達(dá)有抑制作用;抑制NF-κB蛋白的表達(dá)可以抑制LPS刺激的巨噬細(xì)胞炎癥因子的分泌; LPS+PDTC+β-胡蘿卜素組對炎癥因子的抑制作用比LPS+PDTC組明顯,且差異顯著(P<0.05),但兩組對NF-κB p65蛋白的表達(dá)不明顯。結(jié)論:β-胡蘿卜素可以通過抑制NF-κB通路中NF-κB p65蛋白的表達(dá)抑制LPS刺激的巨噬細(xì)胞炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α的分泌,且此通路不是唯一相關(guān)的通路。
β-胡蘿卜素;RAW264.7細(xì)胞;炎癥因子;NF-κB p65蛋白
炎癥是由激活的巨噬細(xì)胞釋放一系列炎癥因子所產(chǎn)生的以防御為主的一種免疫反應(yīng)[1],炎癥因子的持續(xù)刺激會導(dǎo)致慢性炎癥的發(fā)生,與風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、哮喘、動脈粥樣硬化等疾病的產(chǎn)生密切相關(guān)[2,3]。類固醇和非類固醇藥物是傳統(tǒng)的抗炎藥物,被廣泛使用,但其對胃腸道、腎臟、中樞神經(jīng)系統(tǒng)等存在極大的副作用[4],因此,尋求一種新型、高效、毒副作用小的抗炎藥物對慢性炎癥干預(yù)具有重要意義。β-胡蘿卜素是具有共軛多烯雙鍵結(jié)構(gòu)的天然色素之一,具有抗氧化、抗癌、促進細(xì)胞間隙連接通訊等多種生物活性,在延緩機體衰老、預(yù)防疾病、提高機體免疫力等方面中發(fā)揮重要作用[5,6],現(xiàn)已被157個國家列入食品添加劑與飼料添加劑名錄。關(guān)于β-胡蘿卜素的研究大多基于其是維生素A的前體,在炎癥方面鮮有報道,本試驗擬通過細(xì)胞炎癥模型來研究β-胡蘿卜素對炎癥反應(yīng)的作用。
巨噬細(xì)胞是參與炎癥反應(yīng)的主要細(xì)胞之一,在脂多糖的刺激下,可誘導(dǎo)分泌IL-1β、IL-6、TNF-α等多種炎癥因子,進而出現(xiàn)臨床炎癥反應(yīng)[7],而分泌的這些炎癥因子是檢測炎癥嚴(yán)重程度的量化指標(biāo)[8]。所以,本試驗以LPS誘導(dǎo)RAW264.7巨噬細(xì)胞建立炎癥模型,研究β-胡蘿卜素對其炎癥因子分泌的影響及其作用機制,為β-胡蘿卜素的使用以及炎癥的治療提供理論基礎(chǔ)。
1.1材料
1.1.1細(xì)胞株 巨噬細(xì)胞RAW264.7購自武漢大學(xué)中國細(xì)胞典藏中心。
1.1.2主要試劑 β-胡蘿卜素(武漢星辰生物);RPMI1640培養(yǎng)基、胎牛血清(美國Gibco公司);LPS、MTT(美國Sigma公司);PDTC(上海碧云天);RNA Lyzol(上海ExCell公司);cDNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(美國Gene Copoeia 公司);Brilliant Ⅱ SYBR Green QPCR Master Mix(美國 Agilent Technologies);引物(上海生工生物);RIPA裂解液(北京Solarbio);ELISA試劑盒(上海朗頓);BCA法蛋白定量試劑盒(上海申能博采);NF-κB抗體、β-actin抗體(美國CST);HRP標(biāo)記的羊抗鼠/兔抗體(天津三箭);ECL試劑盒(美國Millipore)。
1.1.3主要儀器 高速冷凍離心機(德國Sigma);Thermo酶標(biāo)儀(上海賽默飛世爾) ;熒光定量PCR儀、凝膠成像儀(美國Bio-Rad)。
1.2方法
1.2.1RAW264.7細(xì)胞培養(yǎng) 用含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基(含青霉素100 U/ml,鏈霉素100 μg/ml)于5% CO2、37℃ 培養(yǎng)箱中培養(yǎng),1~2 d換液1次。待細(xì)胞生長至80%~90%時,根據(jù)不同的試驗?zāi)康?,接種于96孔細(xì)胞板或6孔細(xì)胞板中繼續(xù)培養(yǎng)。
