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    I-Ad/IgG2b Fc二聚體融合蛋白的構建表達及鑒定①

    2017-04-24 01:26:05羅智環(huán)徐成偉閔新文
    中國免疫學雜志 2017年4期
    關鍵詞:桿狀病毒亮氨酸二聚體

    羅智環(huán) 錢 航 徐成偉 閔新文 陳 俊

    (湖北醫(yī)藥學院附屬東風醫(yī)院,十堰442008)

    I-Ad/IgG2b Fc二聚體融合蛋白的構建表達及鑒定①

    羅智環(huán) 錢 航 徐成偉 閔新文②陳 ?、?/p>

    (湖北醫(yī)藥學院附屬東風醫(yī)院,十堰442008)

    目的:構建I-Ad/IgG2b Fc桿狀病毒表達載體,使其在Sf9昆蟲細胞內表達。方法:利用RT-PCR從BALB/c小鼠淋巴細胞中擴增出I-Adα、I-Adβ和IgG2b Fc目的基因序列,運用重疊PCR將I-Adα和I-Adβ分別與Fos和Jun的亮氨酸拉鏈序列相連,形成I-Adα-Fos和I-Adβ-Jun;利用酶切位點XbaⅠ將I-Adα-Fos與IgG2b Fc段相連,形成I-Adα-Fos-IgG2b Fc重組序列;分別將I-Adα-Fos-IgG2b Fc和I-Adβ-Jun插入桿狀病毒表達載體pFastBacTMDual的PPH和PP10兩個啟動子的下游,構建出重組載體pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc];采用PCR及限制性內切酶對所構建的載體進行鑒定并測序;將pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc]轉入DH10Bac感受態(tài),使其在轉座子的作用下形成重組桿粒病毒Bacmid+[I-Ad/IgG2b Fc],利用脂質體轉染試劑將重組表達載體轉染至Sf9昆蟲細胞,P4后大量感染Sf9昆蟲細胞,收集上清通過PEG20000濃縮可得到I-Ad/IgG2b Fc二聚體融合蛋白,通過雙抗體夾心ELISA及Western blot對表達的蛋白進行檢測。結果:PCR及酶切鑒定以及測序結果證實所構建的pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc]重組載體具有正確的序列;雙抗體夾心 ELISA和Western blot結果表明重組桿粒能成功感染Sf9昆蟲細胞,并且表達的融合蛋白具有正確構象。結論:成功構建pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc]桿狀病毒表達載體,并在Sf9昆蟲細胞中表達,為研究I-Ad限制性的T細胞奠定了基礎。

    I-Ad;二聚體;昆蟲細胞;桿狀病毒表達載體

    抗原肽/MHC 復合物(Peptide/major histocom-patibility complex,pMHC)是T細胞抗原受體(T-cell receptor,TCR)識別的配體,在抗原加工、處理、提呈以及T細胞活化過程中發(fā)揮重要的作用。主要組織相容性Ⅱ類抗原(MHC class Ⅱ)是一組具有高度多態(tài)性的、由兩條跨膜的肽鏈所組成的膜蛋白,其α鏈(35 kD)和β鏈(28 kD)非共價連接形成異源二聚體。MHCⅡ類分子通過pMHC形式與CD4+T 細胞的TCR結合,從而誘導特異性的細胞免疫反應的產生。小鼠的MHC抗原為H-2(Histocompatibility antigen-2,H-2),H-2 Ⅱ類分子主要包括I-A和I-E兩個亞區(qū)。本研究構建并表達了I-Ad/IgG2b Fc二聚體,為研究抗原肽/I-Ad特異性的T細胞應答提供了有力的工具。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 質粒、菌株與細胞系 pFastBacTMDual質粒購自美國Invitrogen公司(10712024);DH10bac(CC2801)和DH5α(CC0203)購自上海超研生物;Sf9細胞購自武漢大學典藏中心。

