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    微生物肥料高效解磷菌篩選及解磷機理探究

    2017-04-05 18:30:51任友花王羿超李娜李雪殷海松
    江蘇農業(yè)科學 2016年12期
    關鍵詞:高效液相色譜

    任友花 王羿超++李娜 李雪++殷海松

    摘要:芽孢桿菌已被廣泛應用于微生物肥料的生產。以巨大芽孢桿菌11433作為出發(fā)菌株,對其進行紫外誘變,根據平板解磷圈直徑與菌落直徑比值進行初篩,再根據解磷能力進行復篩,并最終獲得一株高效解磷菌。該菌株的搖瓶試驗結果表明,發(fā)酵3 d后,pH值從7.00降到了4.03,其解磷含量可達到46.79 μg/mL,較出發(fā)菌株11433的產量提高了115.62%,且其遺傳穩(wěn)定性良好。以得到的高產菌11433-D作為研究對象,對其解磷機理進行分析。發(fā)現有機酸的產生促進了解磷量的提高且使發(fā)酵液pH值降低。氣相色譜質譜和高效液相色譜檢測發(fā)現,巨大芽孢桿菌發(fā)酵液中的主要代謝產物為葡萄糖酸、乙酸、丙酸。

    關鍵詞:巨大芽孢桿菌;誘變育種;解磷機理;高效液相色譜

    中圖分類號: S182文獻標志碼: A

    文章編號:1002-1302(2016)12-0537-03

    收稿日期:2015-10-21

    基金項目:天津市科技計劃(編號:14ZCZDTG0025)。

    作者簡介:任友花(1989—),女,山東臨沂人,碩士研究生,主要研究方向微生物發(fā)酵制劑。E-mail:renyouhua123456@163.com。

    通信作者:喬長晟,博士,教授,主要研究方向為生物高分子及食品生物學。Tel:(022)25328451;E-mail:qiaochangsheng@tust.edu.cn。

    磷在農業(yè)中起到重要作用,土壤有效磷的缺乏導致植物減產[1-2]。磷肥的施用能夠促進各種代謝正常進行,植物生長發(fā)育良好,同時可提高植物的抗寒性和抗旱性。肥料中70%以上的水溶性磷與土壤中的Ca2+、Fe3+、Al3+等結合,轉化為難溶性磷酸鹽,很難被植物吸收利用[3]。然而巨大芽孢桿菌不但能分解有機磷物質,而且也能分解難溶性磷化合物[4]。因此,在農業(yè)上常被用來做磷細菌肥料。

    紫外線是一種使用最早、沿用最久、應用廣泛、效果明顯的物理誘變劑。盡管幾十年來,不斷有各種新的誘變劑出現和應用于誘變育種,但到目前為止,經誘變處理后得到的微生物肥料高產菌中,有80%左右是通過紫外線誘變后篩選獲得的。紫外線迄今仍然是微生物育種中最常用和有效的誘變劑之一[5-6]。盧金珍等研究表明,采用蒙金娜有機磷培養(yǎng)基對巨大芽孢桿菌進行紫外誘變,其解磷能力達到16.85 mg/mL,比出發(fā)菌株提高了117.7%[7]。

    微生物溶解無機磷的機理復雜,研究認為,一些微生物解磷主要是其分泌質子的溶解作用,另一些猜測認為是小分子有機酸的酸溶和螯合作用。虞偉斌等研究表明,有機酸的螯合作用是解磷菌K3解磷的主要機理[8]。研究表明,巨大芽孢桿菌有機酸主要代謝產物是葡萄糖酸、乳酸和乙酸[9]。伊鋆研究發(fā)現,產氣腸桿菌在溶磷過程中可能是主要通過增強細胞內TCA循環(huán)而增加體系能量,從而獲得較多種類和含量的有機酸[10]。

    本試驗以解磷能力較強的巨大芽孢桿菌11433為出發(fā)菌株,進行紫外誘變,獲得高效解磷菌株,進而對解磷菌發(fā)酵液中的有機酸與溶磷量的關系進行了探索,為該菌株在微生物肥料中的應用提供理論依據。

    1材料與方法

    1.1試驗主要儀器(表1)和主要試劑

    衍生化試劑:甲氧基銨鹽酸鹽/吡啶溶液(色譜純,Fluka公司),色譜純N-甲基-N-(三甲基硅烷)三氟乙酰胺(MSTFA),(購自Fluka公司);色譜純吡啶(純度:99.8%),購自美國Sigma公司。試驗用水為Milli-Q超純水。葡萄糖酸、乙酸、檸檬酸等標準樣品,分析純。

