趙二川,李紅梅,任智晶,何宇晴,王明珠,葉震旋,周雯婧,張 華△
(1.貴州醫(yī)科大學(xué)臨檢教研室,貴陽 550004;2.貴州省人民醫(yī)院檢驗(yàn)科,貴陽 550002;3.貴陽護(hù)理職業(yè)學(xué)院檢驗(yàn)系,貴陽 550081)
CD4+T細(xì)胞中IL-18激活的NF-κB信號通路與PBC發(fā)病機(jī)制的相關(guān)性研究*
趙二川1,李紅梅2,任智晶2,何宇晴2,王明珠3,葉震旋2,周雯婧2,張 華2△
(1.貴州醫(yī)科大學(xué)臨檢教研室,貴陽 550004;2.貴州省人民醫(yī)院檢驗(yàn)科,貴陽 550002;3.貴陽護(hù)理職業(yè)學(xué)院檢驗(yàn)系,貴陽 550081)
目的 探討白細(xì)胞介素(IL)-18及其活化的CD4+T細(xì)胞中核轉(zhuǎn)錄因子kappa B(NF-κB)信號通路與原發(fā)性膽汁性肝硬化(PBC)發(fā)病機(jī)制的相關(guān)性。方法 采用熒光定量PCR、酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)、流式細(xì)胞術(shù)、免疫磁珠分選及細(xì)胞培養(yǎng)、Western bolt等方法,分別檢測貴州省人民醫(yī)院32例PBC患者(PBC組)及32名健康人(健康對照組)外周血單個(gè)核細(xì)胞IL-18 mRNA、血漿IL-18、CD4+T細(xì)胞表面IL-18Rα、CD4+T細(xì)胞增殖率及其NF-κB信號通路中IκBα及NF-κB p65蛋白。結(jié)果 PBC組血漿中IL-18水平明顯高于健康對照組(P<0.05);PBC組IL-18 mRNA的相對表達(dá)量較健康對照組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。PBC組表達(dá)IL-18R的CD4+T細(xì)胞百分率高于健康對照組(P<0.05)。經(jīng)IL-18刺激PBC組CD4+T細(xì)胞增殖率明顯高于健康對照組(P<0.01)。給予IL-18刺激后,各組中IκBα蛋白相對表達(dá)量相均有所下降、NF-κB p65蛋白相對表達(dá)量均有所上調(diào),且PBC組更加明顯(P<0.01)。結(jié)論 IL-18通過激活CD4+T細(xì)胞中NF-κB信號通路參與PBC的發(fā)病。
肝硬化,膽汁性;T淋巴細(xì)胞;抗原,CD4;白細(xì)胞介素18;原發(fā)性膽汁性肝硬化;NF-κB信號通路
原發(fā)性膽汁性肝硬化(primary biliary cirrhosis,PBC)是自身免疫性肝病(autoimmune liver diseases,AILD)中最常見的一種,以肝臟門脈周圍淋巴細(xì)胞浸潤、膽管上皮細(xì)胞特異性損傷及血清中出現(xiàn)高滴度抗線粒體抗體(anti-mitochondrial antibody,AMA)為特征。其病因及發(fā)病機(jī)制尚不完全清楚,可能與遺傳易感性及環(huán)境等因素有關(guān)[1]。熊去氧膽酸(ursodeoxycholic acid,UDCA)是惟一被美國肝病學(xué)會(huì)、食品藥品監(jiān)督管理局(FDA)批準(zhǔn)的用以治療PBC的藥物,可以延長疾病早期患者的生存期,但仍有約40%的患者對其應(yīng)答欠佳[2],最終需要肝移植。白細(xì)胞介素(IL)-18是一種來源于單核巨噬細(xì)胞的細(xì)胞因子,為IL-1家族成員,通過與IL-18受體(IL-18R)結(jié)合發(fā)揮其生物學(xué)功能[3],IL-18Rα亞單位在應(yīng)答中起關(guān)鍵作用。研究表明,IL-18參與系統(tǒng)性紅斑狼瘡、類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、原發(fā)性干燥綜合征等自身免疫病的發(fā)病,但I(xiàn)L-18與PBC發(fā)病機(jī)制的研究國內(nèi)尚鮮見報(bào)道[4-5]。