朱艷媚,祁 崗,楊春燕,楊本扎西,曹成珠,嚴(yán)云飛
(1.青海大學(xué)醫(yī)學(xué)院生理教研室,810001;2.青海省人民醫(yī)院核醫(yī)學(xué)科,810007;3.青海省藏醫(yī)院藥浴科,810007)
類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎(rheumatoid arthritis,RA)的發(fā)病機(jī)制尚未完全明了。藏藥十八味黨參丸(tibetan eighteen flavor dangshenpills,TEP)治療RA療效確切、毒副作用小[1,2]。本研究通過觀察TEP對(duì)膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎(collagen-induced arthritis,CIA)大鼠滑膜組織炎癥反應(yīng)及細(xì)胞凋亡的影響,探討TEP改善CIA大鼠關(guān)節(jié)炎的分子機(jī)制。
1.1 材料
1.1.1 動(dòng)物及分組
清潔級(jí)雌性SD大鼠60只,質(zhì)量180±20 g,由蘭州大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,許可證號(hào):SCXK(甘)20160003。隨機(jī)分為空白對(duì)照組(Control)、模型組(CIA)、雷公藤多苷組(TP)、TEP低劑量組(TEPⅠ)、TEP中劑量組(TEPⅡ)、TEP高劑量組(TEP Ⅲ),每組10只。
1.1.2 試劑及藥物
TEP(國藥準(zhǔn)字Z63020215,青海柴達(dá)木高科技藥業(yè)有限公司);雷公藤多苷片(tripterygium,TP。浙江得恩德制藥有限公司)。大鼠白細(xì)胞介素17(interleukin,IL-17)ELISA、兔抗Bcl-2相關(guān)X蛋白多克隆抗體(Bcl-2 Associated X Protein,BAX)、兔抗B細(xì)胞淋巴瘤-2多克隆抗體(B cell lymphoma 2,BCL-2)、兔抗核轉(zhuǎn)錄因子kappa B多克隆抗體(nuclear factor-kappa B,NF-κB)、兔抗半胱天冬酶-3多克隆抗體(caspase 3)、兔抗腫瘤壞死因子α多克隆抗體(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、兔抗β-actin多克隆抗體(CST)試劑盒。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 CIA模型建立
本研究所有大鼠實(shí)驗(yàn)符合實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理要求并獲得蘭州大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)的審查,大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,根據(jù)文獻(xiàn)[3]建立CIA大鼠模型,將大鼠仰臥位固定,大鼠膝關(guān)節(jié)腔內(nèi)注射與牛Ⅱ型膠原蛋白等體積混合的卡介苗溶液(Bacillus Calmette-Guérin,BCG,4mg/mL),每次每個(gè)關(guān)節(jié)腔注射0.2 mL,1周重復(fù)一次,共2周。正常對(duì)照組大鼠等量同部位注射生理鹽水。
1.2.2 模型評(píng)價(jià)
每周用游標(biāo)卡尺測定大鼠膝關(guān)節(jié)直徑,測定3次,取其平均值;觀察大鼠的一般狀態(tài)、足爪厚度。
一般狀態(tài):初次免疫后,第1天觀察對(duì)照組大鼠活動(dòng)正常,膝關(guān)節(jié)無紅腫,毛色發(fā)亮柔順,對(duì)外界刺激敏感,而模型組大鼠膝關(guān)節(jié)紅腫明顯,出現(xiàn)急性炎癥反應(yīng),雙后肢僵直,行走困難,瘸拐和拖后腿現(xiàn)象明顯,活動(dòng)受限,精神萎靡,對(duì)外界刺激不敏感,抓取時(shí)無掙扎,同時(shí)觸摸膝關(guān)節(jié)時(shí)出現(xiàn)強(qiáng)烈的保護(hù)性回縮現(xiàn)象。第3天模型組大鼠紅腫有所緩解,但后肢依然僵硬,行走困難,精神萎靡,毛色暗淡,無光澤。到第5天時(shí),模型組大鼠腫漲未見明顯減退,但活動(dòng)度與空白組相同,皮毛已變得柔順,有光澤,行走略微顯得僵硬,精神狀態(tài)較之前恢復(fù)很多,對(duì)外界刺激敏感度和空白幾乎一樣,但觸摸膝關(guān)節(jié)時(shí)出現(xiàn)膝關(guān)節(jié)的回縮現(xiàn)象。第7天進(jìn)行二次加強(qiáng)免疫后,大鼠膝關(guān)節(jié)反應(yīng)狀態(tài)同第一次幾乎一致,第8天毛顯枯槁,急性炎癥性紅腫較前明顯,大鼠幾乎沒有活動(dòng),偶爾有活動(dòng)的大鼠,雙后肢也是僵硬拖行,對(duì)外界刺激很不敏感,觸碰后肢,會(huì)明顯地保護(hù)性回縮,甚至出現(xiàn)尖叫。第14天,大鼠膝關(guān)節(jié)依然腫脹,但無紅色,對(duì)外界刺激敏感,略有跛行,但不影響正?;顒?dòng),毛色較光亮。
