吳佳源 劉俊?
·綜述·
干細(xì)胞在內(nèi)耳毛細(xì)胞再生中的應(yīng)用
吳佳源 劉俊?
根據(jù)世界衛(wèi)生組織統(tǒng)計(jì),全球約有2.78億人患有耳聾疾?。?]。永久性聽(tīng)力損失是由于耳蝸內(nèi)的毛細(xì)胞喪失了再生能力[2]。目前恢復(fù)因耳蝸毛細(xì)胞丟失而引起的中重度聽(tīng)力損失的唯一方法是使用人工耳蝸或助聽(tīng)器直接刺激聽(tīng)神經(jīng)。但其使用受限于復(fù)雜的聽(tīng)力損傷機(jī)制和組織損傷程度[3]。理想的解決方案是用干細(xì)胞、基因、藥物治療阻止耳蝸毛細(xì)胞的丟失或再生耳蝸毛細(xì)胞和螺旋神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元[4]。本文對(duì)干細(xì)胞再生耳蝸毛細(xì)胞和螺旋神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元作如下綜述。
在哺乳動(dòng)物中,毛細(xì)胞的生成只出現(xiàn)在早期胚胎形成過(guò)程中相對(duì)較短的時(shí)間內(nèi)。在成熟的Corti器里,一旦毛細(xì)胞死亡,其便不會(huì)再生[5]。盡管哺乳動(dòng)物內(nèi)耳不能再生丟失的毛細(xì)胞,但仍然有證據(jù)表明哺乳動(dòng)物內(nèi)耳具有某種再生能力的細(xì)胞,因可以從前庭感覺(jué)上皮和新生的耳蝸中分離出這種細(xì)胞[6]。這些細(xì)胞被稱之為內(nèi)耳胚胎干細(xì)胞。
非哺乳脊椎動(dòng)物的內(nèi)耳胚胎干細(xì)胞存在于內(nèi)耳感覺(jué)上皮區(qū)且這些細(xì)胞可以產(chǎn)生一個(gè)顯著再生反應(yīng)。與此相反,哺乳動(dòng)物的內(nèi)耳干細(xì)胞僅存在于年輕內(nèi)耳感覺(jué)上皮,其數(shù)量會(huì)隨時(shí)間的推移顯著降低(耳蝸甚至?xí)档搅悖?。雖然這些細(xì)胞數(shù)目較少,僅占一個(gè)橢圓囊細(xì)胞中0.025%的細(xì)胞,但其擁有干細(xì)胞最重要的特征即自我更新和具有多功能性[7]。最近的一些研究發(fā)現(xiàn),哺乳動(dòng)物幸存的支持細(xì)胞也可以被誘導(dǎo)橫向分化成新的毛細(xì)胞[8]。哺乳動(dòng)物耳蝸的支持細(xì)胞和鳥類耳蝸毛細(xì)胞來(lái)源于相同的祖細(xì)胞。然而在成年哺乳動(dòng)物中,對(duì)于耳蝸毛細(xì)胞的損傷,這些支持細(xì)胞并不能做出反應(yīng)而自發(fā)的分化成毛細(xì)胞[9]。這可能是由于相應(yīng)信號(hào)的缺乏或某種抑制劑的存在而導(dǎo)致成年哺乳動(dòng)物前庭上皮的低再生能力[10]。
在內(nèi)耳發(fā)育過(guò)程中細(xì)胞周期抑制因子起著重要作用。例如細(xì)胞周期蛋白依賴性激酶抑制蛋白(CDK抑制蛋白)—p27kip1及p19Ink4d。p27kip1的表達(dá)在毛細(xì)胞的分化過(guò)程中逐漸下降,而在成熟Corti器的有絲分裂后期支持細(xì)胞中卻持續(xù)表達(dá)。這表明p27kip1的一個(gè)主要作用便是維持支持細(xì)胞的靜息狀態(tài)。這也暗示抑制p27kip1的表達(dá)可以促進(jìn)感覺(jué)細(xì)胞的前體細(xì)胞增殖,同時(shí)對(duì)于哺乳動(dòng)物聽(tīng)力器官中毛細(xì)胞再生的誘導(dǎo)提供一條重要途徑。p19Ink4d的作用 跟p27kip1一樣,其共同作用維持著已分化的感覺(jué)細(xì)胞的靜息狀態(tài)[11]。內(nèi)耳毛細(xì)胞增殖同樣也受成視網(wǎng)膜細(xì)胞瘤蛋白(RB蛋白)控制。RB蛋白的主要作用同樣也是維持細(xì)胞的靜息狀態(tài)[12]。研究發(fā)現(xiàn)抑制老鼠未分化毛細(xì)胞的前體細(xì)胞RB蛋白的激活可以導(dǎo)致耳蝸毛細(xì)胞的擴(kuò)增及新的毛細(xì)胞的生成[13]。