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    長(zhǎng)鏈非編碼RNA SPRY4-IT1 對(duì)結(jié)直腸癌細(xì)胞HT-29 增殖凋亡的影響及機(jī)制

    2017-05-04 02:13:36張德保邢春根蘇州大學(xué)附屬第二醫(yī)院江蘇蘇州215000
    山東醫(yī)藥 2017年13期
    關(guān)鍵詞:無義細(xì)胞株空白對(duì)照

    張德保,邢春根 (蘇州大學(xué)附屬第二醫(yī)院,江蘇蘇州215000)

    ·論著·

    長(zhǎng)鏈非編碼RNA SPRY4-IT1 對(duì)結(jié)直腸癌細(xì)胞HT-29 增殖凋亡的影響及機(jī)制

    張德保,邢春根
    (蘇州大學(xué)附屬第二醫(yī)院,江蘇蘇州215000)

    目的 探討長(zhǎng)鏈非編碼RNA(LncRNA) SPRY4-IT1對(duì)結(jié)直腸癌細(xì)胞HT-29增殖、凋亡的影響及機(jī)制。方法 采用qRT-PCR方法檢測(cè)LncRNA SPRY4-IT1在結(jié)直腸癌細(xì)胞株(HT-29、HCT-116、SW-480、SW-620、Caco-2)和正常腸上皮細(xì)胞(FHC)的表達(dá)。選擇其相對(duì)表達(dá)最高的HT-29細(xì)胞,以慢病毒載體介導(dǎo)構(gòu)建SPRY4-IT1過表達(dá)(上調(diào)組)和干擾的(下調(diào)組)穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株,并設(shè)立無義轉(zhuǎn)染組和空白對(duì)照組;qRT-PCR檢測(cè)各組HT-29細(xì)胞中SPRY4-IT1 mRNA的表達(dá)量;CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞增殖活力;克隆試驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞的克隆形成率;流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡率和細(xì)胞周期。Western blotting法檢測(cè)凋亡蛋白Bax、Bcl-2的表達(dá)量。結(jié)果 LncRNA SPRY4-IT1在結(jié)直腸細(xì)胞株(HT-29、HCT-116、SW-480、SW-620、Caco-2)相對(duì)FHC的表達(dá)增高,以HT-29細(xì)胞株中的表達(dá)最高(P均<0.05)。相對(duì)于空白對(duì)照組、無義轉(zhuǎn)染組,上調(diào)組SPRY4-IT1 mRNA表達(dá)量升高,HT-29細(xì)胞增殖活力增強(qiáng),克隆形成率升高,凋亡率降低(P<0.05或<0.01);而下調(diào)組SPRY4-IT1 mRNA表達(dá)量下降,細(xì)胞增殖活力減弱,克隆形成率降低,凋亡率升高(P<0.05或<0.01);在各組細(xì)胞間,細(xì)胞周期分布比較,P均>0.05。相對(duì)于空白對(duì)照組、無義轉(zhuǎn)染組,上調(diào)組細(xì)胞Bcl-2蛋白表達(dá)量增多,Bax蛋白表達(dá)量減少(P<0.05或<0.01);下調(diào)組Bcl-2蛋白表達(dá)量減少,Bax蛋白表達(dá)量增多(P均<0.01)。結(jié)論 LncRNA SPRY4-IT1可能通過促進(jìn)Bcl-2表達(dá),抑制Bax表達(dá)而促進(jìn)結(jié)直腸癌細(xì)胞增殖、抑制其凋亡。