關(guān)節(jié)厚度:第一次免疫及第二次免疫后第1、3、5天,與對(duì)照組大鼠相比,模型組大鼠關(guān)節(jié)厚度顯著增加,表明模型建立成功。
1.2.3 給藥
造模成功后,給予藥物灌胃干預(yù),TEP低劑量組劑量為9 g/kg/d,TEP中劑量組為45 g/kg/d,TEP高劑量組為90 g/kg/d,TP組為12 mg/kg/d,連續(xù)給藥6周。
1.2.4 滑膜樣品制備
采用頸椎脫臼方法處死大鼠,在超凈工作臺(tái),仰位固定,常規(guī)碘伏、酒精消毒。沿膝關(guān)節(jié)正中縱行切開皮膚直至暴露出以膝關(guān)節(jié)為中心約3 cm×3 cm的區(qū)域,用有齒鑷提起髕骨,沿髕骨上緣處向下切割直至股骨,再分別沿髕骨兩側(cè)向下分離至脛骨,此時(shí)即打開了膝關(guān)節(jié)腔,可見由髕骨下緣向上延緩有一層平滑光亮呈淡黃色的滑膜組織。完整剝離滑膜組織,用眼科鑷輕輕夾住其游離端,用刀片完整切下,一部分轉(zhuǎn)移至離心管后置-80 ℃冰箱備用。另一部分浸泡在4%多聚甲醛溶液中固定。
1.2.5 HE染色
取新鮮的關(guān)節(jié)腔滑膜組織,切成 3 mm×5 mm×2 mm大小的小塊;將取材組織放在無菌培養(yǎng)皿中用4%多聚甲醛固定24小時(shí);行梯度酒精脫水,依次進(jìn)行二甲苯透明、浸蠟、包埋、切片(5μm)、常規(guī)脫蠟、蘇木素浸染、鹽酸乙醇分色、伊紅浸染、脫水、透明及封片,用光鏡觀察并拍照。顯微鏡下觀察大鼠膝關(guān)節(jié)滑膜組織形態(tài)的改變,并按照滑膜病理5級(jí)評(píng)分法對(duì)炎性細(xì)胞浸潤、滑膜細(xì)胞增生及滑膜纖維組織增生三項(xiàng)指標(biāo)進(jìn)行評(píng)分。炎性細(xì)胞浸潤:每高倍視野(×200)下無炎性細(xì)胞浸潤為0分;有1~5個(gè)炎性細(xì)胞為1分;有6~10個(gè)炎性細(xì)胞為2分;>11個(gè)炎性細(xì)胞為3分,每個(gè)組織切片選取5個(gè)視野。
1.2.6 ELISA實(shí)驗(yàn)
取適量滑膜組織,加入適量磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)研磨,離心后取上清液。按照大鼠IL-17 ELISA試劑盒說明書進(jìn)行檢測。檢測450 nm OD值,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算待測樣品IL-17濃度。
1.2.7 免疫組化實(shí)驗(yàn)
1.2.8 Western Blot實(shí)驗(yàn)
1.2.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理
2.1 HE染色及各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜IL-17水平比較
與對(duì)照組相比,CIA大鼠關(guān)節(jié)滑膜有大量炎癥細(xì)胞浸潤,細(xì)胞排列紊亂,細(xì)胞增生,部分滑膜組織纖維化,HE染色評(píng)分有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖1。
與CIA大鼠相比,TP組及TEP高劑量組炎癥細(xì)胞明顯減少,炎癥評(píng)分有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而關(guān)節(jié)滑膜中IL-17的表達(dá)CIA組較對(duì)照組高表達(dá)(P<0.05),并且TP及各不同劑量組的表達(dá)較CIA組顯著降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)果見表1。
A為Control組,B為CIA模型組,C為TP組,D為TEPⅠ組,E為TEPⅡ組,F(xiàn)為TEPⅢ組(×100)
圖1滑膜組織HE染色圖
Figure1TheHEstainingofsynovialtissue(×100)
Table 1 Inflammatory cell infiltration score of HE staining and the concentration changes of IL-17(±s)
*:與對(duì)照組比較,P<0.05;#:與模型組相比,P<0.05.