1.2.2MTT法檢測β-胡蘿卜素對RAW264.7細(xì)胞活性的影響 取對數(shù)生長期的細(xì)胞以8×104個/ml的密度接種于96孔細(xì)胞板中,每孔100 μl,置于5% CO2、37℃ 培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。待細(xì)胞貼壁后,加入終濃度為0、20、40、80、160 μmol/L的β-胡蘿卜素(DMSO的最終質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.5%),每組8個復(fù)孔,培養(yǎng)3、6、12 h后分別棄去培養(yǎng)液,然后每孔加入0.5 mg/ml的MTT溶液100 μl,培養(yǎng)4 h后終止培養(yǎng)。最后,每孔加入100 μl DMSO,置于搖床上低速震蕩10 min,在酶標(biāo)儀490 nm處測量其吸光值,計算不同濃度的β-胡蘿卜素組相對于空白組的細(xì)胞活性。
1.2.3熒光定量PCR、ELISA檢測β-胡蘿卜素、PDTC對LPS刺激RAW264.7細(xì)胞炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α的影響 按照1.2.2中接種96孔細(xì)胞板的方法以細(xì)胞濃度為2×106個/ml接種RAW264.7細(xì)胞于6孔細(xì)胞板中,每孔2 ml,細(xì)胞貼壁后用5 μg/ml的LPS刺激細(xì)胞24 h,棄掉培養(yǎng)液后加入20、40、80、160 μmol/L的β-胡蘿卜素繼續(xù)培養(yǎng)3 h,或者5 μg/ml的LPS和1、5、10 μg/ml NF-κB抑制劑PDTC共同處理RAW264.7細(xì)胞24 h。①根據(jù)RNA Lyzol說明書提取細(xì)胞RNA,樣品在-80℃保存,并取部分樣品測RNA的質(zhì)量,OD260/OD280在1.8~2.0之間,可用于下一步試驗。然后按照cDNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒的步驟將RNA轉(zhuǎn)錄為cDNA。最后熒光定量PCR,采用20 μl的反應(yīng)體系,Master Mix 10 μl、上下游引物各0.5 μl、cDNA模板2 μl、染料1 μl 、ddH2O 6 μl,按照95℃ 預(yù)變性 5 min,95℃ 變性10 s,60℃ 退火75 s,40個循環(huán)進行PCR反應(yīng),每次試驗均設(shè)置18s作為內(nèi)參。用2-ΔΔCt法計算炎性因子的相對表達(dá)量,引物序列表如表1所示[9]。②根據(jù)ELISA說明書,3 000 r/min、4℃離心20 min,用無菌管收集細(xì)胞上清,嚴(yán)格按照試劑盒步驟操作,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,分別計算各組IL-1β、IL-6、TNF-α的含量(ng/L)。
表1 熒光定量PCR引物序列表
1.2.4Western blot法檢測PDTC、β-胡蘿卜素對LPS刺激RAW264.7細(xì)胞NF-κB p65蛋白表達(dá)的影響 取六孔細(xì)胞板中處理后的RAW264.7,預(yù)冷的PBS洗滌2次,加入含蛋白酶抑制劑的RIPA裂解液,在冰上裂解后用細(xì)胞刮輕輕刮下,12 000 r/min、4℃ 離心5 min,取上清液,BCA法測蛋白濃度。取30 μg總蛋白進行SDS-PAGE電泳,電轉(zhuǎn)印至PVDF 膜上,用3% 的BSA封閉3 h,一抗為鼠源的NF-κB p65抗體(1∶1 000),兔源的β-actin抗體(1∶5 000),4℃孵育過夜。1×TBST洗膜后分別加入相應(yīng)的二抗:HRP標(biāo)記的山羊抗鼠IgG(1∶2 000)和HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1∶3 000),37℃ 孵育1 h。1×TBST洗膜后,感光,ECL顯色,用密度比值表示目的蛋白量。