    1.1.2 試劑 所有PCR引物及全基因合成均由上海生工完成;總RNA提取、逆轉錄酶、dNTP、轉染試劑脂質體等購自美國Invitrogen公司;pfu DNA酶、限制性內切酶、T4連接酶、DNA Marker均購自Fermentas公司;膠回收試劑盒、DNA分子量Marker、質粒提取試劑盒(北京天根);Grace′s完全培養(yǎng)基、Grace′s不完全培養(yǎng)基(Gibco公司);胎牛血清(四季青);氨芐青霉素、X-gal、IPTG、卡那霉素、慶大霉素、四環(huán)素。

    1.2 方法

    1.2.1 重組載體的構建 分離BALB/c小鼠脾臟淋巴細胞,應用Trizol試劑提取總RNA,經(jīng)逆轉錄PCR得到cDNA,作為后續(xù)擴增I-Adα、I-Adβ和IgG2b Fc以及亮氨酸拉鏈Fos和Jun序列的模板。參照文獻[1],利用表1中的引物及擴增條件,分別擴增出目的片段,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳鑒定PCR產物后回收純化目的片段,再利用重疊PCR(Overlapping PCR)的方法將I-Adα和I-Adβ分別與Fos和Jun的亮氨酸拉鏈序列相連;在I-Ad和Fos及Jun的中間加入序列中含SalⅠ酶切位點的柔性Linker(VDGGGGG),即I-Ad和Fos及Jun通過Sal Ⅰ酶切位點連接,分別形成I-Adα-Fos和I-Adβ-Jun;利用酶切位點Xba Ⅰ將I-Adα-Fos與IgG2b Fc段相連,形成I-Adα-Fos-IgG2b Fc重組序列;將I-Adα-Fos-IgG2b Fc和I-Adβ-Jun插入pFastBacTMDual的 PPH和PP10兩個啟動子的下游,轉化DH5α感受態(tài)細胞后挑取陽性克隆,用質粒提取試劑盒提取質粒后經(jīng)PCR及酶切鑒定正確,再進行雙向測序鑒定(由上海生工完成),最終形成一個PPH方向含I-Adα-Fos-Fc序列,PP10方向含I-Adβ-Jun序列的pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc]質粒(圖1A)。將鑒定正確的pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc]質粒轉化DH10 BacTM感受態(tài)細胞后挑取陽性克隆,按照Bac to Bac桿狀病毒表達系統(tǒng)說明書提取含I-Ad/IgG2b Fc的穿梭質粒Bacmid(138 kb),經(jīng)PCR鑒定后測序。

    1.2.2 重組載體的鑒定 對pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc]質粒進行酶切鑒定,根據(jù)所使用的酶切位點,主要對I-Adα、I-Adβ和IgG2b Fc分別用BamHⅠ和SalⅠ、XhoⅠ和SalⅠ以及XbaⅠ和Hind Ⅲ進行酶切鑒定,所使用酶切條件以試劑公司提供的條件為準;同時利用菌液PCR對I-Adα、I-Adβ和

    表1 各目的基因所用引物

    Tab.1 Primers used for amplification of each targeted gene

    PrimersSequenceofeachprimer(5′?3′)DescriptionoflineationProduct(bp)I?Adα?FGCGCGGATCCATGCCGTGCAGCAGABamHⅠsite802I?Adα?RCCCACCTCCTCCGCCGTCGACTCATAAAGGCCCTGGVDGGGGGlinkerAdβ?FGCGCCTCGAGATGGCTCTGCAGATCXhoⅠsite823I?Adβ?RCCCACCTCCTCCGCCGTCGACTCACTGCAGGAGCCCVDGGGGGlinkerIgG2bFc?FGCGCTCTAGAAGCCCAGCGGGCCCAXbaⅠsite739IgG2bFc?RGCGCAAGCTTTCATTTACCCGGAGAHindⅢsiteFos?FGTCGACGGCGGAGGAGGTGGGCTGACTGATACACTCCVDGGGGGlinker151Fos?RGCGCTCTAGAGTGAGCTGCCAGGATGAACXbaⅠsiteJun?FGTCGACGGCGGAGGAGGTGGGAGAATCGCCCGGCTGGVDGGGGGlinker151Jun?RGCGCGCTAGCTCAGTGGTTCATGACTTTCTNheⅠsite