2.2 各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜TNF-α的表達(dá)
與對(duì)照組大鼠相比,CIA模型組TNF-α表達(dá)顯著增加(P<0.05)。與模型組大鼠相比,TP及高劑量TEP治療組大鼠TNF-α表達(dá)顯著降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖2、表2。
A為Control組,B為CIA模型組,C為TP組,D為TEPⅠ組,E為TEPⅡ組,F(xiàn)為TEPⅢ組(×200)
圖2各組大鼠滑膜細(xì)胞TNF-α的表達(dá)圖
Figure2TheexpressionofTNF-αinsynovialcellsofrats(×200)
Table 2The average optical density value of TNF-α in synovial tissue of rats(±s)
*:與對(duì)照組比較,P<0.05;#:與模型組相比,P<0.05.
2.3 各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜caspase-3、NF-κB、BCL-2及BAX表達(dá)比較
CIA組NF-κB表達(dá)較對(duì)照組高表達(dá)、Caspase 3低表達(dá)、BCL-2與BAX比值顯著升高(P<0.05);與模型組相比,TP及不同劑量TEP組大鼠NF-κB表達(dá)、BCL-2與BAX比值降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而Caspase 3表達(dá),TP及中、低劑量TEP組表達(dá)增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),但高劑量組未見差異(P>0.05)。見圖3、表3。
圖3各組大鼠Westernblot印跡圖
Figure3TheresultsofWesternblotindifferentgroupsofrats
Table 3 The relative expression levels of related factors in rats’ synovial tissue(±s)
*:與對(duì)照組比較,P<0.05;#:與模型組相比,P<0.05.
目前,大部分治療類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎的藥物都是基于抑制炎癥反應(yīng),改善滑膜炎性環(huán)境,靶向于身體的免疫細(xì)胞和免疫因子?;び擅庖吣褪芟蛎庖哌^敏轉(zhuǎn)變是慢性炎癥的基礎(chǔ),這種轉(zhuǎn)變跟環(huán)境遺傳以及感染等相關(guān)。在炎性環(huán)境中,滑膜組織不斷接受炎性因子的刺激導(dǎo)致滑膜細(xì)胞凋亡抑制、增生異常,而異常增生的滑膜又不斷破壞軟骨等組織導(dǎo)致關(guān)節(jié)炎癥加重,形成惡性循環(huán)。因此,阻止滑膜組織的異常增生對(duì)緩解關(guān)節(jié)炎具有重要意義。
TEP在臨床上具有治療風(fēng)濕、類風(fēng)濕及痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎的作用[1,2]。但是其治療機(jī)制尚不明確,本研究通過觀察TEP對(duì)CIA大鼠滑膜組織炎癥反應(yīng)及細(xì)胞凋亡的影響,探討TEP改善CIA大鼠RA的分子機(jī)制。
由CD4+T細(xì)胞分泌的IL-17,能夠誘導(dǎo)上皮細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、成纖維細(xì)胞合成分泌白細(xì)胞介素6(interleukin,IL-6)、白細(xì)胞介素8(interleukin,IL-8)、粒細(xì)胞集落刺激因子(granulocyte colony-stimulating factor,G-CSF)、前列腺素E2(prostaglandin E2,PGE2),促進(jìn)細(xì)胞間黏附分子-1(intercellular cell adhesion molecule-1,ICAM-1)的表達(dá),它在關(guān)節(jié)炎發(fā)病中起到起始促進(jìn)作用,誘導(dǎo)滑膜細(xì)胞和炎癥細(xì)胞產(chǎn)生多種炎癥因子,激活增強(qiáng)相關(guān)信號(hào)通路[4,5]。研究表明,RA患者外周血單核細(xì)胞中Th17細(xì)胞對(duì)凋亡信號(hào)更敏感[6]。