紫萍休眠體的萌發(fā)誘導(dǎo)研究

李蘭芝++吳坤鑫++張家明

摘要：以紫萍DW2501-4和HB0301產(chǎn)生的休眠體為材料，利用單因子試驗(yàn)和正交試驗(yàn)研究不同蔗糖含量、不同的GA3濃度、不同的溫度和光照條件誘導(dǎo)紫萍休眠體萌發(fā)的最適條件。結(jié)果表明，在1%～5%質(zhì)量濃度蔗糖范圍內(nèi)，高的蔗糖質(zhì)量濃度會(huì)抑制休眠體的萌發(fā)，質(zhì)量濃度為1%、2%的蔗糖對(duì)DW2501-4和 HB0301休眠體萌發(fā)誘導(dǎo)效果最好。在20～32 ℃，DW2501-4休眠體在32 ℃下萌發(fā)效果最佳，HB0301休眠體在28 ℃下萌發(fā)效果最佳。在0～10 mg/L 范圍內(nèi)GA3能促進(jìn)DW2501-4和HB0301休眠體的萌發(fā)，最佳濃度為0.1 mg/L。DW2501-4和HB0301在光—暗周期為24 h—0 h和16 h—8 h下萌發(fā)勢(shì)最高，葉狀體數(shù)量最多。3種日照時(shí)間下萌發(fā)率差異不顯著，但長(zhǎng)日照可縮短休眠體萌發(fā)時(shí)間，促進(jìn)葉狀體繁殖。DW2501-4和HB0301-4休眠體的最佳萌發(fā)誘導(dǎo)條件是0.5倍 Hoaglands 培養(yǎng)基中添加1%蔗糖和0.1 mg/L的GA3，在28 ℃，光—暗周期為16 h—8 h的條件下培養(yǎng)。

關(guān)鍵詞：紫萍；休眠體；萌發(fā)；最佳條件

中圖分類號(hào)： Q945.1；S555+.901文獻(xiàn)標(biāo)志碼： A

文章編號(hào)：1002-1302（2016）12-0532-05

收稿日期：2016-05-19

基金項(xiàng)目：國(guó)家國(guó)際科技合作專項(xiàng)（編號(hào)：2014DFA30680）。

作者簡(jiǎn)介：李蘭芝（1990—），女，湖北廣水人，碩士研究生，研究方向?yàn)橹参锓肿舆z傳學(xué)，E-mail：317004873@qq.com；共同第一作者：吳坤鑫（1969—），男，福建永定人，博士，副研，研究方向作物遺傳育種，E-mail：wukunxin@itbb.org.cn。

通信作者：張家明，博士，研究員。研究方向?yàn)樯镔|(zhì)能源。E-mail：jmzhang@vip.163.com。

紫萍（Spirodela polyrrhiza （L.） Schleid.）屬于浮萍科（Lemnaceae）紫萍屬（Spirodela）。自然界中，夏末生長(zhǎng)季節(jié)結(jié)束時(shí)紫萍會(huì)產(chǎn)生休眠體（turion）[1]。紫萍產(chǎn)生的休眠體直徑大約為2 mm，呈橢圓形，灰褐色。上表面平滑，下表面微微凸出。新形成的休眠體會(huì)沉入水底進(jìn)行冬眠，經(jīng)歷一段時(shí)間的低溫冬眠后，春天隨著溫度上升，光照時(shí)間延長(zhǎng)，細(xì)胞內(nèi)碳水化合物的代謝發(fā)生變化，冬眠才會(huì)被打破，休眠體開(kāi)始萌發(fā)[2-3]。休眠體萌發(fā)時(shí)會(huì)從2個(gè)分生側(cè)囊中長(zhǎng)出新的營(yíng)養(yǎng)生殖葉片[4]。通過(guò)消耗休眠體內(nèi)積累的大量淀粉，新葉會(huì)快速生長(zhǎng)[4]。寒冷處理對(duì)紫萍休眠體進(jìn)行預(yù)催熟而更有利于休眠體的萌發(fā)，光照、充足的碳水化合物的供應(yīng)是促進(jìn)休眠體萌發(fā)的必要條件[5-7]。影響休眠體萌發(fā)的主要因子包括溫度、光照、營(yíng)養(yǎng)條件、GA3等[7-10]。在實(shí)驗(yàn)室內(nèi)紫萍的種質(zhì)資源也可利用休眠體進(jìn)行保種，研究休眠體快速萌發(fā)的條件是實(shí)驗(yàn)室紫萍保種研究的重要部分。本試驗(yàn)通過(guò)研究不同蔗糖含量、不同的GA3濃度、不同的溫度和光照條件對(duì)紫萍休眠體萌發(fā)的影響，以期為在實(shí)驗(yàn)室長(zhǎng)期保存紫萍種質(zhì)資源提供理論依據(jù)。