    IgG2b Fc片段進行鑒定;經(jīng)酶切和菌液PCR 鑒定正確的質粒送上海生工進行雙向測序鑒定,測序結果與Genbank中檢索到的各目的序列進行比對。

    1.2.3 融合蛋白的表達、濃縮及檢測 用含4%~8%胎牛血清的Grace′s培養(yǎng)液,在27℃無CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)Sf9昆蟲細胞,待細胞處于對數(shù)生長期時,用重組桿粒Bacmid+[I-Ad/IgG2b Fc]和Cellfection脂質體轉染試劑按照說明書進行轉染,待Sf9昆蟲細胞形態(tài)由梭形變?yōu)閳A形,且胞內顆粒增多、直徑變大時,收集含有攜帶I-Ad/IgG2b Fc基因的病毒,再對此病毒進行擴增,待擴增到P4時大量感染Sf9昆蟲細胞,5~6 d后收集上清,即得到大量含有I-Ad/IgG2b Fc融合蛋白上清(圖1B);將收集的上清置于透析袋中,用PEG20000進行濃縮,隨后利用ELISA和Western blot對濃縮產物進行檢測。

    2 結果

    2.1 目的基因片段的獲取 如圖2所示,通過RT-PCR擴增出小鼠I-Ad的胞外段基因I-Adα、I-Adβ以及IgG2b Fc段基因,并獲取亮氨酸拉鏈Fos和Jun序列,各目的片段大小均與預期理論值一致。

    2.2 I-Ad重組載體PCR及酶切鑒定 對所構建的pFastBacTMDual +[I-Ad/IgG2b Fc]重組載體運用菌液PCR及酶切進行鑒定。菌液PCR結果如圖3A所示,I-Adα、I-Adβ和IgG2b Fc各片段大小與預期一致;分別用BamHⅠ和SalⅠ、XhoⅠ和SalⅠ以及XbaⅠ和HindⅢ對pFastBacTMDual +[I-Ad/IgG2b Fc]質粒進行酶切鑒定,酶切下來的小片段大小與預期一致,結果如圖3B所示。經(jīng)過菌液PCR和酶切鑒定正確的質粒送上海生工進行雙向測序鑒定,測序結果與Genbank中檢索到的各目的序列完全一致,且無突變。

    圖1 I-Ad/IgG2b Fc表達載體結構圖及二聚體結構模擬圖Fig.1 Structure of pFastBacTMDual + [I-Ad/IgG2b Fc] plasmid and simulation structure of I-Ad dimerNote:A.The structure of pFastBacTMDual + [I-Ad/IgG2b Fc] plasmid;B.Simulation structure of I-Ad dimer.

    2.3 融合蛋白的檢測及鑒定 M5/114 (M5/114.15.2)是一種可以識別MHCⅡ的單克隆抗體。用mAb M5/114與HRP標記的羊抗小鼠IgG 2b進行雙抗體夾心ELISA檢測,結果如圖 4所示,I-Ad桿狀病毒感染Sf9昆蟲細胞后,其培養(yǎng)上清的A492值與正常Sf9昆蟲細胞培養(yǎng)上清的A492值相比,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),而陰性對照組與正常Sf9昆蟲細胞培養(yǎng)上清的A492值相比無統(tǒng)計學意義(P>0.05),說明I-Ad桿狀病毒感染Sf9昆蟲細胞所表達的I-Ad具有正確的天然構象,并且IgG2b的Fc段也正確表達;取濃縮后的二聚體蛋白,經(jīng)β-巰基乙醇還原處理后進行SDS變性聚丙烯凝膠電泳,用抗小鼠IgG Fc抗體可檢測到一條位于40 kD和60 kD之間的蛋白質條帶,與預期的大小(56 kD)相符(圖 5)。

    圖2 目的基因片段的獲取Fig.2 Acquisition of target gene fragmentNote:M.DNA marker;1,2.Signal peptide and extracellular region fragment of I-Ad α and I-Ad β,respectively;3.IgG2b Fc fragment;4,5.Lucine zipper sequence of Fos and Jun,respectively.