而RA患者IL-17可導(dǎo)致線粒體功能障礙從而增加滑膜細(xì)胞抗凋亡作用[7]。此外,NF-κB在CIA大鼠滑膜組織主要定位于細(xì)胞核,且表達(dá)升高,NF-κB的調(diào)控與活化在RA的病理變化中占有重要地位[8]。IL-17與受體結(jié)合后,可通過NF-kB途徑發(fā)揮其生物學(xué)作用。當(dāng)滑膜細(xì)胞受到IL-17的刺激時(shí),NF-κB抑制蛋白(inhibitor of NF-κB,IκB)被降解,NF-κB異二聚體移位到胞核內(nèi),與DNA上的κB基序列相結(jié)合從而調(diào)控各種TNF-α與白細(xì)胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)等炎癥介質(zhì)基因的表達(dá),反過來所產(chǎn)生的炎癥因子又可進(jìn)一步激活NF-κB通路,形成正向調(diào)控循環(huán),使關(guān)節(jié)炎得以維持發(fā)展。NF-κB對(duì)維持細(xì)胞存活和抗凋亡具有重要作用[9-12]。本實(shí)驗(yàn)通過ELISA、Western blot和免疫組化法發(fā)現(xiàn)與空白組相比較,CIA模型大鼠的滑膜細(xì)胞中IL-17、NF-κB和TNF-α表達(dá)量明顯升高(P<0.05),經(jīng)過TEP治療后,中高劑量組滑膜細(xì)胞中IL-17、NF-κB和TNF-α的含量明顯降低(P<0.05),表明TEP可明顯改善關(guān)節(jié)炎炎癥環(huán)境。
研究發(fā)現(xiàn),Bcl-2基因上有κB識(shí)別位點(diǎn),而Bax、BCL-2/BCL-XL相關(guān)死亡促進(jìn)因子(BCL-xL/BCL-2-associated death promoter,Bad)則無κB位點(diǎn)?;ぜ?xì)胞中NF-κB大量激活可引起B(yǎng)cl-2家族中抗細(xì)胞凋亡基因的表達(dá)增加,進(jìn)而發(fā)揮此類因子降低線粒體膜的通透性、抑制線粒體去極化及細(xì)胞色素C釋放的抗凋亡作用[13-15],這是滑膜細(xì)胞大量增生的主要原因之一。超表達(dá)的Bcl- 2蛋白一方面可與bax形成異源二聚體,抑制bax的轉(zhuǎn)位及二聚體化,關(guān)閉PT孔道,通過阻斷細(xì)胞色素C(cytochrome C,cyt-c)的釋放,抑制下游caspase-3的激活,而有效地抑制細(xì)胞凋亡的發(fā)生[16]。另一方面,Bcl-2還能與凋亡蛋白酶激活因子(apoptotic protease activating factor 1,Apaf-1)結(jié)合并抑制其功能,阻止半胱天冬酶-9前酶(procaspase-9)活化實(shí)現(xiàn)抗凋亡的效應(yīng)[17]。增加BAX且降低Bcl-2表達(dá)的藥物可以緩解RA患者癥狀,如有研究表明復(fù)方丹參注射液、牛蒡子苷元可以通過增加RA患者BAX及降低Bcl-2表達(dá)從而促進(jìn)滑膜細(xì)胞的凋亡,緩解RA患者癥狀[18,19]。此外,抗炎藥物甲氨蝶呤可以提高RA患者滑膜細(xì)胞Caspase-3 mRNA水平從而改善炎癥情況[20]。本實(shí)驗(yàn)通過Western blot發(fā)現(xiàn)在CIA模型組大鼠滑膜中Bcl-2/Bax的比值明顯高于空白組(P<0.05),Caspase-3的含量明顯低于空白組,經(jīng)過TEP治療后,CIA大鼠滑膜中Bcl-2/Bax的比值較模型組明顯降低(P<0.05),而Caspase-3的含量明顯提高,表明TEP通過提高滑膜組織中Caspase-3的含量,降低Bcl-2/Bax的比值促進(jìn)滑膜細(xì)胞凋亡,從而抑制滑膜異常增生。由于NF-κB可誘導(dǎo)表達(dá)Bcl-2,提示TEP可能通過抑制滑膜細(xì)胞NF-κB的表達(dá),從而抑制Bcl-2的表達(dá)、促進(jìn)滑膜細(xì)胞凋亡。
綜上所述,TEP可通過抑制CIA大鼠滑膜細(xì)胞中IL-17、NF-κB和TNF-α的表達(dá),改善關(guān)節(jié)炎癥情況。此外,TEP可提高滑膜組織中Caspase-3的含量,并降低Bcl-2/Bax的比值,以此促進(jìn)滑膜細(xì)胞的凋亡,從而抑制滑膜的異常增生。提示,TEP通過抑制CIA大鼠滑膜組織的炎癥反應(yīng)并促進(jìn)滑膜細(xì)胞的凋亡,改善CIA大鼠關(guān)節(jié)的炎癥。
[1]龍巴.藏醫(yī)藏藥治療風(fēng)濕病88例臨床觀察[J].微創(chuàng)醫(yī)學(xué),2001,20(1):64-5.
