楊元,袁正洲,呂志宇,張淑江,李曉紅,李作孝
(西南醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院,四川瀘州646000)
?
血管活性腸肽對(duì)自身免疫性腦脊髓炎大鼠神經(jīng)保護(hù)作用及其機(jī)制
楊元,袁正洲,呂志宇,張淑江,李曉紅,李作孝
(西南醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院,四川瀘州646000)
目的 探討血管活性腸肽(VIP)對(duì)自身免疫性腦脊髓炎(EAE)大鼠的神經(jīng)保護(hù)作用及其相關(guān)作用機(jī)制。方法 將60只健康雌性Wistar大鼠隨機(jī)分為正常對(duì)照組、模型對(duì)照組、VIP低劑量組和VIP高劑量組,每組15只。另取10只豚鼠,斷頸處死,迅速分離脊髓,研磨勻漿,加入完全弗氏佐劑制備抗原,除正常對(duì)照組外均誘導(dǎo)建立EAE模型。自造模當(dāng)日起,每隔一日VIP低、高劑量組分別腹腔注射VIP 4、16 nmol/kg,正常對(duì)照組及模型對(duì)照組同期分別腹腔注射0.8 mL生理鹽水,連續(xù)5次。自造模當(dāng)日起,記錄各組精神、行動(dòng)等一般情況,EAE潛伏期和進(jìn)展期,于發(fā)病高峰期行神經(jīng)病殘疾評(píng)分(NDS)。于發(fā)病高峰期處死大鼠,未發(fā)病大鼠飼養(yǎng)8周處死,取腦組織。采用ELISA法檢測(cè)腦組織勻漿IL-17A表達(dá),采用免疫組化SP法檢測(cè)膠質(zhì)纖維酸性蛋白(GFAP)陽(yáng)性細(xì)胞的平均光密度值(以此作為GFAP表達(dá))。結(jié)果 正常對(duì)照組均未發(fā)病,模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組均出現(xiàn)不同程度食量下降、精神萎靡、后肢無(wú)力、尾部拖地,且模型對(duì)照組癥狀最重,VIP高劑量組癥狀最輕。模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組EAE潛伏期逐漸延長(zhǎng),進(jìn)展期逐漸縮短;組間兩兩比較P<0.05或<0.01。模型對(duì)照組、VIP低劑量組高峰期NDS均高于VIP高劑量組(P均<0.01)。與正常對(duì)照組比較,模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組腦組織IL-17A及GFAP表達(dá)均升高(P均<0.05)。模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組腦組織IL-17A及GFAP表達(dá)均依次降低,組間兩兩比較P均<0.05。結(jié)論 VIP對(duì)EAE大鼠具有神經(jīng)保護(hù)作用,并呈一定濃度依賴(lài)性;降低腦組織IL-17A表達(dá)、抑制星形膠質(zhì)細(xì)胞活化可能是其作用機(jī)制之一。
自身免疫性腦脊髓炎;血管活性腸肽;白細(xì)胞介素17A;星形膠質(zhì)細(xì)胞;大鼠
多發(fā)性硬化(MS)是一種中樞神經(jīng)系統(tǒng)(CNS)自身免疫性疾病,其基礎(chǔ)研究多采用自身免疫性腦脊髓炎(EAE)動(dòng)物模型。MS患者Th1/Th2細(xì)胞免疫平衡被破壞,最終發(fā)生炎性細(xì)胞浸潤(rùn)、白質(zhì)脫髓鞘、軸突變性等病理改變[1]。隨著對(duì)自身免疫性疾病的進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),由Th17細(xì)胞產(chǎn)生的IL-17A可通過(guò)與其受體結(jié)合加速中樞炎癥反應(yīng),可能與EAE的發(fā)生有關(guān)[2,3]。研究表明,血管活性腸肽(VIP)可誘導(dǎo)免疫細(xì)胞增殖、分化及遷移,抑制炎性因子(IL-17A、IFN-γ、NO等)的合成及分泌,發(fā)揮免疫調(diào)節(jié)作用[4]。VIP治療類(lèi)風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的效果較好[5],但其對(duì)MS的治療作用及其相關(guān)機(jī)制報(bào)道較少。為此,我們于2014年6月~2015年1月進(jìn)行了如下研究。
1.1 材料 動(dòng)物:健康雌性Wistar大鼠60只,6~8周齡,體質(zhì)量200~250 g;健康豚鼠10只,雌雄不限,6~8周齡,體質(zhì)量250~300 g;均購(gòu)于瀘州醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。試劑:VIP(0.5 mg/支)購(gòu)于北京博奧森生物技術(shù)有限公司;完全弗氏佐劑(CFA)購(gòu)于美國(guó)Sigma公司,IL-17A ELISA試劑盒購(gòu)于廣州雅怡生物科技有限公司;兔抗膠質(zhì)纖維酸性蛋白(GFAP)多克隆抗體(1∶160)購(gòu)于上海雅吉生物科技有限公司;免疫組化試劑盒購(gòu)于武漢博士德生物工程有限公司。