1材料和方法

1.1試驗(yàn)材料

試驗(yàn)材料選用本實(shí)驗(yàn)室保存的采自海南的紫萍 DW2501-4和湖北的紫萍HB0301。試驗(yàn)于2015年1—12月在中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院熱帶生物技術(shù)研究所試驗(yàn)基地溫室內(nèi)進(jìn)行。利用其無(wú)菌無(wú)藻的葉狀體，在含0.005 mg/L ABA的0.5倍缺氮的Hoaglands培養(yǎng)基，24 ℃，16 h—8 h光—暗周期條件下，誘導(dǎo)休眠體。將誘導(dǎo)出的休眠體放在4 ℃冰箱中黑暗處理7 d，再接種到固體培養(yǎng)基中進(jìn)行萌發(fā)誘導(dǎo)。本試驗(yàn)用含瓊脂8 g/L的0.5倍Hoaglands固體培養(yǎng)基，培養(yǎng)基pH值為5.8～6.0。

1.2試驗(yàn)方法

1.2.1單因子誘導(dǎo)試驗(yàn)

不同蔗糖含量誘導(dǎo)試驗(yàn)中，0.5倍Hoaglands 固體培養(yǎng)基作為對(duì)照組，用添加1%、2%、3%、5%（質(zhì)量濃度）蔗糖的0.5倍Hoaglands固體培養(yǎng)基進(jìn)行萌發(fā)誘導(dǎo)，培養(yǎng)條件為28 ℃，24 h光照。溫度試驗(yàn)中，溫度設(shè)置為20、24、28、32 ℃，添加1%蔗糖的0.5倍Hoaglands固體培養(yǎng)基中，24 h光照進(jìn)行萌發(fā)誘導(dǎo)。光照試驗(yàn)中，光—暗周期為8 h—16 h、16 h—8 h、24 h—0 h，添加1%蔗糖的0.5倍Hoaglands固體培養(yǎng)基中，28 ℃下進(jìn)行萌發(fā)誘導(dǎo)。GA3誘導(dǎo)試驗(yàn)中，在添加不同濃度的GA3（濃度設(shè)置為0.001、0.010、0.100、1.000、10.000 mg/L）的含1%蔗糖的0.5倍Hoaglands固體培養(yǎng)基中進(jìn)行誘導(dǎo)，培養(yǎng)條件為28 ℃，24 h光照。每個(gè)培養(yǎng)皿中接種20個(gè)休眠體，重復(fù)3次，置于光溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

1.2.2正交試驗(yàn)

進(jìn)行4因素3水平的L9（34）正交試驗(yàn)，各因素水平見(jiàn)表1。A因素是蔗糖質(zhì)量濃度，設(shè)1%、2%、3% 3個(gè)水平，B因素是GA3，設(shè)0.01、0.10、1.00 mg/L 3個(gè)水平，C因素是溫度，設(shè)24、28、32 ℃ 3個(gè)水平，D因素是光—暗周期，設(shè)8 h—16 h、16 h—8 h、24 h—0 h 3個(gè)水平。

每個(gè)皿接種20個(gè)休眠體，重復(fù)3次。根長(zhǎng)1 mm或者葉狀體直徑1 mm均視為萌發(fā)，每24 h觀察記錄休眠體萌發(fā)情況，記錄休眠體萌發(fā)情況和葉狀體生長(zhǎng)狀態(tài)，得到休眠體萌發(fā)誘導(dǎo)最佳條件。

1.2.3萌發(fā)測(cè)定指標(biāo)

萌發(fā)時(shí)滯，即萌發(fā)啟動(dòng)時(shí)間，指從萌發(fā)誘導(dǎo)試驗(yàn)開(kāi)始到第1個(gè)休眠體開(kāi)始萌發(fā)所需要的時(shí)間；萌發(fā)高峰：日萌發(fā)數(shù)達(dá)到最大時(shí)的天數(shù)；萌發(fā)持續(xù)時(shí)間，從休眠體開(kāi)始萌發(fā)到最后1個(gè)休眠體萌發(fā)所需的總天數(shù)；萌發(fā)勢(shì)=日萌發(fā)數(shù)最大時(shí)的總數(shù)/休眠體總數(shù)×100%；萌發(fā)率=7 d時(shí)休眠體萌發(fā)總數(shù)/休眠體總數(shù)×100%；葉狀體數(shù)：7 d時(shí)葉狀體總數(shù)。