    圖3 重組載體菌液PCR及酶切鑒定Fig.3 PCR and enzyme digestion of recombinant bacteria carrierNote:M.DNA marker;1,2,3.I-Ad α,I-Ad β and IgG2b Fc fragment,respectively;4.pFastBacTMDual +[I-Ad/IgG2b Fc] plasmid;5.pFastBacTMDual +[I-Ad/IgG2b Fc] plasmid digested by BamHⅠ and SalⅠ (the length of the small fragment was 771 bp );6.pFastBacTMDual +[I-Ad/IgG2b Fc] plasmid digested by XhoⅠ and SalⅠ(the length of the small fragment was 792 bp );7.pFastBacTMDual +[I-Ad/IgG2b Fc] plasmid digested by Xba Ⅰ and Hind Ⅲ (the length of the small fragment was 719 bp).

    圖4 ELISA檢測I-Ad Sf9細胞I-Ad/IgG2b Fc融合蛋白的表達Fig.4 I-Ad/IgG2b Fc fusion protein expression in I-Ad Sf9 cells detected by ELISANote:The plate was coated by 1 μg/ml Rat anti mouse I-Ad antibody M5/114,and goat anti mouse IgG2b antibody labeled by HRP(4 000×diluted) was used as the second antibody.

    圖5 Western blot 檢測I-Ad/IgG2b Fc融合蛋白Fig.5 I-Ad/IgG2b Fc fusion protein expression in I-Ad Sf9 cells analyzed by Western blotNote:1.Protein marker;2.I-Ad dimer.

    3 討論

    小鼠的H-2復合體即主要組織相容性復合體,位于17號染色體上,是一組具有遺傳多態(tài)性的基因群。根據(jù)結構和功能可以分為三類,但通常所說的主要是與抗原提呈相關的Ⅰ類和Ⅱ類基因[2]。I-Ad是來源于BALB/c小鼠(H-2d)的MHCⅡ類分子,能將抗原肽提呈給CD4+T細胞(Th1和Th2),在細胞免疫和體液中具有極為重要的作用。

    單價可溶性的pMHC與TCR 之間的結合能力較低,且解離快、穩(wěn)定性差,限制了其在相應研究中的應用;多價pMHC分子可與特異性T細胞表面的多個TCR有效結合,且解離慢、穩(wěn)定性高[3,4]。MHC多聚體技術是根據(jù)T細胞活化的雙識別原理,利用生物工程技術將MHC單體在體外組裝成多聚體,應用于特異性T細胞檢測、分選、活化等研究中,是新疫苗設計、篩選及臨床評價的關鍵技術手段。該技術為腫瘤、自身免疫、移植排斥及病毒性疾病的臨床診斷試劑及生物治療新藥的開發(fā)提供了技術支持[5]。MHCⅡ類分子多聚體的制備方法很多,尚無一種統(tǒng)一的方法,但眾多方法基本上都是基于兩種模式,一是采用類似于MHCⅠ類分子多聚體的制備方法,利用基于生物素-鏈霉親和素系統(tǒng)的方法[6-10],其中MHCⅡ類分子的α鏈和β鏈可借助Fos-Jun亮氨酸拉鏈進行連接(9834080),二是利用免疫球蛋白的結構,將MHCⅡ類分子的α鏈和β鏈分別連接到免疫球蛋白的輕鏈和重鏈[11],或者借助Fos-Jun亮氨酸拉鏈將MHCⅡ類分子連接到Ig Fc段的鉸鏈區(qū)[12]。