2.1β-胡蘿卜素對RAW264.7細(xì)胞活性的影響 如圖1所示,β-胡蘿卜素作用RAW264.7細(xì)胞3 h,可以提升細(xì)胞活性,且在濃度為20、40、80 μmol/L時,差異極顯著(P<0.01);β-胡蘿卜素作用RAW264.7細(xì)胞6 h,濃度為160 μmol/L時,極顯著降低細(xì)胞活性(P<0.01);β-胡蘿卜素作用RAW264.7細(xì)胞12 h,濃度為80、160 μmol/L時,極顯著降低細(xì)胞活性(P<0.01),所以,選取不同濃度的β-胡蘿卜素作用細(xì)胞3 h作為本試驗的作用時間,在此濃度和時間范圍內(nèi),β-胡蘿卜素對細(xì)胞無明顯毒性,可作為試驗用安全濃度范圍。
圖1 不同濃度的β-胡蘿卜素作用不同的時間對RAW 264.7細(xì)胞活性的影響Fig.1 Different concentration and different time of β-carotene on cell viability of RAW264.7 cellsNote:Compared with the control group(0 μmol/L),*.P<0.05,**.P<0.01.
LPS可以激活巨噬細(xì)胞,如圖2所示,5 μg/ml的LPS刺激RAW264.7細(xì)胞24 h,細(xì)胞活性略有上升,繼續(xù)用不同濃度的β-胡蘿卜素處理細(xì)胞3 h,細(xì)胞活性隨著β-胡蘿卜素濃度的升高而升高,有劑量依賴效應(yīng)。由圖2可知,β-胡蘿卜素對LPS刺激后的巨噬細(xì)胞有增殖作用,基于細(xì)胞活性方面,此細(xì)胞模型建模成功,對細(xì)胞沒有毒性。
2.2β-胡蘿卜素對LPS刺激RAW264.7細(xì)胞炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α的影響 LPS可激活巨噬細(xì)胞,誘導(dǎo)其分泌一系列的炎癥因子,炎癥因子的分泌是評價炎癥嚴(yán)重程度的一個量化指標(biāo),如圖3A所示,LPS誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α mRNA的表達(dá),用不同濃度的β-胡蘿卜素處理細(xì)胞后,炎癥因子mRNA相對表達(dá)量降低,且差異極顯著(P<0.01);如圖3B所示,LPS刺激巨噬細(xì)胞炎癥因子的分泌,不同濃度的β-胡蘿卜素可降低其分泌量,提示β-胡蘿卜素對炎癥因子的表達(dá)和分泌有一定的抑制作用。
2.3β-胡蘿卜素對LPS刺激RAW264.7細(xì)胞NF-κB p65蛋白表達(dá)的影響 NF-κB通路是炎癥通路中重要的通路之一,如圖4所示,用不同濃度的β-胡蘿卜素處理LPS刺激后的巨噬細(xì)胞,NF-κB p65蛋白表達(dá)量隨β-胡蘿卜素濃度的升高而降低,說明,β-胡蘿卜素在一定程度上可以抑制NF-κB p65蛋白的表達(dá)。但LPS組與對照組比,NF-κB p65蛋白表達(dá)基本沒變化,可能是細(xì)胞處理24 h,在長期饑餓狀態(tài)下,對照組中NF-κB通路已被激活。激活的NF-κB可結(jié)合到編碼炎癥因子基因啟動子區(qū)域的特定序列,進而產(chǎn)生對應(yīng)的炎癥因子[1],所以,根據(jù)圖3、4推測,β-胡蘿卜素對炎癥因子的抑制作用可能是通過抑制NF-κB p65蛋白的表達(dá)來實現(xiàn)的。
圖2 不同濃度的β-胡蘿卜素對LPS刺激的RAW264.7細(xì)胞活性的影響Fig.2 Different concentration of β-carotene on cell viability of LPS-induced RAW264.7 cellsNote:Compared with the LPS group,**.P<0.01.