1.3數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

采用Excel進(jìn)行數(shù)據(jù)處理，用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)分析軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)的方差分析與差異顯著性檢驗(yàn)。

2結(jié)果與分析

2.1蔗糖含量對(duì)紫萍休眠體萌發(fā)的影響

蔗糖含量對(duì)DW2501-4休眠體萌發(fā)的影響：如表2所示，在蔗糖含量為0、1%、2%、3%條件下，DW2501-4休眠體在第2 d開(kāi)始萌發(fā)；在蔗糖含量為5%條件下，休眠體在第3 d開(kāi)始萌發(fā)。在蔗糖含量為0條件下，休眠體在第4 d萌發(fā)達(dá)到高峰期，在蔗糖含量1%、2%、3%、5%條件下，依次在第 2 d、第3 d、第5 d、第5 d休眠體萌發(fā)達(dá)到高峰期；在蔗糖含量為0、1%、2%條件下，休眠體萌發(fā)持續(xù)9 d，3%、5%條件下，休眠體萌發(fā)持續(xù)11 d；在蔗糖含量為1%、2%條件下，葉狀體數(shù)顯著高于3%、5%。說(shuō)明在蔗糖含量為1%、2%條件下，能有效誘導(dǎo)DW2501-4休眠體萌發(fā)，3%和5%的蔗糖抑制DW2501-4休眠體萌發(fā)。

蔗糖含量對(duì)HB0301休眠體萌發(fā)的影響：如表3所示，在蔗糖含量為0、1%、2%、3%、5%條件下，HB0301休眠體均在在第2 d開(kāi)始萌發(fā)并達(dá)到高峰期；在蔗糖含量為0、1%、2%、3%條件下，休眠體全部萌發(fā)持續(xù)4 d，5%條件下，休眠體萌發(fā)持續(xù)6 d；在蔗糖含量為1%條件下，萌發(fā)勢(shì)、葉狀體數(shù)均顯著高于其他組，在2%條件下葉狀體數(shù)顯著高于0、3%、5%條件下，而在5%蔗糖下萌發(fā)勢(shì)和葉狀體數(shù)則顯著低于不含蔗糖的。說(shuō)明在蔗糖含量為1%、2%條件下，能有效誘導(dǎo)HB0301休眠體萌發(fā)；5%的蔗糖抑制HB0301休眠體萌發(fā)。

在1%～5%蔗糖含量范圍內(nèi)，高的蔗糖含量會(huì)抑制休眠體的萌發(fā)；含量為1%、2%的蔗糖對(duì)DW2501-4和 HB0301休眠體萌發(fā)誘導(dǎo)效果最好；在2%～5%蔗糖下，HB0301休眠體萌發(fā)高峰期早于DW2501-4，且萌發(fā)率和萌發(fā)勢(shì)高于DW2501-4。

2.2溫度的對(duì)紫萍休眠體萌發(fā)的影響

溫度對(duì)DW2501-4休眠體萌發(fā)的影響：如表4所示，在20 ℃下，DW2501-4休眠體在7 d時(shí)開(kāi)始萌發(fā)，在24 ℃下，休眠體在3 d時(shí)開(kāi)始萌發(fā)，在28、32 ℃下，休眠體在2 d時(shí)開(kāi)始萌發(fā)；在24、28、32 ℃下，休眠體依次在4、2、2 d達(dá)到休眠體[CM（25]萌發(fā)高峰期，在20[KG*3]℃下，萌發(fā)遲緩，誘導(dǎo)7[KG*3]d未出現(xiàn)高峰期；在24、28、32 ℃下，休眠體萌發(fā)持續(xù)時(shí)間依次為7、6、6 d；在32 ℃下萌發(fā)勢(shì)、葉狀體數(shù)均顯著高于其他組。由表5可見(jiàn)，在20 ℃下，HB0301休眠體在7 d時(shí)開(kāi)始萌發(fā)，在24 ℃下，休眠體在3 d時(shí)開(kāi)始萌發(fā)，在28、32 ℃下，休眠體在2 d時(shí)開(kāi)始萌發(fā)；在24、28、32 ℃下，休眠體依次在4、2、2 d達(dá)到休眠體萌發(fā)高峰期，在20 ℃下，萌發(fā)遲緩，誘導(dǎo)7 d未出現(xiàn)高峰期；在24、28、32 ℃下，休眠體萌發(fā)持續(xù)依次為5、4、4 d；HB0301在28、32 ℃下葉狀體數(shù)均顯著高于20、24 ℃。