臨時(shí)或永恒抑制這些細(xì)胞周期抑制因子也許會(huì)生成新的毛細(xì)胞和支持細(xì)胞,這也給治療感音神經(jīng)性耳聾提供一種新的治療方法。ATOH1基因編碼轉(zhuǎn)錄因子Math1有助于神經(jīng)元和耳蝸毛細(xì)胞的生成,當(dāng)一些哺乳動(dòng)物的支持細(xì)胞的轉(zhuǎn)錄因子Math1被過(guò)表達(dá)時(shí),這些細(xì)胞便會(huì)改變形態(tài)以增加耳蝸毛細(xì)胞纖毛的數(shù)量,同時(shí)也會(huì)促進(jìn)腦干誘發(fā)電位的功能恢復(fù)[14]。近來(lái)研究發(fā)現(xiàn)notch信號(hào)在毛細(xì)胞和支持細(xì)胞的分化過(guò)程中起至關(guān)重要的作用[15]。當(dāng)notch信號(hào)被抑制時(shí),新的毛細(xì)胞可以被誘導(dǎo)生成,還發(fā)現(xiàn)噪音刺激引起的聽(tīng)力損傷可以被部分恢復(fù)[14]。
因此在耳聾動(dòng)物的耳蝸里對(duì)于細(xì)胞周期抑制因子、ATOH1基因和notch信號(hào)通路的調(diào)控可能是一種讓毛細(xì)胞再生的有效方法。
2.1 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(也稱為骨髓基質(zhì)細(xì)胞)是多能的且能在體內(nèi)和體外修復(fù)組織。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞可以產(chǎn)生骨和軟骨且還能分化成肌細(xì)胞、肝細(xì)胞和膠質(zhì)細(xì)胞及最重要的神經(jīng)細(xì)胞。由于這些原因,間充質(zhì)干細(xì)胞是一種用于干細(xì)胞替代療法的有前景的細(xì)胞來(lái)源。
Jae-Hong Lee等從SD大鼠骨髓中分離得到的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞進(jìn)行體外培養(yǎng)14d后發(fā)現(xiàn),間充質(zhì)干細(xì)胞分化成神經(jīng)細(xì)胞和施萬(wàn)細(xì)胞的比例遠(yuǎn)高于毛細(xì)胞[16]。Sujeong Jang等成功將神經(jīng)誘導(dǎo)的人類間充質(zhì)干細(xì)胞移植入成年雌性豚鼠耳蝸,發(fā)現(xiàn)被植入的細(xì)胞主要存在于受損耳蝸的螺旋神經(jīng)節(jié)、Corti器及耳蝸神經(jīng),且這些細(xì)胞可以存活8周。在注入NI-hMSCs后的成年雌性豚鼠與注入平衡鹽溶液的對(duì)照組比較,發(fā)現(xiàn)前者的螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞的數(shù)目有所增加,被嫁接的人類間充質(zhì)干細(xì)胞也表達(dá)一種成熟的神經(jīng)元標(biāo)志—MAP2。這表明人類骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞可以分化成神經(jīng)細(xì)胞且可以替代丟失的螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞[17]。因此間充質(zhì)細(xì)胞可以被用來(lái)治療因螺旋神經(jīng)節(jié)退化而導(dǎo)致的神經(jīng)性聽(tīng)力損失和提高人工耳蝸植入的成功率[18]。