    結(jié)直腸癌細(xì)胞HT-29;長(zhǎng)鏈非編碼RNA;SPRY4-IT1;細(xì)胞增殖;細(xì)胞凋亡

    長(zhǎng)鏈非編碼RNA(LncRNA)是指長(zhǎng)度超過200個(gè)核苷酸,不具有蛋白質(zhì)編碼功能的RNA。早年研究認(rèn)為,LncRNA是轉(zhuǎn)錄后的“暗物質(zhì)”或“噪音”[1,2]。近年研究證實(shí),LncRNA雖不編碼蛋白質(zhì),可以和蛋白質(zhì)相互作用[3],并參與細(xì)胞分化過程的調(diào)節(jié),在干細(xì)胞的生長(zhǎng)、凋亡和腫瘤細(xì)胞的轉(zhuǎn)移中發(fā)揮著重要作用[4,5]。在結(jié)直腸癌的發(fā)生、發(fā)展中發(fā)揮著重要作用的LncRNA有BRAF-actived LncRNA(BANCR)、LncRNA HOTAIR、LncRNA MALAT1、LncRNA-CCAT1等[6~9]。有研究表明,LncRNA SPRY4-IT1在黑色素瘤、腦膠質(zhì)瘤、食管癌、胃癌、腎透明細(xì)胞癌、膀胱癌中均有報(bào)道[10~15],與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展及預(yù)后具有一定的相關(guān)性。2016年5~12月,本研究主要探討了LncRNA SPRY4-IT1在結(jié)直腸癌細(xì)胞株中的表達(dá),以及SPRY4-IT1對(duì)HT-29細(xì)胞增殖、凋亡的影響,為將來結(jié)直腸癌臨床分子靶向診斷和治療提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料 人結(jié)直腸癌細(xì)胞株(HT-29、HCT-116、SW-480、SW-620、Caco-2)和正常人腸上皮細(xì)胞(FHC)均購(gòu)于中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù)。RPMI-1640、胎牛血清購(gòu)自美國(guó)Gibco公司。SPRY4-IT1引物序列、內(nèi)參GAPDH引物購(gòu)自上海生工。過表達(dá)和干擾序列由南京Abm公司合成。CCK-8試劑盒購(gòu)自日本同仁;7-aad/PE試劑盒購(gòu)自BD公司;細(xì)胞周期與細(xì)胞凋亡試劑盒及BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒購(gòu)自碧云天;Bax、Bcl-2抗體(兔抗人)購(gòu)自Abcam公司,β-actin內(nèi)參(鼠抗人)及抗兔、抗鼠二抗購(gòu)自碧云天。BioRad CFX96 Touch 熒光定量PCR儀購(gòu)自美國(guó)BioRad公司;TECAN Infinite 200 Pro多功能酶標(biāo)儀購(gòu)自瑞士;恒壓恒流電泳儀購(gòu)自美國(guó)Bio-RAD公司;電泳儀和電泳槽購(gòu)自中國(guó)上海輝煌科學(xué)儀器公司;化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)購(gòu)自中國(guó)基因有限公司。

    1.2 細(xì)胞培養(yǎng) 用含10%已滅活的胎牛血清及1%青鏈霉素RPMI1640培養(yǎng)基培養(yǎng)結(jié)直腸癌細(xì)胞株(HT-29、HCT-116、SW-480、SW-620、Caco-2)及FHC。根據(jù)培養(yǎng)基的顏色每2~3 d換液一次,待細(xì)胞融合至90%左右,進(jìn)行細(xì)胞傳代,并取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    1.3 LncRNA SPRY4-IT1 mRNA的檢測(cè) 采用qRT-PCR法。TRIzol法抽提總RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。qRT-PCR:所有cDNA樣品分別配制內(nèi)參和目的基因的實(shí)時(shí)定量PCR反應(yīng)體系。每個(gè)反應(yīng)管配置3個(gè)復(fù)孔,并設(shè)計(jì)陰性對(duì)照,即反應(yīng)體系中以去離子水代替模板cDNA。將配制好的PCR反應(yīng)溶液置于qPCR儀上進(jìn)行qPCR擴(kuò)增反應(yīng)。反應(yīng)條件:95 ℃ 2 min預(yù)變性,然后按95 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s(收集熒光信號(hào)),72 ℃ 30 s,共45個(gè)循環(huán),反應(yīng)結(jié)束后設(shè)置熔解曲線分析程序。所用引物序列如下:SPRY4-IT1(上游引物:5′-AGCCACATAAATTCAGCAGA-3′,下游引物:5′-CGATGTAGTAGGATTCCTTTCA-3′);內(nèi)參GAPDH引物(上游引物:5′-GACTCATGACCACAAGTCCATGC-3′,下游引物:5′-AGAGGCAGGGATGATGTTCTG-3′)。采用2-ΔΔCT法分析LncRNA SPRY4-IT1的相對(duì)表達(dá)。

