一株產(chǎn)菌核曲霉的分離鑒定及生物學(xué)特性研究

寧露娟，韓建榮，敖新宇

（1.西南林業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院，云南昆明650224；2.山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院，山西太原030006）

一株產(chǎn)菌核曲霉的分離鑒定及生物學(xué)特性研究

寧露娟1，韓建榮2，敖新宇1

（1.西南林業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院，云南昆明650224；2.山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院，山西太原030006）

從20種森林土樣中共分離出78株曲霉，其中，從四川省南充市西充縣華光鄉(xiāng)柏樹根部土壤中分離得到產(chǎn)菌核曲霉N1菌株；通過對(duì)菌落形態(tài)、個(gè)體形態(tài)特征觀察及ITSrDNA序列分析，將N1菌株鑒定為黃曲霉原變種（Aspergillus flavus var.flavus）。生物學(xué)特性研究結(jié)果表明，CYA和CA為N1菌株產(chǎn)菌核的最適培養(yǎng)基，N1菌株的最適產(chǎn)菌核溫度為30℃，最適產(chǎn)菌核pH值是6；培養(yǎng)基的碳氮源對(duì)菌核生物量有一定影響，最優(yōu)碳源為蔗糖，最優(yōu)氮源為蛋白胨，培養(yǎng)基中含碳量在9.88～39.53 g/L、含氮量在0.42～0.84 g/L時(shí)，菌核生物量最大；無機(jī)鹽對(duì)N1菌株菌核生物量也具有明顯的影響作用。

曲霉；菌核；ITS；生物學(xué)特性

曲霉（Aspergillus）屬于半知菌亞門（Deuteromycotina）絲孢綱（Hyphomycetes）絲孢目（Moniliates）叢梗孢科（Moniliaceae），其廣泛分布在谷物、空氣、土壤和各種有機(jī)物品上，是引起多種物質(zhì)霉腐的主要微生物之一，主要作用是釀酒、制醋等。曲霉在幼小而活力旺盛時(shí)，菌絲體產(chǎn)生大量的分生孢子梗，分生孢子梗頂端膨大成為頂囊，一般呈球形。頂囊表面長滿1層或2層輻射狀小梗（初生小梗與次生小梗），其中，最上層小梗瓶狀，頂端著生成串的球形分生孢子[1]，孢子呈綠、黃、橙、褐、黑等顏色。這些都是菌種鑒定的依據(jù)[2]。曲霉屬的某些種能產(chǎn)生菌核結(jié)構(gòu)。

菌核[3]是真菌生長到一定階段，菌絲體不斷地分化，相互糾結(jié)在一起形成的顏色較深而堅(jiān)硬的菌絲體組織顆粒，同時(shí)它又是糖類和脂類等營養(yǎng)物質(zhì)的儲(chǔ)藏體。菌核形態(tài)多樣，色澤和大小差異也很大，大菌核可達(dá)15 kg，而小菌核只有小米粒大小或者更小。

由于能形成菌核的絲狀真菌中有很多是很重要的植物病原體，因而其在農(nóng)業(yè)科學(xué)方面引起了十分廣泛的研究。同時(shí)，在生物科學(xué)方面，絲狀真菌菌核的形成也引起了眾多學(xué)者的興趣，這是因?yàn)樗鼈儽豢醋魇蔷诵螒B(tài)變異簡單形式的代表，這使得它們成為研究菌核形態(tài)變異這個(gè)生物現(xiàn)象的重要模型，而菌核形態(tài)變異的機(jī)制也為代替?zhèn)鹘y(tǒng)有毒殺菌劑提供了新的可能。通常，這些真菌在不利的環(huán)境條件下可以存活很長時(shí)間，具有較強(qiáng)的耐化學(xué)性和抗生物降解性[4-6]。產(chǎn)菌核真菌為了抵御來自自然環(huán)境中各種各樣導(dǎo)致氧脅迫的不良因素，就會(huì)形成菌核，并進(jìn)化出一套有效的抗氧化系統(tǒng)來維持細(xì)胞內(nèi)氧化還原的動(dòng)態(tài)平衡[7]。因而，一般情況下，菌核具有較高的抗氧化活性，可以為利用產(chǎn)菌核曲霉開發(fā)相關(guān)天然抗氧化劑產(chǎn)品提供一定理論依據(jù)。