[FK（W+32mm][HT6H][WTHZ][JZ]表5溫度對(duì)HB0301休眠體萌發(fā)的影響[HTSS]

[HJ*5][BG（！][BHDFG3，WK6，WK7。3，WK13。2，WK7W]溫度（℃）萌發(fā)時(shí)滯（d）萌發(fā)高峰（d）萌發(fā)持續(xù)時(shí)間（d）萌發(fā)勢(shì)（%）萌發(fā)率（%）葉狀體數(shù)（片）

[BHDG1*2，WK6，WK7。3，WK13。2DW，WK7W]20715.0±2.0b7±2c

[BHDW]2434560.0±2.0b100.0±0.0a58±4b

[BH]2822470.0±3.4a100.0±0.0a96±6a

[BH]3222465.0±4.1b100.0±0.0a92±4a[BG）F]

在20～32 ℃，大體上隨著溫度升高，休眠體萌發(fā)加快，葉狀體繁殖增多；雖然24～32 ℃萌發(fā)率一樣，但是28、32 ℃的萌發(fā)時(shí)滯和萌發(fā)高峰都要比24 ℃快；DW2501-4休眠體在32 ℃下萌發(fā)效果最佳，HB0301休眠體在28 ℃下萌發(fā)效果最佳。在24、28 ℃下，HB0301比DW2501-4所需萌發(fā)持續(xù)時(shí)間短，萌發(fā)勢(shì)高。

2.3GA3濃度對(duì)紫萍休眠體萌發(fā)的影響

GA3濃度對(duì)DW2501-4休眠體萌發(fā)的影響見(jiàn)表6。在0.000～10.000 mg/L范圍內(nèi)的幾個(gè)GA3試驗(yàn)濃度下，DW2501-4休眠體均在2 d時(shí)開(kāi)始萌發(fā)，并且在2 d時(shí)達(dá)到萌發(fā)高峰期；在GA3濃度為0.000 mg/L和0.001 mg/L時(shí)，休眠體萌發(fā)持續(xù)9 d，在GA3濃度為0.010 mg/L和0.100 mg/L時(shí)，休眠體萌發(fā)持續(xù)7 d，在GA3濃度為1.000 mg/L和 1000 mg/L 時(shí)，休眠體萌發(fā)持續(xù)4 d；在0.010～10.000 mg/L范圍內(nèi)的幾個(gè)GA3試驗(yàn)濃度下，萌發(fā)率和葉狀體數(shù)均顯著高于GA3濃度為0.000 mg/L時(shí)，說(shuō)明這幾個(gè)GA3濃度均對(duì)休眠體萌發(fā)起誘導(dǎo)作用。其中在10.000 mg/L濃度下，雖然萌發(fā)率高但葉狀體分化幾天后玻璃化。在GA3濃度為 0.100 mg/L 和1.000 mg/L時(shí)DW2501-4休眠體萌發(fā)勢(shì)、萌發(fā)率高，葉狀體總數(shù)多，生長(zhǎng)狀態(tài)最好。

GA3濃度對(duì)HB0301休眠體萌發(fā)的影響見(jiàn)表7。在0000～10.000 mg/L范圍內(nèi)的幾個(gè)GA3試驗(yàn)濃度下，HB0301休眠體均在2 d時(shí)開(kāi)始萌發(fā)，并且在2 d時(shí)達(dá)到萌發(fā)高峰期；在GA3濃度為0.000、0.010、0.100、1.000 mg/L時(shí)，休眠體萌發(fā)持續(xù)3 d，在GA3濃度為10.000 mg/L時(shí)，休眠體萌發(fā)持續(xù)4 d，葉狀體生長(zhǎng)受抑制且?guī)滋旌蟛ＡЩ?，在GA3濃度為0.001 mg/L時(shí)，休眠體萌發(fā)持續(xù)5 d；不同GA3濃度下，萌發(fā)率無(wú)差異，但GA3濃度為0.010 mg/L和0.100 mg/L時(shí)萌發(fā)勢(shì)、 葉狀體數(shù)均顯著高于 1.000 mg/L 和 10.000 mg/L時(shí)[CM（25]。說(shuō)明HB0301在GA3濃度為 0.100 mg/L 時(shí)萌發(fā)誘導(dǎo)效果最佳。