    1.4 穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株的構(gòu)建及分組 以慢病毒載體介導(dǎo)構(gòu)建SPRY4-IT1過表達(dá)、敲低及無義序列的穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株,慢病毒載體及穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株由南京Abm公司合成并構(gòu)建。將細(xì)胞分為上調(diào)組(SPRY4-IT1過表達(dá)的穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株)、下調(diào)組(SPRY4-IT1敲低的穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株)及無義轉(zhuǎn)染組(無義轉(zhuǎn)染的細(xì)胞株),設(shè)置空白對(duì)照組。干擾序列為:CCCAGATGTTGACAGCTGCCTCT。用qRT-PCR法檢測(cè)各組HT-29細(xì)胞中SPRY4-IT1的相對(duì)表達(dá),方法和反應(yīng)條件同1.3。

    1.5 細(xì)胞增殖活力的檢測(cè) 采用CCK-8法。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期胰酶消化懸浮細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞為104/mL,取100 μL加入96孔板,繼續(xù)培養(yǎng)24 h。每組細(xì)胞設(shè)3個(gè)復(fù)孔,并設(shè)陰性對(duì)照(只加培養(yǎng)基和CCK-8,沒有細(xì)胞)。分別于細(xì)胞接種到96孔板后的第1天至第5天加CCK-8液10 μL,于加液后繼續(xù)正常培養(yǎng)4 h,在酶標(biāo)儀上450 nm波長(zhǎng)處測(cè)定每孔吸光度(OD)值。

    1.6 細(xì)胞克隆形成能力的檢測(cè) 采用克隆形成試驗(yàn)。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期各組HT-29細(xì)胞,胰酶消化細(xì)胞,培養(yǎng)基懸浮細(xì)胞,細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),用6孔板培養(yǎng),每孔加300個(gè)細(xì)胞,加含10%胎牛血清1640培養(yǎng)基至3 mL。細(xì)胞在標(biāo)準(zhǔn)條件下,培養(yǎng)2~3周,3~5 d換液一次,觀察克隆形成,以肉眼可見克隆時(shí)終止培養(yǎng)。棄培養(yǎng)基,用PBS清洗2次,每孔加甲醇1 mL固定15 min。棄固定液,用姬姆薩染液染色30 min。每組細(xì)胞接種3個(gè)復(fù)孔。計(jì)算克隆形成率,克隆形成率=克隆數(shù)目/接種細(xì)胞數(shù)×100%。

    1.7 細(xì)胞凋亡率及細(xì)胞周期的檢測(cè) 采用流式細(xì)胞術(shù)。細(xì)胞凋亡率的檢測(cè):取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期各組HT-29細(xì)胞,用胰酶消化,培養(yǎng)基懸浮,取1×105~5×105個(gè)細(xì)胞用PBS洗滌2次(1 000 r/min離心5 min),加Binding Buffer 100 μL懸浮細(xì)胞,每管中加7-aad 5 μL和PE染料5 μL,再加Binding Buffer 400 μL混勻。同時(shí),設(shè)空白對(duì)照(不加染料),單染管(分別用7-aad 5 μL和PE 5 μL染料)室溫避光反應(yīng)15 min。進(jìn)行流式細(xì)胞凋亡率檢測(cè),結(jié)果用總凋亡的百分比表示。細(xì)胞周期的檢測(cè):取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期各組HT-29細(xì)胞,用胰酶消化,培養(yǎng)基懸浮,取1×105~5×105個(gè)細(xì)胞用PBS洗滌2次(1 000 r/min離心5 min),棄上清,用PBS 0.5 mL重懸細(xì)胞, 70%乙醇5 mL固定,4 ℃過夜。1 000 r/min,離心15 min,棄上清,用PBS洗滌2次,棄上清,加緩沖液500 μL,加RNase 10 μL,37 ℃水浴30 min,加PI 25 μL,避光反應(yīng)30 min,進(jìn)行流式細(xì)胞周期檢測(cè)。