2.4β-胡蘿卜素對LPS刺激RAW264.7細(xì)胞炎癥因子影響的分子機制 PDTC是常用的一種NF-κB抑制劑,能特異性的抑制NF-κB的活化,如圖5所示,不同濃度的PDTC與LPS共同作用細(xì)胞24 h,與LPS組相比,可顯著降低NF-κB p65蛋白的表達(dá),驗證了其抑制NF-κB活化的作用,且在濃度為10 μg/ml時,抑制效果最好。
PDTC可以抑制NF-κB p65的表達(dá),如圖6A、B所示,與LPS共同作用后,也可以抑制炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α mRNA相對表達(dá)和分泌,說明,通過抑制NF-κB p65的表達(dá)可以抑制炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α mRNA相對表達(dá)和分泌,因此,結(jié)合圖3、4的結(jié)果,β-胡蘿卜素可以通過抑制NF-κB p65蛋白的表達(dá)來抑制炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α的分泌,β-胡蘿卜素對炎癥因子的抑制作用與NF-κB通路有關(guān)。
圖3 β-胡蘿卜素對LPS刺激RAW264.7炎癥因子的影響Fig.3 Different concentration of β-carotene on inflamma-tory factors of LPS-induced RAW264.7 cellsNote:A.The effects of β-carotene on the mRNA relative expression of inflammatory factors in LPS-induced RAW264.7 cells;B.The effects of β-carotene on the secretion capacity of inflammatory factors in LPS-induced RAW264.7 cells.Compared with the LPS group,*.P<0.05,**.P<0.01.
如圖7A、B所示,80 μmol/L的β-胡蘿卜素、10 μg/ml的PDTC以及兩者共同作用,均可以抑制LPS引起的炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α mRNA的表達(dá)和分泌。對比LPS+PDTC組和LPS+PDTC+β-胡蘿卜素組發(fā)現(xiàn),后者對炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α的抑制作用更明顯,而且,如圖8所示,這兩組的NF-κB p65蛋白表達(dá)差異不顯著,這可能是β-胡蘿卜素的抑制作用還與其他通路有關(guān),LPS+PDTC組和LPS+β-胡蘿卜素組的差異趨勢也驗證了這一點。
圖4 β-胡蘿卜素對LPS刺激RAW264.7細(xì)胞NF-κB p65蛋白表達(dá)的影響Fig.4 Different concentration of β-carotene on protein NF-κB p65 of LPS-induced RAW264.7 cellsNote: Compared with the LPS group,*.P<0.05,**.P<0.01.
圖5 PDTC對LPS刺激RAW264.7細(xì)胞NF-κB p65蛋白表達(dá)的影響Fig.5 Effect of different concentration of PDTC on prot-ein NF-κB p65 of LPS-induced RAW264.7 cellsNote: Compared with the LPS group,*.P<0.05,**.P<0.01.
圖6 PDTC對LPS刺激RAW264.7炎癥因子的影響Fig.6 Different concentration of PDTC on inflammatory factors of LPS-induced RAW264.7 cellsNote: A.The effects of PDTC on the mRNA relative expression of inflammatory factors in LPS-induced RAW264.7 cells;B.The effects of PDTC on the secretion capacity of inflammatory factors in LPS-induced RAW264.7 cells.Compared with the LPS group,*.P<0.05,**.P<0.01.
圖8 PDTC、β-胡蘿卜素對LPS刺激RAW264.7NF-κB p65蛋白比較圖Fig.8 Different concentration of PDTC and β-carotene on protein NF-κB p65 of LPS-induced RAW264.7 cellsNote: Compared with LPS group,*.P<0.05,**.P<0.01.