本試驗(yàn)對(duì)20種不同森林土壤樣品中的產(chǎn)菌核曲霉進(jìn)行了選擇性分離，并對(duì)分離到的菌株運(yùn)用形態(tài)特征觀察、核糖體內(nèi)轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)（ITS）序列分析進(jìn)行分類鑒定和生物學(xué)特性研究，旨在發(fā)現(xiàn)更多的產(chǎn)菌核曲霉，并初步確定其產(chǎn)菌核的適宜條件。

1 材料和方法

1.1 土樣采集

土壤樣品分別采自四川省南充市、云南省昆明市、山西省忻州市和太原市、貴州省都勻市和安順市、黑龍江省佳木斯市等20個(gè)地區(qū)針葉林根部表面10～20 cm處土壤。

1.2 分離和形態(tài)觀察培養(yǎng)基[8-9]

曲霉分離培養(yǎng)基為馬丁氏培養(yǎng)基。

采用查氏酵母膏瓊脂培養(yǎng)基（CYA）、麥芽汁瓊脂培養(yǎng)基（MEA）、查氏瓊脂培養(yǎng)基（CA）、馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基（PDA）、25%甘油硝酸鹽瓊脂培養(yǎng)基（G25N）作為形態(tài)觀察培養(yǎng)基。

1.3 產(chǎn)菌核曲霉的分離純化及形態(tài)觀察

將土壤樣品梯度稀釋，涂布法均勻涂布于馬丁氏平板上，每梯度3個(gè)平板，倒置于25℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3～5 d后挑取曲霉三點(diǎn)式接種于CA平板上，14 d后篩選出產(chǎn)菌核曲霉菌株，經(jīng)多次分離純化得到純菌株，編號(hào)并保存于4℃冰箱。將產(chǎn)菌核曲霉三點(diǎn)式分別接種到CYA，MEA，CA，PDA和G25N平板上，于25℃培養(yǎng)箱內(nèi)倒置培養(yǎng)14 d，按照文獻(xiàn)[1，10]的方法，觀察產(chǎn)菌核曲霉的菌落形態(tài)特征，顯微鏡檢其分生孢子頭、頂囊及菌核等個(gè)體形態(tài)特征。

1.4 產(chǎn)菌核曲霉的ITS序列分析與分類鑒定

配制CA培養(yǎng)基，待培養(yǎng)基凝固后向培養(yǎng)基表面平整地鋪入玻璃紙，在玻璃紙上接種產(chǎn)菌核曲霉，于25℃培養(yǎng)箱內(nèi)倒置培養(yǎng)3～5 d，收集玻璃紙上的菌絲體，烘干備用。使用Ezup柱式真菌基因組DNA抽提試劑盒（上海生工生物工程股份有限公司）提取產(chǎn)菌核曲霉的DNA，通用引物ITS1和ITS4作為rDNA ITS區(qū)段PCR擴(kuò)增的引物，PCR反應(yīng)體系及PCR循環(huán)條件列于表1，2。擴(kuò)增完成后，取0.5 μL PCR產(chǎn)物，與1.5 μL含有Mg2+的Loading Buffer混合，Marker 5 μL，1%瓊脂糖電泳，150 V，100 mA，20 min后用UV凝膠成像系統(tǒng)電泳觀察并保存圖片。PCR產(chǎn)物送至生工生物工程（上海）股份有限公司進(jìn)行測序，將獲得的結(jié)果在GenBank數(shù)據(jù)庫進(jìn)行BLAST比對(duì)和同源性分析。

表1 PCR反應(yīng)體系

表2 PCR循環(huán)條件

1.5 產(chǎn)菌核曲霉的生物學(xué)特性研究[11-13]

1.5.1 最適培養(yǎng)基測定 配制CYA，MEA，CA，PDA和G25N培養(yǎng)基，將產(chǎn)核曲霉的單個(gè)菌核三點(diǎn)式接種法接種到上述5種平板上，于25℃培養(yǎng)箱內(nèi)倒置培養(yǎng)14 d，觀察菌落生長情況，測量菌落大小，測定菌核干質(zhì)量，確定產(chǎn)菌核的最適培養(yǎng)基。

1.5.2 最適產(chǎn)菌核溫度測定[8]將產(chǎn)菌核曲霉單個(gè)菌核三點(diǎn)式接種到CYA平板上，培養(yǎng)溫度分別設(shè)定為15，20，25，30，35℃，培養(yǎng)14 d后收集菌核并測定菌核干質(zhì)量，確定產(chǎn)菌核的最適溫度。