    1.8 各組HT-29細(xì)胞中Bcl-2和Bax蛋白表達(dá)量的檢測(cè) 采用Western blotting法。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期各組HT-29細(xì)胞,棄培養(yǎng)基,用PBS清洗兩遍,配制含抑制劑的蛋白抽提試劑(RIPA抽提試劑1 mL中加入蛋白酶抑制劑PMSF 10 μL),1×106~5×106個(gè)細(xì)胞,輕輕搖動(dòng)5 min,用細(xì)胞刮將貼壁細(xì)胞刮下來,轉(zhuǎn)移細(xì)胞懸浮液至離心管中,12 000 r/min離心15 min,取上清,即為所提的蛋白。采用BCA法測(cè)定蛋白濃度,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)蛋白BSA曲線計(jì)算目的蛋白濃度,5×蛋白上樣緩沖液SDS-PAGE 50 μL加目的蛋白200 μL,95 ℃煮沸5 min,-20 ℃保存或后續(xù)實(shí)驗(yàn)。按比例配制12%分離膠和5%濃縮膠,根據(jù)目的蛋白濃度加上樣量,跑電泳→轉(zhuǎn)膜→封閉→孵一抗過夜→回收一抗→洗膜(10 min×4次)→孵二抗(1 h)→洗膜(10 min×4次)→ECL化學(xué)成像發(fā)光,觀察目的蛋白表達(dá)。用目的蛋白的灰度值除以內(nèi)參β-actin的灰度值以校正誤差,所得結(jié)果代表某樣品的目的蛋白相對(duì)含量。

    2 結(jié)果

    2.1 結(jié)直腸癌細(xì)胞株和FHC中SPRY4-IT1 mRNA的表達(dá)量比較 FHC、HT-29、HCT-116、SW480、SW620、Caco-2細(xì)胞株中SPRY4-IT1 mRNA的表達(dá)量分別為1.00、36.76±7.98、4.49±0.38、19.88±4.88、15.46±3.30、8.81±1.81。相對(duì)于FHC,其他細(xì)胞中的表達(dá)均升高,以HT-29細(xì)胞株為著(P均<0.05)。

    2.2 各組細(xì)胞中SPRY4-IT1 mRNA的表達(dá)量比較 上調(diào)組、下調(diào)組、空白對(duì)照組、無義轉(zhuǎn)染組SPRY4-IT1 mRNA的表達(dá)量分別為5.81±0.33、0.24±0.03、1.00、1.03±0.04,相對(duì)于無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組,上調(diào)組SPRY4-IT1 mRNA表達(dá)量升高(P均<0.01),下調(diào)組SPRY4-IT1 mRNA表達(dá)量下降(P均<0.01);無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組比較,P>0.05。

    2.3 各組細(xì)胞增殖活力的比較 上調(diào)組、下調(diào)組、無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組第1、2、3、4、5天OD值分別為0.45±0.01、0.85±0.01、1.19±0.01、2.15±0.02、2.52±0.02,0.44±0.01、0.60±0.01、0.62±0.01、0.65±0.01、0.82±0.01,0.46±0.01、0.66±0.01、0.77±0.03、1.12±0.02、1.23±0.03,0.45±0.03、0.66±0.01、0.77±0.03、1.18±0.01、1.28±0.01。相對(duì)于無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組,除第1天外,其余各時(shí)間上調(diào)組細(xì)胞增殖活力增強(qiáng)(P均<0.01),下調(diào)組細(xì)胞增殖活力下降(P均<0.05);無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組比較,P均>0.05。

    2.4 各組細(xì)胞克隆形成率比較 上調(diào)組、下調(diào)組、無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組克隆形成率分別為61.67%±2.91%、13.00%±1.16%、28.33%±1.76%、30.33%±1.67%。相對(duì)于無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組,上調(diào)組細(xì)胞克隆形成率升高(P均<0.01),下調(diào)組細(xì)胞克隆形成率下降(P均<0.01);無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組比較,P>0.05。