IL-18在體內(nèi)可激活多條細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,核轉(zhuǎn)錄因子kappa B(NF-κB)信號通路就是其中之一。NF-κB信號通路被報(bào)道證實(shí)與多種自身免疫病的發(fā)病機(jī)制相關(guān),但其是否與PBC的發(fā)病機(jī)制有關(guān)聯(lián)目前暫未見報(bào)道。本課題擬通過檢測PBC患者外周血IL-18相關(guān)指標(biāo),并通過檢測IL-18刺激PBC患者CD4+T細(xì)胞的增殖變化及NF-κB信號通路的激活狀態(tài),探討IL-18介導(dǎo)的免疫炎癥反應(yīng)及其相關(guān)NF-κB信號通路在PBC發(fā)病中的作用。
1.1 一般資料 選擇2014年11月至2016年3月貴州省人民醫(yī)院門診及住院PBC患者32例為PBC組,其中男9例,女23例,符合美國肝病學(xué)會(huì)(AASLD)于2009年推薦的診斷標(biāo)準(zhǔn)[6]。選擇2014年11月至2016年3月期間該院體檢健康人32例為健康對照組,其中男8例,女24例。年齡、性別與PBC組相匹配。排除標(biāo)準(zhǔn):肝內(nèi)外局灶性病變或梗阻,原發(fā)性硬化性膽管炎(PSC)或自身免疫性肝炎(AIH),病毒性、酒精性、藥物性或妊娠相關(guān)性肝病,合并其他自身免疫性、系統(tǒng)性疾病致肝臟受累等疾病。所有患者均知情同意。
1.2 材料與試劑 逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及Tiangen SYBR GreenⅠ染料試劑盒購自北京天根公司;PCR引物由上海生工合成;Anti-Human CD4-FITC購自美國BD公司;IL-18Rα及IgG1κ抗體購自eBsicence公司;IL-18 酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)試劑盒購自聯(lián)科生物技術(shù)有限公司;抗人CD4T細(xì)胞磁珠、磁珠分選(MACS)分選柱及緩沖液購自德國Miltenyi Biotec公司;胎牛血清及IL-18重組蛋白購自美國Gibco公司;細(xì)胞培養(yǎng)試劑盒(CCK-8) 購自日本Dojindo公司細(xì)胞,核蛋白/漿蛋白抽提試劑盒購自上海生物工程公司;Tubulin抗體購自江蘇碧云天公司;兔抗人多克隆IkBa蛋白抗體及鼠抗人NF-κB p65單克隆抗體購自美國Santa Cruz公司。
1.3 方法
1.3.1 收集外周血血漿及單個(gè)核細(xì)胞 取患者乙二胺四乙酸(EDTA)抗凝外周血2 mL,3 500 r/min離心5 min,每管500 μL,收集兩管離心分離的血漿;其余全血采用人外周血淋巴細(xì)胞分離液,并用Ficoll法分離外周血單個(gè)核細(xì)胞(PBMC)。
1.3.2 熒光定量PCR檢測IL-18 mRNA相對表達(dá)量 采用Trizol法提取細(xì)胞RNA,紫外分光光度計(jì)檢測其純度及濃度,取1 μg逆轉(zhuǎn)錄為cDNA進(jìn)行PCR反應(yīng)。根據(jù)GeneBank中人IL-18序列(Gene ID:3606)設(shè)計(jì)引物,IL-18(153 bp):上游引物5′-TCA AGA CCA GCC TGA CCA ACA T-3′;下游引物5′-GCT CAC CAC AAC CTC TAC CTC C-3′。以β-actin作為內(nèi)參,β-actin(185 bp):上游引物5′-GCC AAC ACA GTG CTG TCT-3′;下游引物5′-CAC ATC TGC TGG AAG GTG-3′。采用SYBR Green染料,通過2-ΔΔCT法分析IL-18 mRNA相對表達(dá)量。每個(gè)樣本做3個(gè)復(fù)孔,擴(kuò)增條件:95 ℃ 15 min;95 ℃ 10 s,60 ℃ 30 s,40 cycle。