2.2 神經(jīng)干細(xì)胞 成人神經(jīng)干細(xì)胞具有自我更新能力和多能性。神經(jīng)干細(xì)胞可以從發(fā)育中的大腦區(qū)域中分離獲得,包括大腦皮層、海馬、紋狀體、嗅球、螺旋神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元和嗅覺(jué)上皮[19-20]。移植的神經(jīng)干細(xì)胞被證明可以遷移至腦損傷部位并分化成原生的細(xì)胞類型,諸如少突膠質(zhì)細(xì)胞、小膠質(zhì)細(xì)胞、星形膠質(zhì)細(xì)胞、皮質(zhì)神經(jīng)元和脊髓神經(jīng)膠質(zhì)和神經(jīng)元。這些結(jié)果表明,神經(jīng)干細(xì)胞既能替換損壞的神經(jīng)組織又能恢復(fù)損傷后的功能。
Parker等將克隆神經(jīng)干細(xì)胞(cNSCs)注入至聽(tīng)力受損的小鼠和豚鼠的鼓階中,6周以后,在兩組動(dòng)物模型中的一些cNSCs均出現(xiàn)在整個(gè)耳蝸中并顯現(xiàn)出神經(jīng)耳蝸組織(例如:螺旋神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元,衛(wèi)星細(xì)胞和雪旺細(xì)胞)和柯蒂器細(xì)胞(柱細(xì)胞、支持細(xì)胞和毛細(xì)胞)的形態(tài)學(xué),蛋白質(zhì)和基因的特征。被植入的cNSCs在形態(tài)學(xué)和蛋白質(zhì)表達(dá)上的不同取決于其在耳蝸內(nèi)所處的位置,這表明耳蝸內(nèi)的微環(huán)境對(duì)cNSCs的發(fā)展起到重要作用。一旦這個(gè)神經(jīng)干細(xì)胞系遷移至耳蝸內(nèi),接受來(lái)自微環(huán)境的信號(hào)后,這些細(xì)胞便表達(dá)由內(nèi)耳細(xì)胞表達(dá)的細(xì)胞基因命運(yùn)程序,并對(duì)該程序進(jìn)行正反饋和負(fù)反饋的調(diào)節(jié)以達(dá)到平衡。這些結(jié)果表明干細(xì)胞具有發(fā)展?jié)摿?。同時(shí)也表明成年哺乳動(dòng)物耳蝸內(nèi)還保留著一些信號(hào),這些信號(hào)對(duì)于干細(xì)胞沿著耳蝸的表型分化是必要的,盡管這些信號(hào)并不能作用于內(nèi)耳的細(xì)胞群從而再生這些細(xì)胞[21]。
2.3 胚胎干細(xì)胞 胚胎細(xì)胞的巨大潛力在于其在無(wú)限增長(zhǎng)的同時(shí)還能保持多能性,且可以分化成所有三個(gè)胚層的細(xì)胞。人類干細(xì)胞可以被用來(lái)治療較多疾病,比如帕金森疾病、脊髓損傷和糖尿病。然而其生產(chǎn)需要摧毀胚胎,這便會(huì)在某些群體中引發(fā)強(qiáng)烈的道德反對(duì)。此外,使用這些細(xì)胞進(jìn)行同種異體移植可能會(huì)引發(fā)免疫排斥且需要使用免疫抑制劑。在2006年,由于山中伸彌等在實(shí)驗(yàn)上的突破,這些問(wèn)題似乎已經(jīng)被規(guī)避。作者介紹一種方法即通過(guò)人為表達(dá)四種基因(轉(zhuǎn)錄因子OCT4,MYC,SOX2和KLF4)重新編程成纖維細(xì)胞使之進(jìn)入多能狀態(tài)(類似胚胎干細(xì)胞)[22]。
2.4 人工誘導(dǎo)的多功能干細(xì)胞 盡管誘導(dǎo)的多功能干細(xì)胞(iPSCs)的治療前景巨大,但這可能是一個(gè)錯(cuò)誤忽視胚胎干細(xì)胞,以完全專注在iPSCs??梢灶A(yù)期的是控制iPSCs分化的信號(hào)和規(guī)則和管理人類胚胎干細(xì)胞的信號(hào)和規(guī)則是一樣的。然而,已有證據(jù)表明iPSCs分化成特地譜系細(xì)胞的成功率是高度可變的[23],且其可能遭受大量基因組的變異。