    2.5 各組細(xì)胞凋亡率比較 上調(diào)組、下調(diào)組、無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組總凋亡率分別為0.69%±0.08%、3.34%±0.21%、1.60%±0.22%、1.29%±0.16%。相對(duì)于無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組,上調(diào)組細(xì)胞凋亡率降低(P均<0.05),下調(diào)組細(xì)胞凋亡率升高(P均<0.01);無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組比較,P﹥0.05。

    2.6 各組細(xì)胞周期比較 上調(diào)組細(xì)胞在G0/G1期、S期、G2/M期所占百分比分別為77.20%±0.81%、6.93%±0.51%、13.76%±0.36%,下調(diào)組分別為71.41%±0.99%、12.86%±1.24%、13.53%±1.76%,無義轉(zhuǎn)染組分別為73.93%±1.20%、10.62%±1.01%、15.01%±0.60%,空白對(duì)照組分別為72.98%±0.44%、10.77%±0.46%、13.25%±0.44%。各組之間各期細(xì)胞所占百分比比較,P均﹥0.05。

    2.7 各組Bcl-2、Bax蛋白表達(dá)量比較 上調(diào)組、下調(diào)組、無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組Bcl-2蛋白表達(dá)量分別為1.31±0.07、0.37±0.03、0.70土0.01、0.71±0.09,Bax蛋白表達(dá)量分別為0.51±0.01、1.42±0.05、0.82±0.01、0.71±0.02。相對(duì)于空白對(duì)照組、無義轉(zhuǎn)染組,上調(diào)組Bcl-2蛋白表達(dá)量增多(P均<0.01),Bax蛋白表達(dá)量減少(P均<0.01);下調(diào)組Bcl-2蛋白表達(dá)量減少(P均<0.05),Bax蛋白表達(dá)量增多(P均<0.01);無義轉(zhuǎn)染組、空白對(duì)照組比較,P均﹥0.05。

    3 討論

    研究發(fā)現(xiàn),LncRNA參與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展,影響腫瘤患者的治療及預(yù)后,調(diào)節(jié)腫瘤細(xì)胞的增殖、遷移及凋亡等過程,但眾多LncRNA的生物學(xué)功能及其作用機(jī)制仍不是很清晰,需要進(jìn)一步研究。LncRNA SPRY4-IT1是Sprouty4內(nèi)含子轉(zhuǎn)錄本1,長(zhǎng)度為687個(gè)核苷酸,其基因庫(kù)編碼:GC05M142318,位于5q31.3,源自于Sprouty4基因。Khaitan等[10]在2011年首次報(bào)道SPRY4-IT1在黑色素瘤細(xì)胞中的高表達(dá),并調(diào)節(jié)黑色素瘤細(xì)胞的凋亡和遷移。本研究發(fā)現(xiàn),SPRY4-IT1在結(jié)直腸癌細(xì)胞株HT-29中相對(duì)表達(dá)最高。上調(diào)HT-29細(xì)胞SPRY4-IT1的表達(dá),促進(jìn)細(xì)胞增殖和克隆形成,抑制其凋亡;而下調(diào)SPRY4-IT1的表達(dá)抑制HT-29的增殖和克隆形成,促進(jìn)其凋亡。B淋巴細(xì)胞瘤-2基因簡(jiǎn)稱Bcl-2,是細(xì)胞凋亡研究中最受重視的基因,它具有抑制凋亡的作用,此外Bcl-2可增強(qiáng)細(xì)胞對(duì)大多數(shù)DNA損傷因子的抵抗作用;Bax是另一類與凋亡相關(guān)的蛋白因子,主要表現(xiàn)為促進(jìn)細(xì)胞凋亡的作用。上調(diào)HT-29細(xì)胞SPRY4-IT1的表達(dá),可促進(jìn)Bcl-2的表達(dá),抑制Bax表達(dá),從而抑制了細(xì)胞凋亡;下調(diào)HT-29細(xì)胞SPRY4-IT1的表達(dá),可抑制Bcl-2表達(dá),促進(jìn)Bax表達(dá),從而促進(jìn)了細(xì)胞凋亡。因此,我們認(rèn)為SPRY4-IT1在結(jié)直腸癌細(xì)胞中表現(xiàn)為癌基因特性,敲低HT-29細(xì)胞中SPRY4-IT1的表達(dá),通過調(diào)節(jié)凋亡相關(guān)蛋白Bax和Bcl-2能抑制結(jié)直腸癌細(xì)胞的生長(zhǎng)和增殖,促進(jìn)其凋亡,為將來結(jié)直腸癌臨床診斷和分子靶向治療提供理論依據(jù),SPRY4-IT1有可能成為結(jié)直腸癌分子靶向治療重要靶點(diǎn)。