1.2 免疫抗原制備 斷頸處死10只豚鼠,無(wú)菌條件下迅速分離脊髓,去脊膜。稱(chēng)質(zhì)量后移入玻璃勻漿器,與等量生理鹽水混合,研磨成50%的全脊髓勻漿(WSCH)。將CFA與WSCH等體積混合,采用玻璃注射器抽打至油包水乳狀,以滴在水面不散確定為合格抗原。
1.3 動(dòng)物分組及EAE模型制備 將60只Wistar大鼠隨機(jī)分為正常對(duì)照組、模型對(duì)照組、VIP低劑量組、VIP高劑量組,每組15只。取1.2中制備好的免疫抗原,以0.2 mL/100 g注入模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組雙側(cè)后肢足掌皮下,正常對(duì)照組注射等量生理鹽水和CFA混合液。自造模當(dāng)日起,VIP低劑量組每隔一日腹腔注射VIP 4 nmol/kg(約0.2 mL),VIP高劑量組腹腔注射VIP 16 nmol/kg(約0.8 mL),正常對(duì)照組及模型對(duì)照組同期腹腔注射0.8 mL生理鹽水,共5次。
1.4 相關(guān)指標(biāo)觀(guān)察
1.4.1 發(fā)病情況 自造模當(dāng)日起,記錄各組精神、行動(dòng)等一般情況,EAE潛伏期(從大鼠正常飲食、活動(dòng)到出現(xiàn)食量下降、活動(dòng)能力降低的時(shí)間)和進(jìn)展期(從大鼠活動(dòng)能力降低到出現(xiàn)自傷后肢、精神極度衰弱、癱瘓、抽搐的時(shí)間)。大鼠出現(xiàn)爬行困難、自傷后肢、精神極度衰弱、癱瘓(單肢體、雙肢體、四肢)、抽搐、瀕死或死亡為發(fā)病高峰期,由同一觀(guān)察者于發(fā)病高峰期采用Kono′s評(píng)分標(biāo)準(zhǔn)行神經(jīng)病殘疾評(píng)分(NDS)。
1.4.2 腦組織IL-17A表達(dá) 于發(fā)病高峰期處死大鼠,未發(fā)病大鼠飼養(yǎng)8周處死。無(wú)菌條件下采用組織剪剖開(kāi)頂、枕、頸部皮膚及皮下組織,用鑷子沿枕骨大孔向上打開(kāi)顱骨;向下分離頸椎棘突,充分暴露腦組織;剪開(kāi)側(cè)腦室,PBS反復(fù)沖洗后取出腦組織。將腦組織與生理鹽水制成體積分?jǐn)?shù)為10%的腦組織勻漿,3 500 r/min離心10 min。取上清液,于-20 ℃冰箱保存。采用ELISA法檢測(cè)腦組織勻漿上清液IL-17A表達(dá)。嚴(yán)格按照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。
1.4.3 腦組織星形膠質(zhì)細(xì)胞活化情況 采用免疫組化SP法。將大鼠腦組織制成石蠟切片,常規(guī)脫蠟、水化、清除內(nèi)源性過(guò)氧化物酶活性、封閉組織蛋白,逐次滴加兔抗GFAP多克隆抗體一抗(以1∶160 稀釋)、生物素標(biāo)記的山羊抗兔IgG二抗、辣根酶標(biāo)記的鏈霉卵白素。常規(guī)DAB顯色,復(fù)染,脫水,透明,封片。于400倍光鏡下觀(guān)察大鼠腦組織GFAP表達(dá)情況,以細(xì)胞質(zhì)染成棕黃色判定為陽(yáng)性細(xì)胞。采用ImagePro Plus軟件對(duì)GFAP陽(yáng)性細(xì)胞的平均光密度(IOD)值進(jìn)行半定量分析,以此反映腦組織星形膠質(zhì)細(xì)胞活化情況。
2.1 各組發(fā)病情況 正常對(duì)照組均未發(fā)病,模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組均出現(xiàn)不同程度食量下降、精神萎靡、后肢無(wú)力、尾部拖地,造模第14~17天癥狀最典型,表現(xiàn)為雙側(cè)后肢無(wú)力拖地、行走畫(huà)圈、爬行困難、自傷后肢、精神極度衰弱、癱瘓、抽搐。模型對(duì)照組癥狀最重,VIP高劑量組癥狀最輕。各組均未出現(xiàn)死亡。模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組EAE潛伏期逐漸延長(zhǎng),進(jìn)展期逐漸縮短;組間兩兩比較P<0.05或<0.01。模型對(duì)照組及VIP低劑量組高峰期NDS均高于VIP高劑量組(P均<0.01)。見(jiàn)表1。
表1 模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組EAE潛伏期、進(jìn)展期及NDS比較
注:與模型對(duì)照組比較,#P<0.05,*P<0.01;與VIP低劑量組比較,△P<0.05,▲P<0.01。
2.2 各組腦組織IL-17A及GFAP表達(dá)比較 與正常對(duì)照組比較,模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組腦組織IL-17A及GFAP表達(dá)均升高(P均<0.05)。模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組腦組織IL-17A及GFAP表達(dá)均依次降低,組間兩兩比較P均<0.05。見(jiàn)表2。
表2 各組腦組織IL-17A及GFAP表達(dá)比較
注:與正常對(duì)照組比較,*P<0.01;與模型對(duì)照組比較,#P<0.05,△P<0.01;與VIP低劑量組比較,▲P<0.01。