1.3.3 流式細(xì)胞術(shù)檢測IL-18R 每份標(biāo)本設(shè)置同型對照管和檢測管,均加入乙二胺四乙酸二鉀(EDTA-K2)抗凝外周靜脈血50.0 μL;兩管同時(shí)加入CD4-FITC抗體5.0 μL,漩渦混合器充分混勻,室溫避光孵育15 min;兩管同時(shí)加入紅細(xì)胞裂解液1 000.0 μL,充分混勻,室溫避光孵育10 min,至全血透亮;兩管均加入磷酸鹽緩沖液(PBS)1 000.0 μL,充分混勻,1 000 r/min離心5 min,棄去上清液,重復(fù)本次操作1次。檢測管加入IL-18Rα抗體5.0 μL,同型對照管加入IgG1κ抗體2.5 μL,充分混勻,室溫避光孵育15 min。兩管均加入PBS 1 mL,充分混勻,1 000 r/min離心5 min,棄去上清液,重復(fù)本次操作1次。棄去上清液,加入PBS 2 mL,充分混勻,上機(jī)檢測。
1.3.4 ELISA法檢測血漿IL-18 嚴(yán)格按照IL-18 ELISA試劑盒說明書進(jìn)行檢測,酶標(biāo)儀450 nm/630 nm波長測定光密度(OD)值。
1.3.5 CD4+T細(xì)胞分選、培養(yǎng)及增殖試驗(yàn) 分離出PBMC后,利用人工磁性分選方法及抗人CD4+T細(xì)胞磁珠進(jìn)一步分選出人外周血CD4+T細(xì)胞,并通過流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞分選純度。以細(xì)胞數(shù)1×105/孔接種于96孔板,每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔,每孔100 μL。設(shè)置空白組:不含細(xì)胞的RPMI 1640培養(yǎng)液+PHA(5.00 μg/mL)+IL-2(0.01 μg/mL);對照組:含有細(xì)胞的RPMI 1640培養(yǎng)液+PHA(5.00 μg/mL)+IL-2(0.01 μg/mL);試驗(yàn)組:含有細(xì)胞的RPMI 1640培養(yǎng)液+PHA(5.00 μg/mL)+IL-2(0.01 μg/mL)+IL-18(100 ng/mL)進(jìn)行細(xì)胞增殖,試驗(yàn)組在加入IL-18前,37 ℃,5%CO2預(yù)培養(yǎng)1 d;加入IL-18后,37 ℃,5%CO2培養(yǎng)3 d;其余組相同條件下培養(yǎng)4 d,加入CCK-8試劑孵育4 h后用酶標(biāo)儀檢測各組OD值。
1.3.6 Western blot檢測 按上1.3.5所示進(jìn)行分組細(xì)胞培養(yǎng),試驗(yàn)組在加入IL-18前,37 ℃,5%CO2預(yù)培養(yǎng)1 d;試驗(yàn)組加入IL-18后,37 ℃,5%CO2培養(yǎng)30 min,收集各組細(xì)胞。以核蛋白/漿蛋白抽提試劑盒分別提取細(xì)胞胞質(zhì)蛋白及細(xì)胞核蛋白,以二喹啉甲酸法(BCA)蛋白濃度測定試劑盒(增強(qiáng)型)檢測蛋白濃度,每個(gè)樣本選取等量蛋白(35 μg),依次進(jìn)行電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉、抗體孵育等步驟,最終利用電化學(xué)發(fā)光(ECL)發(fā)光液顯色,采用Image J軟件對圖像進(jìn)行分析,檢測IκBα和NF-κB p65蛋白表達(dá)情況。
2.1 IL-18及IL-18 mRNA的檢測結(jié)果 PBC組血漿中IL-18的水平明顯高于健康對照組(P<0.05);PBC組IL-18 mRNA的相對表達(dá)量較健康對照組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見圖1A~B。
2.2 CD4+T細(xì)胞純度及百分率并行細(xì)胞計(jì)數(shù)的結(jié)果 PBC組表達(dá)IL-18Rα的CD4+T細(xì)胞百分率高于健康對照組(P<0.05,圖1C)。經(jīng)流式細(xì)胞術(shù)檢測,可以看出經(jīng)磁珠分選后的細(xì)胞純度高且分選完全(圖2)。經(jīng)磁珠分選后細(xì)胞計(jì)數(shù),1 mL全血中CD4+T細(xì)胞計(jì)數(shù),PBC組中的CD4+T細(xì)胞量與健康對照組相比明顯升高(P<0.05),見圖1D。