Niliksha Gunewardene等用兩種誘導(dǎo)的多功能干細(xì)胞(hiPSCs)和一種人類胚胎干細(xì)胞(hESCs),使其朝一個(gè)特定的感覺(jué)神經(jīng)細(xì)胞譜系(neurosensory lineage)分化。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),在體外35d,hiPSC和hESCs衍生的感覺(jué)神經(jīng)祖細(xì)胞均有感覺(jué)神經(jīng)標(biāo)志物的高表達(dá)水平。此外,從該實(shí)驗(yàn)中所產(chǎn)生的神經(jīng)元被認(rèn)為是有電活性的。雖然所有的細(xì)胞系均產(chǎn)生有功能的感覺(jué)神經(jīng)樣祖細(xì)胞,但與hESCs相比較,hiPSCs在神經(jīng)標(biāo)志物表達(dá)水平上是可變的??傮w而言,這些結(jié)果表明,hiPSCs有能力分化成感覺(jué)神經(jīng)細(xì)胞系,但必須提高h(yuǎn)iPSCs分化成所需要譜系的一致性[24]。
理論上,胚胎干細(xì)胞是對(duì)于內(nèi)耳細(xì)胞的恢復(fù)最好的選擇。然而,有證據(jù)表明一些胚胎干細(xì)胞譜系能夠發(fā)展成為腫瘤,在細(xì)胞移植后產(chǎn)生不良組織。另外,獲取胚胎干細(xì)胞需要破壞胚胎,這在倫理角度上受質(zhì)疑。
神經(jīng)干細(xì)胞可以從器官獲取,這在倫理上似乎是被認(rèn)可的。然而,一旦神經(jīng)干細(xì)胞只在大腦深部區(qū)域被發(fā)現(xiàn),那么對(duì)于神經(jīng)干細(xì)胞有限的獲取方式會(huì)阻礙其臨床應(yīng)用。另一方面,間充質(zhì)干細(xì)胞的獲取較容易且在其分化過(guò)程中也可以產(chǎn)生神經(jīng)元細(xì)胞。再加上其能產(chǎn)生神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子,它們能增加神經(jīng)元的數(shù)量且對(duì)螺旋神經(jīng)節(jié)有支持保護(hù)作用,這也潛在的提高電子耳蝸的植入效率[25]。但骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞移植進(jìn)耳蝸后存活的比例較低,Matsuoka等把BMMsC移植進(jìn)蒙占沙鼠耳蝸內(nèi),發(fā)現(xiàn)鼓階注射的細(xì)胞存活率僅為0.54‰,蝸軸注射的存活率僅為0.59 ‰,而存活的細(xì)胞中也僅有少部分能分化為內(nèi)耳功能細(xì)胞表型[26]。
對(duì)比神經(jīng)干細(xì)胞和成人內(nèi)耳干細(xì)胞在體外分化成內(nèi)耳毛細(xì)胞的實(shí)驗(yàn),它們之間有兩個(gè)不同:(1)內(nèi)耳干細(xì)胞的分化能力是神經(jīng)干細(xì)胞的100倍。(2)內(nèi)耳干細(xì)胞比神經(jīng)干細(xì)胞能更完全的分化成毛細(xì)胞[27]。
動(dòng)員內(nèi)源性干細(xì)胞為替代損壞的內(nèi)耳毛細(xì)胞提供了一種新方式。動(dòng)員宿主干細(xì)胞不需要像移植外來(lái)細(xì)胞(如胚胎干細(xì)胞和非胚胎干細(xì)胞)進(jìn)入耳內(nèi)那樣復(fù)雜,避免了移植方式的選擇,移植過(guò)程中造成的手術(shù)創(chuàng)傷,移植排斥反應(yīng),無(wú)節(jié)制移植細(xì)胞的增殖和腫瘤形成。因此內(nèi)耳干細(xì)胞對(duì)于耳蝸毛細(xì)胞的修復(fù)可能是最好的選擇[28]。
目前,用干細(xì)胞移植治療來(lái)恢復(fù)聽(tīng)力在臨床上尚未得到應(yīng)用。對(duì)于聽(tīng)力的恢復(fù),不可能使用單一的方法,需要對(duì)多種治療方法進(jìn)行聯(lián)合以提高治療效率,這些方法包括對(duì)細(xì)胞周期機(jī)制的基因操作,通過(guò)基因療法誘導(dǎo)毛細(xì)胞的生成,干細(xì)胞移植進(jìn)入受損的耳蝸、耳蝸神經(jīng)及耳蝸核神經(jīng)元。由于毛細(xì)胞可以從支持細(xì)胞中再生,通過(guò)橫向分化再生毛細(xì)胞的機(jī)制將會(huì)明顯提高治療聽(tīng)力損失措施的潛力[29-30]。