2.3 NDS與腦組織IL-17A及GFAP表達(dá)的關(guān)系 模型對(duì)照組NDS與腦組織IL-17A、GFAP表達(dá)均呈正相關(guān)(r分別為0.798、0.825,P均<0.05)。
VIP是一種非膽堿能非腎上腺能神經(jīng)遞質(zhì),由28個(gè)氨基酸殘基組成,屬于胰高血糖素-胰泌素家族。VIP通過(guò)與其受體結(jié)合,具有調(diào)節(jié)神經(jīng)血管、腦血流、皮層能量代謝、下丘腦和垂體間功能、擴(kuò)張血管作用。腦內(nèi)注射VIP可明顯減小腦缺血后梗死體積,說(shuō)明其具有神經(jīng)保護(hù)作用。本研究結(jié)果顯示,造模后模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組均出現(xiàn)不同程度食量下降、精神萎靡、后肢無(wú)力、尾部拖地等EAE樣表現(xiàn),但模型對(duì)照組癥狀最重,VIP高劑量組癥狀最輕;且模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組EAE潛伏期逐漸延長(zhǎng),進(jìn)展期逐漸縮短;說(shuō)明VIP可減緩EAE的發(fā)病進(jìn)程。本研究模型對(duì)照組、VIP低劑量組NDS均明顯高于VIP高劑量組,說(shuō)明VIP對(duì)EAE大鼠具有一定的神經(jīng)保護(hù)作用,且高劑量時(shí)效果更明顯。
IL-17A是一種具有強(qiáng)烈促炎作用的細(xì)胞因子,其主要作用包括:①調(diào)節(jié)固有免疫癥[6,7]:IL-17A作為炎癥介質(zhì),參與自身免疫性炎癥性疾病的發(fā)生、發(fā)展,通過(guò)作用于基因靶點(diǎn)產(chǎn)生急性期反應(yīng)蛋白、炎癥趨化因子等物質(zhì);同時(shí)上調(diào)組織相容性復(fù)合體-Ⅱ抗原、集落共刺激因子、T細(xì)胞刺激因子表達(dá),促使T細(xì)胞活化,導(dǎo)致免疫失衡。②信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)作用[8,9]:IL-17A作為細(xì)胞內(nèi)及細(xì)胞間信使,參與信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過(guò)程,可促進(jìn)多種炎性蛋白的轉(zhuǎn)錄及合成,加速免疫紊亂。星形膠質(zhì)細(xì)胞作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)的一種非特異性抗原提呈細(xì)胞,參與復(fù)雜的免疫病理過(guò)程[10]。本研究結(jié)果顯示,與正常對(duì)照組比較,模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組腦組織IL-17A及GFAP表達(dá)均升高,模型對(duì)照組及VIP低、高劑量組腦組織IL-17A及GFAP表達(dá)均依次降低。說(shuō)明VIP對(duì)EAE大鼠的神經(jīng)保護(hù)作用可能與其降低腦組織IL-17A表達(dá)、抑制星形膠質(zhì)細(xì)胞活化有關(guān),并呈一定的濃度依賴(lài)性。EAE大鼠腦組織IL-17A表達(dá)升高,可能通過(guò)Act1轉(zhuǎn)錄因子激活星形膠質(zhì)細(xì)胞,從而促進(jìn)炎癥因子釋放,加速髓鞘脫失的發(fā)生、發(fā)展[11,12],同時(shí)活化的星形膠質(zhì)細(xì)胞通過(guò)上調(diào)GFAP表達(dá),形成活化的膠質(zhì)斑塊[13];而VIP可減輕上述反應(yīng),從而發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用[14]。
Abad等[15]在體外抗原激發(fā)實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),VIP基因剔除 (VIP KO) 的EAE小鼠在免疫效應(yīng)期未受到損害,而將髓鞘少突膠質(zhì)細(xì)胞糖蛋白35-55多肽誘導(dǎo)的EAE小鼠VIP基因剔除后,從其體內(nèi)分離出的淋巴細(xì)胞能將EAE疾病過(guò)繼轉(zhuǎn)移給野生型小鼠。VIP基因剔除的小鼠對(duì)EAE耐受的機(jī)制還有待進(jìn)一步闡明,但在腦脊膜和脊髓內(nèi)有CD4+T細(xì)胞、Th17細(xì)胞的入侵,而在中樞神經(jīng)系統(tǒng)實(shí)質(zhì)卻沒(méi)有免疫細(xì)胞的侵入。因此認(rèn)為其可能存在淋巴細(xì)胞遷徙的免疫缺陷。
綜上所述,VIP對(duì)EAE大鼠具有神經(jīng)保護(hù)作用,并呈一定濃度依賴(lài)性;降低腦組織IL-17A表達(dá)、抑制星形膠質(zhì)細(xì)胞活化可能是其作用機(jī)制之一。
[1] Milo R, Miller A. Revised diagnostic criteria of multiple sclerosis[J]. Autoimmun Rev, 2014,13(4-5):518-524.