    本研究將I-Adα和I-Adβ分別與Fos和Jun的亮氨酸拉鏈序列相連,形成I-Adα-Fos和I-Adβ-Jun,二者可通過Fos和Jun的亮氨酸拉鏈結合,形成I-Ad分子;利用酶切位點Xba I將I-Adα-Fos與IgG2b Fc段相連,形成I-Adα-Fos-IgG2b Fc重組序列,兩個同源的I-Ad分子可通過IgG2b Fc段的二硫鍵結合形成二聚體,最終由Sf9昆蟲細胞表達出利用Fc連接的I-Ad二聚體。

    [1] Gauthier L,Smith KJ,Pyrdol J,etal.Expression and crystallization of the complex of hla-dr2 (dra,drb1*1501) and an immunodominant peptide of human myelin basic protein[J].Proc Natl Acad Sci U S A,1998,95(20):11828-11833.

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    [收稿2016-11-25]

    (編輯 張曉舟)

    Construction,expression of I-Ad/IgG2b Fc dimer fusion protein and its identification

    LUOZhi-Huan,QIANHang,XUCheng-Wei,MINXin-Wen,CHENJun.

    DongfengHospitalAffiliatedtoHubeiUniversityofMedicine,Shiyan442008,China

    Objective:To construct I-Ad/IgG2b Fc baculovirus expression vector and express I-Ad/IgG2b Fc dimer fusion protein in Sf9 insect cells.Methods:I-Adα,I-Adβ and IgG2b Fc gene sequences were amplified from BALB/c mouse lymphocytes by RT-PCR.I-Adα and I-Adβ were connected with the leucine zipper sequence Fos and Jun respectively by overlapping PCR to form I-Adα-Fos and I-Adβ-Jun.I-Adα-Fos and IgG2b Fc fragments were ligated by restriction sites Xba I to form I-Adα-Fos-IgG2b Fc recombination sequence.I-Adα-Fos-IgG2b Fc and I-Adβ-Jun fragments were inserted to PPHand PP10,which were the downstream of the promoters in the plasmid pFastBacTMDual,to form pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc] recombinant plasmids.The constructed vector was identified by PCR,restriction endonuclease and sequencing.The recombinant plasmids pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc] was transferred into the DH10Bac competent cell to form recombinant baculovirus Bacmid+[I-Ad/IgG2b Fc].The recombinant baculovirus was transfected into Sf9 insect cells by liposome transfection reagent.After infected with Sf9 insect cells,the supernatant was collected and concentrated by PEG20000 to obtain I-Ad/IgG2b Fc dimer fusion protein.The fusion protein was detected by double-antibody sandwich ELISA and Western blot.Results:PCR,restriction enzyme digestion and sequencing confirmed that the recombinant vector pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc] had the correct sequence.The double antibody sandwich ELISA and Western blot showed that recombinant bacmid could successfully infect Sf9 insect cells,and the expressed fusion protein had the correct conformation.Conclusion:The pFastBacTMDual+[I-Ad/IgG2b Fc] baculovirus expression vector was successfully constructed and expressed in Sf9 insect cells,laying a foundation for the study of I-Ad-restricted T cells.

    I-Ad;Dimer;Insect cell;Baculovirus expression vector

    10.3969/j.issn.1000-484X.2017.04.004

    ①本文受國家自然科學基金青年項目(81400288)和湖北省教育廳科學研究計劃(B2015495)資助。

    羅智環(huán)(1991年-),女,在讀碩士,主要從事心血管免疫的研究,E-mail:13451265001@163.com。

    R392.1

    A

    1000-484X(2017)04-0498-05

    ②通訊作者,E-mail:minxinwen@163.com;E-mail:chenjun0121@126.com。

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