A:兩組血漿中IL-18表達(dá)水平;B:兩組PBMC中IL-18 mRNA的表達(dá)情況;C:表達(dá)IL-18Rα的CD4+T細(xì)胞百分率;D:磁珠分選后,1 mL全血中CD4+T細(xì)胞計(jì)數(shù)。
圖1 兩組IL-18和CD4+細(xì)胞檢測結(jié)果
A:磁珠分選前PBMC中CD4+T細(xì)胞百分?jǐn)?shù);B:磁珠分選后細(xì)胞濾液中CD4+T細(xì)胞百分?jǐn)?shù);C:磁珠分選CD4+T細(xì)胞純度。
圖2 流式細(xì)胞術(shù)檢測結(jié)果
A:IL-18刺激前PBC組CD4+T 細(xì)胞;B:IL-18刺激后PBC組CD4+T 細(xì)胞。
圖3 鏡下IL-18刺激前后CD4+T細(xì)胞的增殖(×200)
2.3 CD4+T細(xì)胞增殖率 磁珠分選并培養(yǎng)CD4+T細(xì)胞,經(jīng)IL-18刺激后PBC組CD4+T細(xì)胞均被刺激增殖,PBC組增殖率明顯高于健康對照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見表1、圖3。
2.4 Western blot檢測IκBα、NF-κB p65蛋白表達(dá)水平 未給予IL-18刺激時(shí),PBC組IκBα蛋白表達(dá)量明顯低于健康對照組,NF-κB p65蛋白表達(dá)量明顯高于健康對照組(P<0.01)。給予IL-18刺激后,各組中IκBα蛋白相對表達(dá)量相均有所下降、NF-κB p65蛋白相對表達(dá)量均有所上調(diào),且PBC組更加明顯(P<0.01),見表2,圖4。
表1 IL-18對CD4+T細(xì)胞增殖的影響
IL-18(-):未經(jīng)IL-18刺激;IL-18(+):經(jīng)IL-18刺激后;a:P<0.01,與健康對照組比較。
表2 各組蛋白經(jīng)IL-18刺激前后表達(dá)相對灰度值
IL-18(-):未經(jīng)IL-18刺激;IL-18(+):經(jīng)IL-18刺激后;a:P<0.05,與健康對照組比較。
圖4 兩組Western blot條帶
PBC是一種以肝內(nèi)小膽管漸進(jìn)性破壞導(dǎo)致慢性膽汁淤積、匯管區(qū)炎癥、纖維化并可能導(dǎo)致肝硬化最終發(fā)展為肝衰竭為特征的AID[7]。其可能是環(huán)境因素與遺傳因素相互作用的結(jié)果[1,8]。UDCA作為唯一被美國FDA批準(zhǔn)的用以治療PBC的藥物可以防止門脈高壓、食管靜脈曲張并延遲需要肝移植的時(shí)間[9],對于處于第1或第2階段的患者,經(jīng)UDCA治療,其生存率與年齡相一致的健康者相接近[10],但并非對所有的患者都有效[11],最終需要肝移植。需要指出的是,經(jīng)國內(nèi)外專家取得共識,如經(jīng)早期診斷及規(guī)范化治療,大部分患者不一定會(huì)發(fā)展至肝硬化,然而“肝硬化”的名字會(huì)給患者在工作及生活上帶來較大精神壓力,建議將“原發(fā)性膽汁性肝硬化”更名為“原發(fā)性膽汁性膽管炎”[12]。
本研究分別檢測了PBC組PBMC中IL-18 mRNA相對表達(dá)量、表達(dá)IL-18Rα的CD4+T細(xì)胞百分率及血漿中IL-18水平,結(jié)果顯示其各項(xiàng)指標(biāo)表達(dá)水平較健康對照組均明顯升高,提示IL-18與PBC的發(fā)病相關(guān)且其可能通過CD4+T細(xì)胞介導(dǎo)PBC的發(fā)病。IL-18是1995年發(fā)現(xiàn)的具有誘導(dǎo)干擾素γ(IFN-γ)高水平表達(dá)作用的細(xì)胞因子,其可通過多種途徑促進(jìn)Th1型免疫反應(yīng),如誘導(dǎo)Th1細(xì)胞和NK細(xì)胞產(chǎn)生IFN-γ,與IL-12具有協(xié)同作用,誘導(dǎo)Th1細(xì)胞產(chǎn)生IFN-γ[13-14]。IL-18還可促進(jìn)新生CD4+T細(xì)胞的增殖,并誘導(dǎo)CD4+T細(xì)胞極化為Th1細(xì)胞,進(jìn)一步分泌IFN-γ。