1.5.3 最適產(chǎn)菌核pH值測定 用1 mol/L NaOH和1 mol/L HCl調(diào)節(jié)CYA的pH值，使其pH值分別為4，5，6，7，8，9，10。將產(chǎn)菌核曲霉的單個(gè)菌核三點(diǎn)式接種到配制好的CYA平板上，倒置于30℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)14 d，觀察記錄菌落的生長狀況并收集測定菌核干質(zhì)量，確定產(chǎn)菌核的最適pH值。

1.5.4 最適碳源、氮源測定 分別用葡萄糖、乳糖、麥芽糖、可溶性淀粉和果糖代替CA中的蔗糖；分別用硝酸銨、硫酸銨、氯化銨、蛋白胨和酵母膏代替CA中的硝酸鈉。將產(chǎn)菌核曲霉的單個(gè)菌核三點(diǎn)式接種到配制好的平板上，倒置于30℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)14 d并測定菌核干質(zhì)量，確定最適宜產(chǎn)菌核的碳、氮源。

1.5.5 最適碳源、氮源濃度測定 在CA中分別加入蔗糖11.735，23.47，46.94，93.88，187.76 g/L，使得CA中含碳量分別為4.94，9.88，19.76，39.53，79.06 g/L，C/N分別為10∶1，20∶1，40∶1，80∶1，160∶1。在CA中分別加入硝酸鈉10.23，5.11，2.56，1.70，1.02 g/L，使得CA中含氮量分別為1.69，0.84，0.42，0.28，0.17 g/L，C/N分別為7.5∶1，15∶1，30∶1，45∶1，75∶1。將產(chǎn)菌核曲霉的單個(gè)菌核三點(diǎn)式接種到配制好的平板上，倒置于30℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)14 d并測定菌核干質(zhì)量，確定產(chǎn)菌核的最適碳源、氮源濃度和C/N。

1.5.6 無機(jī)鹽利用試驗(yàn) 將CA中的磷酸氫二鉀、硫酸鎂、氯化鉀和硫酸亞鐵按照不同組合進(jìn)行添加，將產(chǎn)菌核曲霉的單個(gè)菌核三點(diǎn)式接種到配制好的平板上，倒置于30℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)14 d并測定菌核干質(zhì)量，觀察不同無機(jī)鹽組合形式對(duì)產(chǎn)菌核曲霉生長情況及菌核生物量的影響作用。

1.6 菌核干質(zhì)量測定

用自來水沖洗平板，將曲霉菌株的孢子沖去并刮洗所形成的菌核，將菌核反復(fù)沖洗干凈后放置于60℃烘箱烘干，記錄菌核干質(zhì)量。

1.7 數(shù)據(jù)分析

以上試驗(yàn)均設(shè)3次重復(fù)，數(shù)據(jù)用SPSS 17.0進(jìn)行處理；取3次數(shù)據(jù)的平均值，結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示；用Duncan多重比較法[14]進(jìn)行多個(gè)均數(shù)間兩兩比較的顯著性檢驗(yàn)。

2 結(jié)果與分析

2.1 產(chǎn)菌核曲霉的分離結(jié)果

從20種土壤樣品中共分離得到78株曲霉菌株，其中，產(chǎn)菌核霉菌一株，命名為N1。該菌株分離自四川省南充市西充縣華光鄉(xiāng)的柏樹根部土壤樣品，采集地點(diǎn)東經(jīng)106°1′4.27″、北緯37°48′12.78″，海拔395 m。

2.2 N1菌株的菌落形態(tài)和個(gè)體形態(tài)觀察結(jié)果

N1菌株在CYA培養(yǎng)基上于25℃培養(yǎng)6 d后，菌落直徑為58～63 mm，菌落中央灰綠色呈絮狀突起，菌落表面聚集大量墨綠色分生孢子，菌落邊緣為白色菌絲，孢子底部間隙處有黑色菌核產(chǎn)生，菌核表面有滲出液，菌落邊緣可見大量白色未成熟菌核（圖1-A）；培養(yǎng)基背面可見菌落腐蝕培養(yǎng)基形成放射狀溝紋，菌落中心形成菌核處顯現(xiàn)黑褐色斑點(diǎn)（圖1-A′）。培養(yǎng)第14天，菌落直徑59～69 mm，菌落表面均勻分布完全成熟的黑色菌核，滲出液消失（圖2-A）；培養(yǎng)基背面均勻分布大量黑褐色斑點(diǎn)，有放射狀溝紋（圖2-A′）。