[2] Adamik J, Henkel M, Ray A, et al. The IL17A and IL17F loci have divergent histone modifications and are differentially regulated by prostaglandin E2in Th17 cells[J]. Cytokine, 2013,64(1):404-412.
[3] Jafarzadeh A, Azizi SV, Nemati M, et al. Ginger extract reduces the expression of IL-17 and IL-23 in the sera and central nervous system of EAE mice[J]. Iran J Immunol, 2015,12(4):288-301.
[4] Ran WZ, Dong L, Tang CY, et al. Vasoactive intestinal peptide suppresses macrophage-mediated inflammation by downregulating interleukin-17A expression via PKA- and PKC-dependent pathways[J]. Int J Exp Pathol, 2015,96(4):269-75.
[5] Sethi V, Rubinstein I, Kuzmis A, et al. Novel, biocompatible, and disease modifying VIP nanomedicine for rheumatoid arthritis[J]. Mol Pharm, 2013,10(2):728-738.
[6] Patel DD, Kuchroo VK. Th17 cell pathway in human immunity: lessons from genetics and therapeutic interventions[J].Immunity, 2015,43(6):1040-1051.
[7] Sharma J, Balakrishnan L, Datta KK, et al. A knowledge base resource for interleukin-17 family mediated signaling[J]. J Cell Commun Signal, 2015,9(3):291-296.
[8] Krstic J, Obradovic H, Kukolj T, et al. An overview of interleukin-17A and interleukin-17 receptor a structure, interaction and signaling[J]. Protein Pept Lett, 2015,22(7):570-578.
[9] Waisman A, Hauptmann J, Regen T. The role of IL-17 in CNS diseases[J]. Acta Neuropathol, 2015,129(5):625-637.
[10] Yang JF, Tao HQ, Liu YM, et al. Characterization of the interaction between astrocytes and encephalitogenic lymphocytes during the development of experimental autoimmune encephalitomyelitis (EAE) in mice[J]. Clin Exp Immunol, 2012,170(3):254-265.
[11] Kang Z, Altuntas CZ, Gulen MF, et al. Astrocyte-restricted ablation of interleukin-17-induced Act1-mediated signaling ameliorates autoimmune encephalomyelitis[J]. Immunity, 2010,32(3):414-425.
[12] Kang Z, Wang C, Zepp J, et al. Act1 mediates IL-17-induced EAE pathogenesis selectively in NG2+glial cells[J]. Nat Neurosci, 2013,16(10):1401-1408.
[13] Yan Y, Ding X, Li K, et al. CNS-specific Therapy for Ongoing EAE by Silencing IL-17 Pathway in Astrocytes[J]. Mol Ther, 2012,20(7):1338-1348.
[14] 莊文欣,劉宗昱,王雪凈,等.血管活性腸肽對(duì)帕金森病大鼠黑質(zhì)膠質(zhì)細(xì)胞活化及相關(guān)炎性因子釋放的影響[J].解剖學(xué)報(bào),2016,47(2):178-184.
[15] Abad C, Tan YV, Lopez R, et al. Vasoactive intestinal peptide loss leads to impaired CNS parenchymal T-cell infiltration and resistance to experimental autoimmune encephalomyelitis[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2010,107(45):555-560.
瀘州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院青年基金資助項(xiàng)目(14036)。
李作孝(E-mail: lzx3235@sina.com)
10.3969/j.issn.1002-266X.2016.40.012
R744.5
A
1002-266X(2016)40-0040-03
2016-01-05)