研究表明,PBC患者血清中的細(xì)胞因子以Th1細(xì)胞分泌的IL-2、IFN-γ、腫瘤壞死因子α(TNF-α)升高為主,而作為炎性細(xì)胞因子的IFN-γ介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)是PBC肝臟病理損傷的原因之一。而IL-18能誘導(dǎo)CD4+T細(xì)胞增殖、極化為Th1細(xì)胞并分泌IFN-γ。因此,IL-18在增強(qiáng)Th1型免疫應(yīng)答上起著重要調(diào)節(jié)作用。另據(jù)Joshi等[15]的研究,浸潤于肝組織匯管區(qū)的T淋巴細(xì)胞以CD4+T細(xì)胞居多,且原位雜交分析PBC患者匯管區(qū)表達(dá)IFN-γ mRNA明顯增加,并總結(jié)了PBC肝浸潤淋巴細(xì)胞中以Th1為主。而有關(guān)IL-18在PBC中的研究卻很少報(bào)道。Yamano等[16]雖然對PBC患者血清中的IL-18做了相關(guān)研究,本研究結(jié)果與其相符合,但其并沒有深入到基因水平,也沒有對其相關(guān)信號通路進(jìn)行研究,而本研究恰好彌補(bǔ)了這方面的不足,更加全面。IL-18R可表達(dá)于Th1細(xì)胞表面而Th2細(xì)胞不表達(dá),由α、β兩個(gè)亞單位組成。研究報(bào)道,IL-18R的α-亞單位缺失的小鼠不能與IL-18產(chǎn)生反應(yīng),表明受體α-亞單位在應(yīng)答反應(yīng)中起關(guān)鍵作用[17-18]。結(jié)合PBC患者CD4+T細(xì)胞中以Th1型細(xì)胞占主導(dǎo)作用的免疫學(xué)特點(diǎn)及IL-18在T細(xì)胞免疫中的生物學(xué)作用,提示IL-18與CD4+T細(xì)胞表面IL-18Rα結(jié)合,從而發(fā)揮其增殖T細(xì)胞功能并促進(jìn)其極化為Th1細(xì)胞,介導(dǎo)Th1型細(xì)胞免疫,從而攻擊膽管上皮細(xì)胞發(fā)生炎癥壞死,并導(dǎo)致肝內(nèi)膽汁淤積,造成肝臟的病理損傷。
在細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)中,運(yùn)用免疫磁珠分選法對外周血PBMC中的CD4+T細(xì)胞進(jìn)行分離,用流式細(xì)胞術(shù)對分選后的細(xì)胞進(jìn)行純度測定,結(jié)果顯示磁珠分選的細(xì)胞純度高并且分選完全,為后續(xù)實(shí)驗(yàn)奠定基礎(chǔ)。運(yùn)用CCK-8法進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn)時(shí),在未添加IL-2和植物血凝素(PHA)的情況下,細(xì)胞不僅不增殖而且存活率低、病死率高,在細(xì)胞培養(yǎng)基內(nèi)加入PHA及IL-2可有效促進(jìn)細(xì)胞的增殖、分化。使用PHA和IL-2誘導(dǎo)T淋巴細(xì)胞增殖是科研實(shí)驗(yàn)中最常用的免疫學(xué)方法。目前研究表明,IL-2信號轉(zhuǎn)導(dǎo)依靠Janus激酶-信號轉(zhuǎn)導(dǎo)子和轉(zhuǎn)錄激活子(JAK-STAT)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑。IL-2與其受體結(jié)合后,通過活化蛋白酪氨酸激酶JAK1及JAK3激活信號轉(zhuǎn)導(dǎo)及轉(zhuǎn)錄激活因子STAT5,活化的STAT5進(jìn)入細(xì)胞核后可促使細(xì)胞進(jìn)入分裂周期[19]。IL-2信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑與本實(shí)驗(yàn)研究IL-18激活CD4+T細(xì)胞NF-κB信號途徑并不一致,未對本實(shí)驗(yàn)造成干擾。以IL-18重組蛋白對經(jīng)IL-2及PHA作用后的CD4+T細(xì)胞進(jìn)行體外刺激實(shí)驗(yàn),結(jié)果表明,相對于未經(jīng)IL-18刺激而言,PBC組與健康對照組CD4+T細(xì)胞均增殖,提示IL-18可以促進(jìn)CD4+T細(xì)胞的增殖。PBC組增殖更為明顯,且前期實(shí)驗(yàn)證實(shí)PBC患者外周血中表達(dá)IL-18Rα的CD4+T細(xì)胞增多,進(jìn)一步證實(shí)PBC患者外周血中存在大量增殖能力強(qiáng)、對IL-18刺激敏感度高的CD4+T細(xì)胞。