Nl菌株在MEA培養(yǎng)基上于25℃培養(yǎng)6 d后，菌落直徑為52～58 mm，深綠色絮狀突起，菌落中央可見少量黑色菌核，無滲出液，菌落邊緣為白色菌絲夾雜白色未成熟菌核（圖1-B）；菌落背面平坦，顯現(xiàn)大量白色斑點(diǎn)，菌落邊緣分布密集（圖1-B′）。培養(yǎng)第14天，菌落直徑為53～64 mm，菌落表面均勻分布完全成熟的黑色菌核及未完全成熟的深褐色菌核，未成熟菌核有滲出液（圖2-B）；培養(yǎng)基背面平坦，較第6天時(shí)顏色變深呈淺褐色，白色斑點(diǎn)變少（圖2-B′）。

N1菌株在PDA培養(yǎng)基上于25℃培養(yǎng)6 d后，菌落直徑為43～48 mm，菌落中央為環(huán)形白色絮狀突起，菌落表面聚集大量深綠色分生孢子，菌落中心可見少量深褐色未成熟菌核，有滲出液，菌落邊緣為白色菌絲夾雜白色未成熟菌核（圖1-C）；培養(yǎng)基背面平坦，菌落邊緣分布白色斑點(diǎn)（圖1-C′）。培養(yǎng)第14天，菌落直徑為52～60 mm，菌落邊緣及菌落中心絮狀環(huán)帶處分布少量完全成熟的黑色菌核及未完全成熟的深褐色菌核，未成熟菌核有滲出液（圖2-C）；培養(yǎng)基背面平坦，較第6天時(shí)顏色略深呈淺黃褐色（圖2-C′）。

N1菌株在CA培養(yǎng)基上于25℃培養(yǎng)6 d后，菌落直徑為37～42 mm，菌落表面中心聚集黃綠色分生孢子，菌落表面形成大量黑褐色菌核，伴隨有淺褐色滲出液，菌落中心滲出液形成小液珠，菌落邊緣可見白色菌絲夾雜少量未成熟菌核（圖1-D）；培養(yǎng)基背面平坦，顏色為淺黃褐色（圖1-D′）。培養(yǎng)第14天，菌落直徑為39～48 mm，菌落中心聚集大量黃綠色分生孢子，菌落邊緣可見白色菌絲，滲出液消失（圖2-D）；菌落背面平坦，顏色較第6天時(shí)加深呈淡黃褐色（圖2-D′）。

N1菌株在G25N培養(yǎng)基上于25℃培養(yǎng)6 d，生長緩慢，菌落直徑為11～15 mm，呈長毛狀突起，菌落中心可見少量淡黃色分生孢子，未見菌核產(chǎn)生（圖1-E）；培養(yǎng)基背面可見菌落中心形成環(huán)狀溝紋（圖1-E′）。培養(yǎng)第14天，菌落直徑為24～33 mm，深黃綠色菌絲呈絮狀突起，菌落邊緣為黃色菌絲，未產(chǎn)生菌核（圖2-E）；菌落背面可見放射狀溝紋（圖2-E′）。

N1菌株在CYA，MEA，PDA及CA培養(yǎng)基上生成的菌核多為近球形（圖3），直徑為476～520 μm。N1菌株的分生孢子頭呈輻射形，291～342 μm；分生孢子梗直徑10.8～13.3 μm，壁粗糙，具小刺；頂囊球形或燒瓶形，直徑29.7～33.5 μm，產(chǎn)孢結(jié)構(gòu)單層或雙層；分生孢子為球形或近球形，3.5～3.8 μm（圖4）。

2.3 N1菌株的ITS序列分析與分類鑒定

N1菌株的rDNA ITS區(qū)段PCR擴(kuò)增得到1條單一的目的條帶（圖5），N1菌株的ITS序列長度大于500 bp。

N1菌株rDNA ITS區(qū)段測序后，經(jīng)編輯，長度為568 bp，在GenBank數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對(duì)顯示，N1菌株ITS序列與黃曲霉原變種和米曲霉原變種的同源性都為100%。結(jié)合N1菌株的形態(tài)學(xué)特征，根據(jù)中國真菌志[8]中的描述，并將N1菌株鑒定為黃曲霉原變種（Aspergillus flavus var.flavus）。登錄號(hào)：KX572367。