[1] Chen W,Johnson SL,Walter M,et al. Human Fetal Auditory Stem Cells Can Be Expanded In Vitro and Differentiate Into Functional Auditory Neurons and Hair Cell-Like Cells. Stem Cells,2009,27(5):1196-204.
[2] Huawei L,Hong L,Stefan H. Pluripotent stem cells from the adult mouse inner ear. Nat Med, 2003,9:1293-1299.
[3] Sng J,Lufkin T. Filling the silent void:genetic therapies for hearing impairment. Genet Res Int. 2012,2012:748698.
[4] Kopecky B,Fritzsch B. Regeneration of hair cells:making sense of all the noise. Pharmaceuticals, 2011,4:848-879.
[5] Okano T,Kelley MW. Stem cell therapy for the inner ear:recent advances and future directions. Trends in Amplification,2012,16(1):4-18.
[6] Ronaghi M,Nasr M,Stefan Heller. Concise Review:Inner Ear Stem Cells-An Oxymoron,but Why? Stem Cells, 2012,30(1):69-74.
[7] Okano T,Kelley MW. Stem cell therapy for the inner ear:recent advances and future directions. Trends in Amplification, 2012,16(1):4-18.
[8] Sinkkonen ST, Chai RJ, Jan TA, et al. Intrinsic regenerative potential of murine cochlear supporting cells. Sci. Rep,2011.
[9] Almeida-Branco MS,Cabrera S,Lopez-Escamez JA. Perspectives for the treatment of sensorineural hearing loss by cellular regeneration of the inner ear. Acta Otorrinolaringologica Espanola,2014, 66(5):286-295.
[10] Liu Q,Ping C,Wang J. Molecular mechanisms and potentials for differentiating inner ear stem cells into sensory hair cells.Developmental Biology,2014,390(2):93-101.
[11] Almeida-Branco MS, Cabrera S, Lopez-Escamez JA.Perspectives for the treatment of sensorineural hearing loss by cellular regeneration of the inner ear. Acta Otorrinolaringologica Espanola, 2014,66(5):286-295.
[12] Mantela J,Jiang Z,Ylikoski J,et al. The retinoblastoma gene pathway regulates the postmitotic state of hair cells of the mouse inner ear. Development,2005,132(10):2377-2388.