與不添加GA3相比在0.001～10.000 mg/L范圍內(nèi)GA3能促進(jìn)DW2501-4和HB0301休眠體的萌發(fā)，在GA3濃度為 0.100 mg/L 時(shí)休眠體萌發(fā)率高，葉狀體數(shù)最多，萌發(fā)效果最佳。

2.4光照時(shí)間對(duì)紫萍休眠體萌發(fā)的影響

由表8可見(jiàn)，在28 ℃，光—暗周期為24 h—0 h、16 h—8 h、8 h—16 h 下，DW2501-4休眠體在2 d時(shí)開(kāi)始萌發(fā)，且在2 d時(shí)達(dá)到休眠體萌發(fā)高峰期；光—暗周期為24 h—0 h時(shí)和16 h—8 h時(shí)休眠體萌發(fā)持續(xù)時(shí)間都是6 d，小于8 h—16 h的9 d，而在16 h—8 h時(shí)萌發(fā)勢(shì)最高，在24 h—0 h時(shí)產(chǎn)生的葉狀體數(shù)最多。從表9可知，在28 ℃，光—暗周期為24 h—0 h、16 h—8 h、8 h—16 h 下，HB0301休眠體在2 d時(shí)開(kāi)始萌發(fā)，且在2 d時(shí)達(dá)到休眠體萌發(fā)高峰期；在光—暗周期為 24 h—0 h和16 h—8 h下休眠體萌發(fā)持續(xù)時(shí)間都是4 d，小于8 h—16 h的5 d，而在 24 h—0 h 和16 h—8 h下萌發(fā)勢(shì)和葉狀體繁殖數(shù)量都要比 8 h—16 h 下高。總之，在上述3個(gè)光—暗周期下DW2501-4和HB0301中休眠體萌發(fā)率沒(méi)有顯著差異，但長(zhǎng)日照可縮短休眠體萌發(fā)持續(xù)時(shí)間，并促進(jìn)葉狀體繁殖。

2.5正交試驗(yàn)結(jié)果分析

由表10可知，在1～6號(hào)試驗(yàn)條件下，誘導(dǎo)7 d DW2501-4休眠體的萌發(fā)率均為100%，但在2號(hào)和3號(hào)試驗(yàn)條件下，萌發(fā)完全所需時(shí)間最少，3號(hào)試驗(yàn)條件下萌發(fā)勢(shì)最高，2號(hào)試驗(yàn)條件下葉狀體最多。從表11可知，在1～7號(hào)試驗(yàn)條件下，誘導(dǎo)7 d HB0301-4休眠體的萌發(fā)率均為100%，但在2號(hào)試驗(yàn)條件下，萌發(fā)完全所需時(shí)間少，萌發(fā)勢(shì)最高，葉狀體最多。

DW2501-4和HB0301-4休眠體的最佳誘導(dǎo)條件是，05倍Hoaglands固體培養(yǎng)基中添加1%蔗糖和0.100 mg/L的GA3，在28 ℃，光—暗周期為16 h—8 h的條件下培養(yǎng)。

3結(jié)論與討論

可能會(huì)抑制休眠體的分化萌發(fā)。DW2501-4在蔗糖質(zhì)量濃度為1%條件下萌發(fā)勢(shì)最高，葉狀體數(shù)在2%蔗糖下產(chǎn)生最多，其次是1%蔗糖。HB0301[JP+1]在蔗糖質(zhì)量濃度為1%條件下萌發(fā)勢(shì)最高，葉狀體數(shù)也最多，其次是2%蔗糖。在3%蔗糖和5%蔗糖下，DW2501-4休眠體萌發(fā)完全所需時(shí)間相對(duì)較長(zhǎng)，萌發(fā)勢(shì)和萌發(fā)率相對(duì)較低。隨著培養(yǎng)基營(yíng)養(yǎng)消耗，蔗糖含量降低，對(duì)分化的抑制作用降低，剩余的蔗糖可以繼續(xù)為葉狀體的分化和生長(zhǎng)供能。因此含2%蔗糖的培養(yǎng)基營(yíng)養(yǎng)供給比含1%蔗糖的多，對(duì)于葉狀體的持續(xù)分化和生長(zhǎng)繁殖更有利。