2.4 N1菌株的生物學(xué)特性確定

2.4.1 最適培養(yǎng)基 N1菌株在CYA，MEA，PDA上生長迅速，培養(yǎng)6 d時(shí)，菌落直徑都在60 mm左右，在CA上菌核出現(xiàn)及成熟的時(shí)間最短，而在G25N培養(yǎng)基上生長最緩慢并且沒有菌核產(chǎn)生。從表3可以看出，在CYA和CA上形成的菌核量較大，所以本試驗(yàn)條件中，將CYA和CA作為N1菌株的最適培養(yǎng)基及最適產(chǎn)菌核培養(yǎng)基。

表3 N1菌株在CYA，MEA，PDA，CA，G25N培養(yǎng)14 d的菌核生物量

2.4.2 最適產(chǎn)菌核溫度 N1菌株在15～35℃溫度范圍內(nèi)均能生長，在25～35℃生長較快，30℃時(shí)生長最快。從表4可以看出，20～35℃范圍內(nèi)，N1菌株均能形成菌核，30℃時(shí)形成菌核的時(shí)間最短，3 d即有成熟菌核產(chǎn)生，且菌核生物量最高；15～20℃菌株生長緩慢，20℃時(shí)9～10 d出現(xiàn)菌核；15℃時(shí)未形成菌核?？梢?，溫度過低不利于菌落生長及菌核的形成，N1菌株最適產(chǎn)菌核溫度為30℃。

表4 不同培養(yǎng)溫度對(duì)N1菌株菌核生物量的影響

2.4.3 最適pH值 N1菌株在pH值為4～10的范圍內(nèi)均能生長且產(chǎn)生菌核，其中，pH值為4時(shí)培養(yǎng)基呈液體，有菌核產(chǎn)生；pH值為5時(shí)培養(yǎng)基呈半固體，菌落生長迅速，產(chǎn)生大量菌核；pH值為6～8時(shí)菌株生長最快，菌核成熟時(shí)間最短；pH為9和10時(shí)，菌落表面分生孢子很少，菌核成熟速度較快。pH值為6～7時(shí)，菌核生物量最大（表5），說明中偏酸性的pH條件有利于N1菌株生長發(fā)育且形成大量菌核。

表5 不同pH值對(duì)N1菌株菌核生物量的影響

2.4.4 碳氮源利用 由表6可知，CA中不同的碳源、氮源對(duì)菌核生物量有一定影響，在試供的6種碳源中，使N1菌株菌核生物量最高的是蔗糖，最低的是乳糖；在6種氮源中，使N1菌株菌核生物量最高的是蛋白胨，當(dāng)硫酸銨或氯化銨作為培養(yǎng)基的唯一氮源時(shí)，菌落生長緩慢，且無菌核產(chǎn)生。所以在本試驗(yàn)條件下，葡萄糖為N1菌株最適碳源，蛋白胨為N1菌株最適氮源。

表6 不同碳源、氮源對(duì)N1菌株菌核生物量的影響

從表7可以看出，當(dāng)CA中氮源濃度保持不變、改變碳源濃度時(shí)，菌核生物量有所變化，不同碳源濃度均能使N1菌株形成菌核，在含碳量為9.88～39.53 g/L，C/N為（20∶1）～（80∶1）范圍內(nèi)，菌核生物量較高；同樣，在碳源濃度保持不變、改變氮源濃度的情況下，N1菌株的菌核生物量也各不相同，當(dāng)含氮量為0.42～0.84 g/L，C/N為（30∶1）～（15∶1）時(shí)，N1菌株可以形成大量菌核。綜上可知，含碳量及含氮量過高或過低時(shí)，都不利于菌核形成；培養(yǎng)基中含碳量在9.88～39.53 g/L、含氮量在0.42～0.84 g/L時(shí)，N1菌株可以形成大量菌核。2.4.5 無機(jī)鹽利用 由表8可知，無機(jī)鹽對(duì)N1菌株菌核生物量具有明顯的影響作用，除CA原配方外，在不同的添加組合中，K2HPO4＋MgSO4，K2HPO4＋MgSO4＋KCl，K2HPO4＋MgSO4＋FeSO4菌核生物量較大，說明培養(yǎng)基中必須同時(shí)有K2HPO4和MgSO4才能產(chǎn)生大量菌核，表明K2HPO4和MgSO4是N1菌株產(chǎn)菌核所必需的無機(jī)鹽，在沒有MgSO4的條件下，F(xiàn)eSO4與K2HPO4同時(shí)存在亦能產(chǎn)生少量菌核，而其余添加組合均未形成菌核。