    1.2菌株與培養(yǎng)基

    菌種來源:巨大芽孢桿菌11433,中國普通微生物菌種保藏管理中心,編號1.223。

    營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L,牛肉膏5 g/L,氯化鈉 5 g/L,瓊脂20 g/L,pH值7.0~7.2,121 ℃ 20 min滅菌。

    種子培養(yǎng)基:葡萄糖10 g/L,K2HPO4·3H2O 6 g/L,KH2PO4 3 g/L,尿素1.5 g/L,酵母粉1 g/L,MgSO4·7H2O 041 g/L,pH值 7.0,121 ℃ 20 min滅菌。

    無機磷發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖10 g/L,(NH4)2SO4 0.5 g/L,NaCl 0.3 g/L,KCl 0.3 g/L,MgSO4·7H2O 0.3 g/L,FeSO4·7H2O 0.03 g/L,MnSO4·H2O 0.03 g/L,Ca3(PO4)2 5 g/L,pH值70~7.5,121 ℃ 20 min 滅菌。

    無機磷固體培養(yǎng)基:葡萄糖10 g/L,(NH4)2SO4 0.5 g/L,NaCl 0.3 g/L,KCl 0.3 g/L,MgSO4·7H2O 0.3 g/L,FeSO4·7H2O 0.03 g/L,MnSO4·H2O 0.03 g/L,Ca3(PO4)2 5 g/L,瓊脂 20 g/L,pH值7.0~7.5,121 ℃ 20 min滅菌。

    1.3高效解磷菌的篩選

    1.3.1種子液制備將4 ℃斜面保存的巨大芽孢桿菌活化,將其分別劃線于營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基上,37 ℃培養(yǎng)24 h,挑取活化的菌落,接于種子培養(yǎng)基,37 ℃、200 r/min培養(yǎng)20 h。

    1.3.2發(fā)酵培養(yǎng)

    將種子液按5%接種量接入無機磷發(fā)酵培養(yǎng)基,37 ℃、200 r/min搖床培養(yǎng)4 d,同時設置不接種作為對照培養(yǎng)。

    1.3.3菌株的誘變處理方法

    菌株的誘變處理采用紫外誘變方法,誘變處理的流程為:出發(fā)菌株孢子懸液→紫外誘變→根據解磷圈直徑與菌落直徑比值初篩→搖瓶復篩→斜面保存、遺傳穩(wěn)定性試驗。

    將磁力攪拌器置于功率為30 W的紫外燈下30 cm處,打開紫外燈,以穩(wěn)定波長預先照射20 min殺菌。無菌移液管移取 1 mL,放入盛有99 mL無菌水的三角瓶中,振蕩5 min充分搖勻,使細菌分散。將樣品稀釋成為10-2 CFU/mL菌懸液。取5 mL制作的孢子懸液于直徑7 cm帶有轉子的平皿中。將平皿放在誘變箱的磁力攪拌器上,開啟磁力攪拌器,打開皿蓋,分別照射0、15、30、45、60、75、90、120 s。將照射處理的孢子懸液分別進行梯度稀釋,取各照射劑量10-8~10-5稀釋度的孢子懸液0.1 mL分別涂布平皿,每個梯度做3個平行。37 ℃ 避光的環(huán)境下,將平皿倒置培養(yǎng)18~26 h,觀察平皿上解磷圈和菌落的生長情況。以未經紫外線處理(處理 0 s)的孢子懸浮液涂布的平皿作對比,計算致死率,以紫外照射時間為橫坐標,致死率為縱坐標繪制致死率曲線。

    1.3.4解磷菌的篩選

    1.3.4.1解磷菌的初篩

    根據誘變存活菌株在解磷培養(yǎng)基上形成的解磷圈直徑與菌落直徑比值觀察誘變效果,篩選比值大于出發(fā)菌株15%的為正突變,小于15%的為負突變,進行復篩。

    1.3.4.2解磷菌的復篩

    采用“1.3.1”節(jié)和“1.3.2”節(jié)的方法搖瓶培養(yǎng),加入0.5%質量濃度經酸洗堿洗后的無磷活性炭,發(fā)酵液15 000 r/min,離心10 min,取上清液,據國標NY 412—2000中所述方法以鉬銻抗比色法測定速效磷含量。以菌株發(fā)酵液含磷量減去不接菌的空白對照發(fā)酵液含磷量衡量菌株的解磷能力,同時測定菌株不同時間段的pH值變化。