在0.001～1.000 mg/L范圍內(nèi)，總體上隨著GA3濃度升高，DW2501-4休眠體分化萌發(fā)持續(xù)時(shí)間越短，在 10.000 mg/L 濃度下葉狀體數(shù)量較多，但葉狀體分化幾天后玻璃化。DW2501-4在GA3濃度為1.000 mg/L時(shí)休眠體萌發(fā)勢(shì)最高，但在0.100 mg/L濃度下葉狀體總數(shù)最多，生長(zhǎng)狀態(tài)最好。HB0301在GA3濃度為0.100 mg/L時(shí)，萌發(fā)所需時(shí)間短，萌發(fā)勢(shì)和萌發(fā)率高、葉狀體數(shù)多。GA3在一定濃度范圍內(nèi)對(duì)休眠體萌發(fā)有誘導(dǎo)作用，且有最佳誘導(dǎo)濃度，因此GA3是誘導(dǎo)休眠體萌發(fā)的有效因子。

在20～28 ℃，總體隨著溫度升高，DW2501-4 和HB0301休眠體萌發(fā)時(shí)滯逐步減少，葉狀體繁殖增多。休眠體的萌發(fā)率從20 ℃的低位快速提升到24 ℃的100.0%。20 ℃下休眠體也可以萌發(fā)，只是萌發(fā)遲緩，說(shuō)明溫度條件對(duì)休眠體萌發(fā)起重要作用；32 ℃下，雖然休眠體的萌發(fā)率和葉狀體數(shù)量也多，但 28 ℃ 下葉狀體生長(zhǎng)狀態(tài)更好。更低或者更高的溫度都不利于HB0301和DW2501-4休眠體的萌發(fā)和葉狀體生長(zhǎng)。在24 ℃和28 ℃，HB0301休眠體比DW2501-4休眠體萌發(fā)持續(xù)時(shí)間短，萌發(fā)勢(shì)高，說(shuō)明相同條件下HB0301休眠體比DW2501-4休眠體更易萌發(fā)。[JP+1]

DW2501-4 在光—暗周期為16 h—8 h下萌發(fā)勢(shì)最高，24 h—0 h [JP+1]時(shí)產(chǎn)生葉狀體數(shù)量最多；HB0301在光—暗周期為 24 h—0 h 下萌發(fā)勢(shì)最高，葉狀體數(shù)量最多；3個(gè)光—暗周期下萌發(fā)率沒(méi)有明顯差異，但長(zhǎng)日照可縮短休眠體萌發(fā)時(shí)間。

參考文獻(xiàn)：

[1]Appenroth K J，Nickel G. Turion formation in Spirodela polyrhiza：The environmental signals that induce the developmental process in nature[J]. Physiologia Plantarum，2010，138（3）：312-320.

[2]Appenroth K J，Palharini L，Ziegler P. Low-molecular weight carbohydrates modulate dormancy and are required for post-germination growth in turions of Spirodela polyrhiza[J]. Plant Biology，2013，15（2）：284-291.

[3] Appenroth K J，Augsten H. Photophysiology of turion germination in Spirodela polyrhiza （L.） Schleiden.Ⅴ. Demonstration of a calcium-requiring phase during phytochrome-mediated germination[J]. Photochemic Photobiology，1990，52（1）：61-65.

[4] Newton R J，Shelton D R，Disharoon S，et al. Turion formation and germination in Spirodela polyrhiza[J]. American Journal of Botany，1978，65（4）：421-428.

[5]Appenroth K J，Ziegler P. Light-induced degradation of storage starch in turions of Spirodela polyrhiza depends on nitrate[J]. Plant，Cell and Environment，2008，31（10）：1460-1469.

[6] Appenroth K J，Keresztes A，Krzysztofowicz E，et al. Light-induced degradation of starch granules in turions of Spirodela polyrhiza studied by electron microscopy[J]. Plant and Cell Physiology，2011，52（2）：384-391.

[7] Reimann R，Hippler M，Machelett B，et al. Light induces phosphorylation of glucan water dikinase，which precedes starch degradation in turions of the duckweed Spirodela polyrhiza[J]. Plant Physiology，2004，135（1）：121-128.

[8] Perry T O. Dormancy，turion formation，and germination by different clones of Spirodela polyrrhiza[J]. Plant Physiology，1968，43（11）：1866-1869.

[9] Lacor M A M. On the influence of gibberellic acid and kinetin on the germination of turions of Spirodela polyrhiza （L.） Schleiden [J]. Acta Botanica Neerlandica，1969，18（4）：550-557.

[10]Malek L，Oda Y. Germination of Spirodela polyrhiza turions：the role of culture conditions during turion development[J]. Plant and Cell Physiology，1980，21（ 2）：357-361.