表7 不同碳源濃度和氮源濃度對(duì)菌核生物量的影響

表8 無機(jī)鹽對(duì)N1菌株菌核生物量的影響

3 討論

N1菌株在CYA，PDA，CA培養(yǎng)基上生長時(shí)，未成熟菌核表面有滲出液，當(dāng)菌核完全成熟后滲出液消失。霉菌菌株滲出液中含有無機(jī)鹽離子、蛋白質(zhì)、葡萄糖及一些酶類[15]，由此猜想，N1菌株滲出液的某些物質(zhì)是否與菌核發(fā)育有關(guān)，尚待深入研究。

韓建榮等[16-18]分離得到能產(chǎn)生橙紅色菌核的湯姆青霉PT95菌株和能產(chǎn)生橘紅色菌核的湯姆青霉Q1菌株，其產(chǎn)生的菌核內(nèi)可以積累類胡蘿卜素。N1菌株所產(chǎn)生的黑色菌核是否也積累某種生物活性物質(zhì)，還需要對(duì)N1菌株菌核中的色素進(jìn)行分離提取和鑒定。

菌核具有較強(qiáng)的抵抗不良環(huán)境的能力，菌核的形成有助于該真菌在沒有能力降低由不良環(huán)境條件導(dǎo)致氧脅迫的情況下度過不良的生長環(huán)境。CHET等[19]做了諸多環(huán)境因素對(duì)菌核萌發(fā)影響的實(shí)驗(yàn)，結(jié)果證明，菌絲體在與化學(xué)物質(zhì)相接觸或與其他微生物相互作用時(shí)，容易導(dǎo)致菌核的形成。GEORGIOU等[20-21]對(duì)菌核分化進(jìn)行了深入研究，證明了真菌的菌核分化過程中伴隨著高度的脂質(zhì)過氧化，活性氧（ROS）可以誘導(dǎo)菌核的分化。我們在培養(yǎng)基中添加能導(dǎo)致氧脅迫的外源物質(zhì)，是否會(huì)對(duì)N1菌株的菌核分化有所影響以及是否可以進(jìn)一步提高菌核生物量，還有待進(jìn)一步研究。

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Study on Isolation and Identification of One Aspergillus Strain Producing Sclerotia and Analysis of Its Biological Characteristics

NINGLujuan1，HANJianrong2，AOXinyu1

（1.College ofLife Science，Southwest Forestry University，Kunming 650224，China；2.College ofLife Science，Shanxi University，Taiyuan 030006，China）

Seventy-eight Aspergillus strains were isolated from 20 forest soil samples.One of them could produce sclerotia,which was isolated from the cypress trees soil in Huaguang township,Xichong county,Nanchong city,Sichuan province,named N1.By observing the colonial,individual characteristics and the analysis of ITSrDNA sequence,N1 strain was initially identified to Aspergillus flavus var.flavus.The result ofbiological characteristics showed that the suitable medium for N1 strain producing sclerotia was CYA and CA.The optimum culture temperature for strain N1 was 30℃and the optimum pH was 6.Carbon and nitrogen sources in medium had certain effect on sclemtial biomass of strain N1.The best carbon source was sucrose and the best nitrogen source was peptone.The medium containing 9.88～39.53 g/L carbon and 0.42～0.84 g/L nitrogen,the sclerotia biomass of strain N1 was the largest.Inorganic salts also had obvious effects on sclerotial biomass ofstrain N1.

Aspergillus;sclerotium;ITS;biological characteristics

TQ925＋.7

A

1002-2481（2017）03-0365-07

10.3969/j.issn.1002-2481.2017.03.12

2016-10-19

云南省優(yōu)勢特色重點(diǎn)學(xué)科生物學(xué)一級(jí)學(xué)科建設(shè)項(xiàng)目（50097505）

寧露娟（1991-），女，山西太原人，在讀碩士，研究方向：生物化學(xué)與分子生物學(xué)。敖新宇為通信作者。