圖7 PDTC、β-胡蘿卜素對LPS刺激RAW264.7炎癥因子的影響Fig.7 Different concentration of PDTC and β-carotene on inflammatory factors of LPS-induced RAW2 64.7 cellsNote:A.The effects of PDTC and β-carotene on the mRNA relative expression of inflammatory factors in LPS-induced RAW264.7 cells;B.The effects of PDTC and β-carotene on the secretion capacity of inflammatory factors in LPS-induced RAW264.7 cells.Compared with the LPS group,*.P<0.05,**.P<0.01,compared with the LPS+PDTC group,#.P<0.05,##.P<0.01.
炎癥是機體保護自身并消除有害刺激的過程,一般是有利的,分為急性炎癥和慢性炎癥,炎癥因子的持續(xù)刺激是導(dǎo)致慢性炎癥的主要原因,如高濃度的炎癥因子會誘導(dǎo)免疫細(xì)胞攻擊自身組織,嚴(yán)重的與糖尿病、風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、哮喘等疾病的產(chǎn)生密切相關(guān),所以炎癥也是抗損傷和損傷的統(tǒng)一過程[10]。巨噬細(xì)胞在病原微生物引起的炎癥中發(fā)揮重要作用,LPS即可活化巨噬細(xì)胞并誘導(dǎo)其分泌多種促炎因子[11],最終會導(dǎo)致嚴(yán)重的組織損傷以及系統(tǒng)并發(fā)癥[12]。
炎癥因子的分泌是檢測炎癥嚴(yán)重程度的量化指標(biāo),本試驗以IL-1β、IL-6、TNF-α這三種炎癥因子作為檢測指標(biāo)。TNF-α、IL-1β是炎癥介質(zhì)級聯(lián)反應(yīng)的始發(fā)因子[13],其中TNF-α是調(diào)節(jié)免疫細(xì)胞中重要的促炎細(xì)胞因子,通過產(chǎn)生IL-1β、IL-6誘導(dǎo)機體發(fā)熱、細(xì)胞凋亡等,進而誘導(dǎo)炎癥的發(fā)生,TNF-α含量的異常與多種疾病的發(fā)生密切相關(guān)。IL-6是調(diào)節(jié)免疫、炎癥反應(yīng)等生理過程的多功能細(xì)胞因子,其表達(dá)受LPS和IL-1β的正向調(diào)節(jié)[14]。本試驗中,5 μg/ml的LPS刺激巨噬細(xì)胞后,IL-1β、IL-6、TNF-α的mRNA相對表達(dá)量明顯升高,即細(xì)胞已經(jīng)處于炎癥的一個嚴(yán)重程度,當(dāng)用不同濃度的β-胡蘿卜素處理后,這些炎癥因子開始降低,說明β-胡蘿卜素可以減輕LPS刺激的巨噬細(xì)胞引起的炎癥反應(yīng)。
NF-κB通路在炎癥反應(yīng)中發(fā)揮重要作用,正常狀態(tài)下,NF-κB以同二聚體或異二聚體存在胞質(zhì)中,其p65亞基和抑制蛋白IκB結(jié)合,在受到外界刺激如LPS時,其抑制蛋白IκB發(fā)生磷酸化并降解,誘導(dǎo)p65亞基轉(zhuǎn)位至細(xì)胞核,與靶基因啟動子上的結(jié)合原件結(jié)合,誘導(dǎo)炎癥相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄[15,16]。本試驗中,LPS刺激的巨噬細(xì)胞用不同濃度的β-胡蘿卜素處理后,NF-κB p65蛋白的表達(dá)劑量依賴性降低,這可能是β-胡蘿卜素抑制炎癥因子的原因。
NF-κB抑制劑PDTC主要抑制NF-κB的活化,在本試驗中,不同濃度的PDTC可以抑制炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α的mRNA相對表達(dá)和分泌,已有研究證實,IL-1β、IL-6、TNF-α基因的啟動子均存在NF-κB的結(jié)合位點,其表達(dá)受NF-κB活性的調(diào)控[17,18]。說明通過抑制NF-κB p65的表達(dá)的確可以抑制炎癥因子的分泌,間接說明,β-胡蘿卜素可以通過抑制NF-κB p65的表達(dá)從而抑制LPS刺激的巨噬細(xì)胞炎癥因子的分泌。
機體中炎癥信號通路受到多種復(fù)雜機制的調(diào)節(jié),NF-κB通路只是重要的經(jīng)典通路之一,大量的研究發(fā)現(xiàn),LPS刺激的巨噬細(xì)胞可以激活MAPKs家族,巨噬細(xì)胞通過不同的MAPKs途徑調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)[19]。本試驗中,LPS刺激的巨噬細(xì)胞,在PDTC、β-胡蘿卜素共同作用組和PDTC組,這兩組的NF-κB p65蛋白的表達(dá)基本無差異的情況下,共同作用組炎癥因子的表達(dá)和分泌較PDTC組顯著降低,說明,β-胡蘿卜素可能也通過其他的通路來抑制炎癥因子的分泌。
綜上所述,β-胡蘿卜素可以抑制LPS刺激的巨噬細(xì)胞RAW264.7炎癥因子的分泌,此抑制作用是通過抑制NF-κB p65蛋白的表達(dá)來實現(xiàn)的,與NF-κB通路有關(guān),且此通路不是β-胡蘿卜素抑制炎癥因子的唯一通路。