[13] Weber T,Corbett MK,Chow LM,et al. Rapid cell-cycle reentry and cell death after acute inactivation of the retinoblastoma gene product in postnatal cochlear hair cells. Proceedings of the National Academy of Sciences,2008,105(2):781-785.
[14] Mizutari K,Fujioka M,Hosoya M,et al. Notch Inhibition Induces Cochlear Hair Cell Regeneration and Recovery of Hearing after Acoustic Trauma. Neuron,2015,77(1):58-69.
[15] Kiernan AE. Notch signaling during cell fate determination in the inner ear. Semin. CellDev.Biol,2013,24:470-479.
[16] Lee JH,Kang WK,Seo JH,et al. Neural Differentiation of Bone Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells:Applicability for Inner Ear Therapy. Korean Journal of Audiology,2012,16(2):47-53.
[17] Hickox A E. Noise-induced cochlear neuronal degeneration and its role in hyperacusis -and tinnitus-like behavior. Massachusetts Institute of Technology,2013.
[18] Zhang PZ,He Y,Jiang XW,et al. Stem cell transplantation via the cochlear lateral wall for replacement of degenerated spiral ganglion neurons. Hear Res 2013,298:1-9.
[19] Tucker ES,Lehtinen MK,Maynard T,et al. Proliferative and transcriptional identity of distinct classes of neural precursors in the mammalian olfactory epithelium. Development 2010,137:2471-2481.
[20] Ogawa T, Takezawa K, Shimizu S, et al. Valproic acid promotes neural regeneration of olfactory epithelium in adult mice after methimazole-induced damage. Am J Rhinol Allergy 2014, 28:e95-99.
[21] Yang H,Chen X,Gao Z. Recent progresses in stem cell research and hearing restoration. Journal of Otology,2008,3(1):1-8.
[22] Bai Q, Desprat R, Klein B,et al. Embryonic stem cells or induced pluripotent stem cells? A DNA integrity perspective. Curr Gene Ther, 2013,13:93-98.
[23] Hu BY, Weick JP, Yu J, et al.Neural differentiation of human induced pluripotent stem cells follows developmental principles but with variable potency. Proc Nat Acad Sci USA. 2010,107:4335-4340.
[24] Gunewardene N,Bergen NV,Crombie D,et al. Directing human induced pluripotent stem cells into a neurosensory lineage for auditory neuron replacement. Bioresearch Open Access,2014,3(4):162-75.
[25] Naito Y,Nakamura T,Nakagawa T,et al. Transplantation of bone marrow stromal cells into the cochlea of chinchillas. Neuroreport,2004,19,15(1):1-4.
[26] Akihiro J, Matsuoka MD PhD, Kondo T, et al. In Vivo and In Vitro Characterization of Bone Marrow-Derived Stem Cells in the Cochlea. Laryngoscope,2006,116(8):1363-1367.
[27] Li H,Liu H,Heller S. Pluripotent stem cells from the adult mouse inner ear. Nat Med, 2003,9(10):1257-1259.
[28] Elbana AM,Abdel-Salam S,Morad GM,et al. Endogenous bone marrow stem cell mobilization in rats:Its potential role in homing and repair of damaged inner ear. Egyptian Journal of Ear Nose Throat & Allied Sciences,2015,16(1):55-67.
[29] Batts SA,Raphael Y. Transdifferentiation and its applicability for inner ear therapy. Hear Res,2007,227:41-47.
[30] Andl T,Murchison EP,Liu F,et al. The miRNA-processing enzyme dicer is essential for the morphogenesis and maintenance of hair follicles. Curr Biol,16:1041-1049.
浙江省教育廳(Z201119721);浙江省衛(wèi)生廳(200913120)
310053 浙江中醫(yī)藥大學(xué)第一臨床醫(yī)學(xué)院(吳佳源)310006 浙江省中醫(yī)院(劉俊)*通信作者