[2]楊本扎西,彭毛東主,辛措吉,等.藏醫(yī)治療類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎的臨床療效評(píng)價(jià)研究 [J].中國民族醫(yī)藥雜志,2013,19(5):18-19.
[3]Postigo J,Iglesias M,Cerezo-wallis D,et al.Mice deficient in CD38 develop an attenuated form of collagen type II-induced arthritis[J].PloS one,2012,7(3):e33534.
[4]Lubberts E,Koenders M I,Van den berg W B.The role of T-cell interleukin-17 in conducting destructive arthritis:lessons from animal models[J].Arthritis research & therapy,2005,7(1):29-37.
[5]Roeleveld D M,Koenders M I.The role of the Th17 cytokines IL-17 and IL-22 in Rheumatoid Arthritis pathogenesis and developments in cytokine immunotherapy[J].Cytokine,2015,74(1):101-7.
[6]Ji L,Geng Y,Zhou W,et al.A study on relationship among apoptosis rates,number of peripheral T cell subtypes and disease activity in rheumatoid arthritis[J].Int J Rheum Dis,2016,19(2):167-171.
[7]Kim E K,Kwon J E,Lee S Y,et al.IL-17-mediated mitochondrial dysfunction impairs apoptosis in rheumatoid arthritis synovial fibroblasts through activation of autophagy[J].Cell Death Dis,2017,8(1):e2565.
[8]Mu N,Gu J,Huang T,et al.A novel NF-kappaB/YY1/microRNA-10a regulatory circuit in fibroblast-like synoviocytes regulates inflammation in rheumatoid arthritis[J].Sci Rep,2016,6(200):59.
[9]Van loo G,Beyaert R.Negative regulation of NF-kappaB and its involvement in rheumatoid arthritis[J].Arthritis research & therapy,2011,13(3):221.
[10]Okamoto T.NF-kappaB and rheumatic diseases[J].Endocrine,metabolic & immune disorders drug targets,2006,6(4):359-372.
[11]Wang S,Liang S,Zhao X,et al.Propofol inhibits cell proliferation and invasion in rheumatoid arthritis fibroblast-like synoviocytes via the nuclear factor-kappaB pathway[J].Am J Transl Res,2017,9(5):2429-2436.
[12]Wen H L,Yang G,Dong Q R.Ellipticine inhibits the proliferation and induces apoptosis in rheumatoid arthritis fibroblast-like synoviocytes via the STAT3 pathway[J].Immunopharmacol Immunotoxicol,2017,39(4):34.
[13]Adams J M,Cory S.The Bcl-2 protein family:arbiters of cell survival [J].Science(New York,NY),1998,281(5381):1322-1326.
[14]Kodama T,Hikita H,Kawaguchi T,et al.The Bcl-2 homology domain 3(BH3)-only proteins Bim and bid are functionally active and restrained by anti-apoptotic Bcl-2 family proteins in healthy liver[J].The Journal of biological chemistry,2013,288(42):30009-30018.
[15]Li H,Zhu H,Xu C J,et al.Cleavage of BID by caspase 8 mediates the mitochondrial damage in the Fas pathway of apoptosis[J].Cell,1998,94(4):491-501.
[16]Guo J,Zhang K,Ji Y,et al.Effects of ethyl pyruvate on myocardial apoptosis and expression of Bcl-2 and Bax proteins after ischemia-reperfusion in rats[J].Journal of Huazhong University of Science and Technology Medical sciences=Hua zhong ke ji da xue xue bao Yi xue Ying De wen ban=Huazhong keji daxue xuebao Yixue Yingdewen ban,2008,28(3):281-283.
[17]Kawatani M,Imoto M.Deletion of the BH1 domain of Bcl-2 accelerates apoptosis by acting in a dominant negative fashion[J].The Journal of biological chemistry,2003,278(22):19732-19742.
[18]Liu Q S,Luo X Y,Jiang H,et al.Salvia miltiorrhiza injection restores apoptosis of fibroblast-like synoviocytes cultured with serum from patients with rheumatoid arthritis[J].Mol Med Rep,2015,11(2):1476-1482.
[19]Liu H,Yang Y,Cai X,et al.The effects of arctigenin on human rheumatoid arthritis fibroblast-like synoviocytes[J].Pharm Biol,2015,53(8):1118-1123.
[20]Malysheva I E,Topchieva L V,Barysheva O Y,et al.The level of cytokines and expression of caspase genes in rheumatoid arthritis[J].Dokl Biochem Biophys,2016,468(1):226-228.