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[收稿2016-05-27 修回2016-07-20]
(編輯 許四平)
Effectsandmechanismofβ-caroteneoninflammatoryfactorsinLPS-inducedRAW264.7cells
ZHANGXiao-Yin,ZHANGShan-Shan,WUMin,JIYu-Bin,HUANGYu-Sheng,ZHENGXin.CollegeofAnimalScienceandTechnology,JilinAgriculturalUniversity,Changchun130118,China
Objective:To investigate the effects and mechanism of β-carotene on inflammatory factors(IL-1β,IL-6,TNF-α) in LPS-induced RAW264.7 cells.Methods:Firstly,RAW264.7 cells of being induced by 4(5 μg/ml)for 24 h were treated with different concentration of β-carotene(20,40,80,160 μmol/L)for 3 h.The cells viability was measured by MTT,the mRNA relative expression of IL-1β,IL-6,TNF-α was detected by fluorescence quantitative PCR,the secretion capacity of IL-1β,IL-6,TNF-α was detected by ELISA and the protein relative expression of NF-κB p65 protein was measured by Western blot.Secondly,RAW264.7 cells were induced by LPS(5 μg/ml) and different concentration of PDTC(1,5,10 μg/ml)for 24 h,NF-κB p65 protein was measured by Western blot and inflammatory factors were detected by fluorescence quantitative PCR and ELISA.Finally,compared the changes in the relative expression of inflammatory factors and NF-κB p65 protein between LPS+PDTC group and LPS+PDTC+β-carotene group.Results:Compared with the LPS-induced group,β-carotene could increase the cell viability of LPS-induced RAW264.7 cells and inhibied the relative expression of inflammatory factors and NF-κB p65 protein.Inhibited the relative expression of NF-κB p65 protein could reduce the relative expression of inflammatory factors.Compared with the LPS+PDTC group,LPS+PDTC+β-carotene group could inhibit the relative expression of inflammatory factors significantly(P<0.05).But,there was little difference about the relative expression of NF-κB p65 protein between this two groups.Conclusion:β-carotene inhibits the relative expression of inflammatory factors(IL-1β,IL-6,TNF-α) in LPS-induced RAW264.7 cells through inhibition of NF-κB p65 protein in NF-κB pathway,this pathway isn′t unique.
β-carotene;RAW264.7 cell;Inflammatory factor;NF-κB p65 protein
10.3969/j.issn.1000-484X.2017.06.007
①本文為吉林省科技廳科技成果轉(zhuǎn)化促進計劃(20150307021NY)。
張曉音(1991年-),女,在讀碩士,主要從事細(xì)胞免疫與動物育種方面的研究,E-mail:951770634@qq.com。
及指導(dǎo)教師:鄭 鑫(1965年-),女,博士,教授,主要從事細(xì)胞免疫與動物營養(yǎng)方面的研究,E-mail: zhengxinjilin@126.com。
S828
A
1000-484X(2017)06-0838-06