    1.3.4.3遺傳穩(wěn)定性試驗

    將篩選出的高產菌株D在斜面培養(yǎng)基上連續(xù)轉接5代,根據鉬銻抗比色法測定有效磷含量,檢測其遺傳穩(wěn)定性。

    1.3.5種子生長曲線測定

    本試驗以菌株11433-D為研究對象,將甘油管保存的孢子懸液0.8 mL接種于種子培養(yǎng)基,37 ℃、200 r/min搖床培養(yǎng)18 h得到一級種子液。按2%的接種量將一級種子液接種至含300 μL培養(yǎng)基的生長板中,37 ℃條件下在全自動生長曲線分析儀上培養(yǎng)48 h,每隔2 h取樣測定1次D600 nm,3個平行樣。試驗結束后,根據培養(yǎng)過程中不同時間的吸光度,繪制D600 nm與培養(yǎng)時間(h)的關系曲線。

    1.4解磷機理的探討

    1.4.1氣相色譜-質譜聯用儀(GC-MS)測定有機酸

    無機磷發(fā)酵液離心—冷凍干燥—衍生化—氣質檢測。

    1.4.1.1樣品的處理

    取5 mL發(fā)酵液在10 000 r/min條件下離心10 min,取上清100 μL,加入10 μL內標混合液,混勻后真空冷凍干燥。

    1.4.1.2樣品的衍生化

    凍干后樣品加50 μL甲氧基銨鹽酸鹽/吡啶溶液(20 mg/mL),渦旋使凍干的樣品充分溶解,置于40 ℃水浴反應80 min;加80 μL MSTFA(N-甲基-N-(三甲基硅烷)三氟乙酰胺溶液,混合均勻,置于40 ℃水浴反應80 min;將衍生化后的樣品10 000 r/min離心5 min;取上清液100 μL裝于進樣瓶中,并編號,室溫放置2 h,準備進行GC-MS 檢測。

    1.4.1.3主要色譜條件

    色譜柱:硅色譜柱[DB-5MS,30 m (長)×0.25 mm(內徑)×0.25 μm(膜厚)],購自J&W Scientific,Folsom,CA,USA;進樣量:1 μL;采用柱后分流技術,分流比為1 ∶[KG-*3]10;載氣:高純氦氣(純度:99.999 5%),購自北京氦普北分氣體工業(yè)有限公司;恒壓模式:91 kPa;進樣口溫度:280 ℃;柱溫箱升溫程序:進樣后爐溫在 70 ℃ 保持 2 min,以5 ℃/min的速度升溫到290 ℃,保持 3 min,再降溫到70 ℃;GC-MS 接口溫度:280 ℃。

    1.4.1.4主要質譜條件

    電離方式:電子轟擊電離(EI+);離子源溫度:250 ℃;電子轟擊能量:70 eV;離子電流:40 μA;掃描質量范圍:50~800 m/z。

    1.4.2HPLC法測定有機酸

    1.4.2.1色譜條件

    高效液相色譜儀:Agilent technologies 1200 series;檢測器:紫外檢測器;色譜柱:Prevail有機酸柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相:磷酸調pH值至2.5的 25 mmol/L K2HPO4 溶液;流速:0.5 mL/min;檢測波長:210 nm;進樣量:5 μL;柱溫:20 ℃。

    發(fā)酵液中有機酸的測定:取發(fā)酵液5 mL,10 000 r/min離心,取上清液,稀釋10倍,過0.22 μm微孔濾膜,利用高效液相色譜測定所產有機酸。

    1.4.3測量指標

    對發(fā)酵液每隔12 h取樣測定1次,測定pH值、有機酸和有效磷含量,并且對發(fā)酵液進行平板計數。

    發(fā)酵液pH值用pH計測定。解磷能力據國標NY412—2000中鉬銻抗比色法測定有效磷含量。計數根據稀釋涂布平板法計數。有機酸采用儀器GC-MS和HPLC測定。

    2結果與分析

    2.1紫外誘變篩選高效解磷菌

    2.1.1紫外誘變的致死率曲線

    由圖1可見,紫外照射時間為45 s時,致死率達到了72%,當照射時間分別為15 s和30 s 時,致死率分別為30%和51%。對于不同的菌株,在不同的致死率下,其正突變率不容易確定,所以為了增加高效磷細菌篩選的概率,本研究采取高、中、低3個致死率下對應的照射時間45、30、15 s分別對菌株11433的孢子懸液進行處理,處理完畢后將3個致死率下的菌液混合均勻,用于高產菌株的篩選。