IL-18可以通過NF-κB通路、JAK/STAT通路、C-Jun氨基末端激酶(JNK)通路等多條信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路發(fā)揮其促炎作用。其中NF-κB是機(jī)體內(nèi)重要的核轉(zhuǎn)錄因子,參與多種生理病理過程,由p50和p65兩個(gè)多肽鏈單位組成異源二聚體,其中p65是抑制蛋白IκB的結(jié)合部位,參與轉(zhuǎn)錄的起始調(diào)節(jié)。在細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)中,p65與IκB穩(wěn)定結(jié)合,被外來因素刺激后,IκB磷酸化降解,NF-κB隨即被活化進(jìn)入細(xì)胞核內(nèi)。IκB家族為NF-κB抑制蛋白,IκBα作為IκB家族9個(gè)成員中最為經(jīng)典的成員[20],在NF-κB活化過程中是作用最強(qiáng)的負(fù)反饋因子。靜息狀態(tài)下,其能夠與NF-κB p65穩(wěn)定結(jié)合,接受刺激沖動(dòng)時(shí)能快速活化與之解離,故IκBα是研究NF-κB信號通路激活狀態(tài)的最佳指標(biāo)。因此,本試驗(yàn)選擇與IκB可以穩(wěn)定結(jié)合的NF-κB p65及IκBα作為NF-κB信號通路是否活化的檢測指標(biāo)。對未經(jīng)IL-18刺激的各研究組細(xì)胞質(zhì)蛋白IκBα和核蛋白NF-κB p65進(jìn)行Western blot檢測,結(jié)果顯示PBC組細(xì)胞質(zhì)蛋白IκBα明顯低于健康組、核蛋白NF-κB p65明顯高于健康組,提示PBC患者CD4+T細(xì)胞中NF-κB信號通路處于相對較高的激活狀態(tài)。外源性給予IL-18刺激后,PBC組CD4+T細(xì)胞胞質(zhì)蛋白IκBα表達(dá)進(jìn)一步降低,胞核蛋白NF-κB p65表達(dá)進(jìn)一步增高,證實(shí)在PBC患者CD4+T細(xì)胞中NF-κB信號通路可以被IL-18高度激活。因此,本研究推測在PBC患者體內(nèi),由于IL-18的增高導(dǎo)致CD4+T細(xì)胞中NF-κB信號通路的高度激活,產(chǎn)生大量炎性因子,這些因子共同作用引起肝內(nèi)膽管上皮細(xì)胞的損傷,肝內(nèi)膽汁淤積癥狀逐漸加重,最終引起PBC的發(fā)生。
總的來說,本研究進(jìn)一步證實(shí)了IL-18與PBC發(fā)病的相關(guān)性,并表明其可以通過介導(dǎo)CD4+T細(xì)胞的NF-κB信號通路的激活參與PBC的細(xì)胞免疫炎癥反應(yīng),這提示IL-18的干預(yù)有可能成為PBC有效治療新的靶點(diǎn)。介于其發(fā)病機(jī)制的復(fù)雜性且仍有約1/3患者對UDCA應(yīng)答欠佳而最終需要進(jìn)行肝移植[21],對PBC研究十分必要,有關(guān)其與信號傳導(dǎo)通路及天然免疫的關(guān)系,需進(jìn)一步研究。
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Correlation analysis of NF-κB signaling pathway activated by IL-18 in CD4+T cells and the pathogenesis of PBC*
ZhaoErchuan1,LiHongmei2,RenZhijing2,HeYuqing2,WangMingzhu3,YeZhenxuan2,ZhouWenjing2,Zhanghua2△