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    Influence of long non-coding RNA SPRY4-IT1 on proliferation and apoptosis of colorectal cancer cells HT-29

    ZHANGDebao,XINGChungen

    (TheSecondAffiliatedHospitalofSoochowUniversity,Suzhou215000,China)

    Objective To explore the influence and mechanism of long non-coding RNA (Lnc RNA) SPRY4-IT1 on proliferation and apoptosis of colorectal cancer cells HT-29. Methods Quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR) was performed to detect the expression of LncRNA SPRY4-IT1 in the colorectal cancer cell lines (HT-29, HCT-116, SW-480, SW-620, Caco-2) and the normal intestinal epithelial cell line FHC. We selected HT-29 cells with the relative highest expression of SPRY4-IT1 for this study. Lentivirus-mediated recombinant plasmid target SPRY4-IT1 was constructed and transfected into colorectal cancer HT-29 cells to establish the stably transfection cells of over-expression (up-regulation group) and interference (knock-down group). Meanwhile, the negative control group and blank control group were established. qRT-PCR was used to detect the expression of SPRY4-IT1 mRNA in HT-29 cells of each group. CCK-8 was applied to detect the proliferation of HT-29. cells Clone formation assay was used to test the colony forming efficincy of HT-29 cells. Flow cytometry was applied to detect the apoptosis and cell cycle of HT-29 cells. Western blotting was used to testify the expression of Bax and Bcl-2.Results The relative expression of LncRNA SPRY4-IT1 in colorectal cancer cell lines (HT-29, HCT-116, SW-480, SW-620, Caco-2) was significantly higher than that in the normal intestinal epithelial cell line FHC, and the expression of SPRY4-IT1 was the highest in HT-29 cells (allP<0.05). Compared with the negative control group and blank control group, the expression of SPRY4-IT1 mRNA, the proliferation and the colony forming efficincy of HT-29 cells in the up-regulation group were enhanced, and apoptosis rate was decreased (P<0.05 orP<0.01), and the opposite trend was observed in the knock-down group (P<0.05 orP<0.01). There was no significant difference in cell cycle of HT-29 cells among these groups (allP>0.05). Compared with the negative control group and blank control group, the expression of Bcl-2 was increased and Bax was decreased in HT-29 cells of the up-regulation group (P<0.05 orP<0.01), the expression of Bcl-2 was decreased and Bax was increased in HT-29 cells of the knock-down group (allP<0.01). Conclusion LncRNA SPRY4-IT1 may significantly accelerate proliferation and restrain apoptosis of colorectal cancer cell via promoting the expression of Bax and depressing the expression of Bcl-2.

    colorectal cancer cells HT-29; long non-coding RNA; SPRY4-IT1; cell proliferation; apoptosis

    國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(81672970)。

    張德保(1979-),男,碩士研究生在讀,主要研究方向?yàn)槠胀饪莆改c道疾病。E-mail:18706202833@163.com

    邢春根(1965-),男,主任醫(yī)師(教授),主要研究方向?yàn)槠胀饪莆改c道腫瘤。E-mail:xingcg@126.com

    10.3969/j.issn.1002-266X.2017.13.001

    R735.3

    A

    1002-266X(2017)13-0001-04

    2017-01-12)

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