    2.1.2初篩、復篩高效解磷菌

    在照射功率為30 W、照射距離為30 cm條件下對11433進行紫外誘變,選取照射時間為15、30、45 s以及經照射后三者的混合液在黑暗條件下進行稀

    [TPQCS1.tif]

    釋涂布平板,分別標記為A、B、C和D。根據菌落在平板上產生的解磷圈直徑與菌落直徑的比值,篩選比值大于出發(fā)菌株[JP3]15%的為正突變,小于15%的為負突變,鑒定誘變效果(表1)。

    根據初篩菌株,選取表1中的正向突變菌株測定解磷能力。根據4個菌株的解磷能力,其中D菌株的解磷能力最強。結果發(fā)現,經搖床培養(yǎng)12 h誘變菌株的有效磷含量比出發(fā)菌株高出36%,培養(yǎng)24~72 h突變菌株D有效磷含量比出發(fā)菌株高出48%~115.62%,其中培養(yǎng)72 h有效磷含量達到最大,為46.79 μg/mL,比出發(fā)菌株高出115.62%。培養(yǎng) 72~84 h時,解磷能力有所下降,pH值也逐步升高(圖2)。

    2.1.3高產菌株11433-D的遺傳穩(wěn)定性試驗

    將篩選出的高產菌株D在斜面培養(yǎng)基上連續(xù)傳代5次,解磷量穩(wěn)定在43.29~46.71 μg/mL(表2),表明該菌株的遺傳性能穩(wěn)定。

    2.1.4菌株種子生長曲線的確定

    測定11433-D的生長曲線,有利于了解種子的生長狀態(tài),對指導發(fā)酵生產具有重要意義。從圖3可以看出,菌體在培養(yǎng)8 h左右達到對數生長期,根據試驗安排,選取處于對數生長期中期,18 h左右的種子液進行接種試驗,此時的種子液為乳白色,并具有特殊氣味,染色鏡檢時,菌絲體致密。

    [TPQCS3.tif]

    2.2解磷機理研究

    根據氣相色譜-質譜聯用儀的測定結果(表3),對發(fā)酵液中的有機酸進行分析,發(fā)現峰值最高的是葡萄糖酸,峰值最低的是乙酸,匹配度較高的是硬脂酸、棕櫚酸和葡萄糖酸,匹配度較低的是戊酸、2-丁烯酸。由于在解磷作用發(fā)揮主要功能的是小分子有機酸,所以對匹配度相對較高的有機小分子酸(葡萄糖酸、乙酸、丙酸、丁酸)進行液相分析,以期在發(fā)酵液中快速檢測到有機酸。結果發(fā)現,菌株產生3種有機酸,分別為葡萄糖酸、乙酸和丙酸。

    通過對解磷菌11433-D發(fā)酵液中解磷能力、活菌數進行檢測,發(fā)現0~12 h菌處于對數生長期,菌數快速增到8×109 CFU/mL,pH值下降到6.56,12~36 h菌體生長處于穩(wěn)定期,菌數維持在3×1010 CFU/mL,達到最大值,發(fā)酵液中有機酸以葡萄糖酸為主,此外,還有乙酸和丙酸。36~84 h主要產生葡萄糖酸,且36 h開始有少量乙酸分泌,48 h開始產生丙酸。發(fā)酵液pH值伴隨有機酸的分泌一直在下降。12~84 h發(fā)酵液中有效磷含量從12.25 μg/mL上升至46.58 μg/mL。試驗發(fā)現解磷量與pH值、小分子有機酸有關。

    3結論

    本研究采用紫外誘變對巨大芽孢桿菌進行誘變處理,獲得1株高效突變菌株11433-D,該菌株解磷量達 46.79 μg/mL,比出發(fā)菌株高出115.62%,經連續(xù)傳代5次,其遺傳穩(wěn)定性非常高。經GC-MS和HPLC檢測發(fā)現, 該菌能[CM(25]產生葡萄糖酸、乙酸和丙酸。有機酸的變化直接影響磷含[CM)]

    量的變化。試驗結果為更好地研究解磷菌在土壤中發(fā)揮作用奠定了一定的理論基礎。

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