(1.ClinicalLaboratory,GuizhouMedicalUniversityGuiyang,Guizhou550004,China;2.DepartmentofMedicalLaboratory,GuizhouProvincialPeople′sHospital,Guiyang,Guizhou550002,China; 3.DepartmentofMedicalLaboratory,GuiyangNursingVocationalCollege,Guiyang,Guizhou550081,China)
Objective To explore the correlation between NF-κB signaling pathways activated by IL-18 in CD4+T cells and the pathogenesis of PBC.Methods We detected the expression of IL-18 mRNA in PBMCs,IL-18 level in plasma,receptor IL-18R on surface of CD4+T cell,proliferation rate of CD4+T cell and its NF-κB signaling pathway protein IκBα and NF-κB p65 by qRT-PCR,ELISA,flow cytometry,MACS and Western blot on 32 cases of patients with PBC (PBC group) and 32 healthy people (control group) in Guizhou provincial people′s hospital.Results The level of IL-18 in PBC group was significantly higher than that in control group (P<0.05). The relative expression of IL-18 mRNA in PBC group was significantly higher than that in control group (P<0.05). The percentage of CD4+T cells expressing IL-18Rα in PBC group was higher than that in control group (P<0.05). The proliferation rate of CD4+T cells stimulated by IL-18 in PBC group was significantly higher than that in healthy control group (P<0.01). The relative expression levels of NF-κB p65 protein were up-regulated in IL-18,and the expression of IκBα protein in each group was significantly increased,especially in PBC group (P<0.01).Conclusion IL-18 can activate NF-κB signal pathway in CD4+T cells and participate in the pathogenesis of primary biliary cirrhosis.
liver cirrhosis,biliary;T-lymphocytes;antigens,CD4;interleukin-18;primary biliary cirrhosis;nuclear factor-kappa signaling pathway
10.3969/j.issn.1671-8348.2017.14.007
貴州省科學(xué)技術(shù)廳項(xiàng)目(黔科合LH字[2014]7008號)。 作者簡介:趙二川(1989-),在讀碩士,主要從事臨床檢驗(yàn)診斷學(xué)方面研究?!?/p>
,E-mail:780837482@qq.com。
R446.6
A
1671-8348(2017)14-1892-05
2016-11-26
2017-01-16)