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    鎘誘導(dǎo)HEK293細(xì)胞自噬和凋亡

    2016-12-01 06:38:04劉宣宣王文倩毛偉平
    關(guān)鍵詞:蛋白酶熒光通路

    劉宣宣,王文倩,毛偉平

    (1.南京師范大學(xué)江蘇省分子醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室,江蘇南京210023;2.南京醫(yī)科大學(xué)康達(dá)學(xué)院生理學(xué)教研室,江蘇連云港222000)

    鎘誘導(dǎo)HEK293細(xì)胞自噬和凋亡

    劉宣宣2,王文倩2,毛偉平1

    (1.南京師范大學(xué)江蘇省分子醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室,江蘇南京210023;2.南京醫(yī)科大學(xué)康達(dá)學(xué)院生理學(xué)教研室,江蘇連云港222000)

    目的探究鎘(二氯化鎘,CdCl2)能否誘導(dǎo)HEK293細(xì)胞自噬與凋亡以及細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(ERK)1/2和AKT蛋白在自噬中的作用。方法將綠色熒光蛋白(GFP)-微管相關(guān)蛋白Ⅰ輕鏈3B(LC3B)重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至HEK293細(xì)胞24 h后,以CdCl22,4,8和10μmol·L-1誘導(dǎo)細(xì)胞12 h,熒光顯微鏡觀察自噬情況;以CdCl22,4,8和10μmol·L-1誘導(dǎo)未轉(zhuǎn)染GFP-LC3B重組質(zhì)粒的HEK293細(xì)胞12 h,透射電子顯微鏡下觀察自噬泡;Western蛋白印跡檢測(cè)LC3B-Ⅱ/Ⅰ的表達(dá)變化,以及ERK1/2和AKT蛋白的磷酸化表達(dá);流式細(xì)胞儀檢測(cè)CdCl2(≤10μmol·L-1)對(duì)HEK293細(xì)胞凋亡的影響。用3-MA(自噬抑制劑)預(yù)處理CdCl210μmol·L-1誘導(dǎo)的HEK293細(xì)胞12 h,Western蛋白印跡檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)激活型胱天蛋白酶3的表達(dá)。結(jié)果CdCl2(≤10μmol·L-1)誘導(dǎo)HEK293細(xì)胞12 h,熒光顯微鏡下轉(zhuǎn)染細(xì)胞出現(xiàn)綠色熒光點(diǎn)狀聚集,電鏡下觀察到自噬泡,Western蛋白印跡檢測(cè)到LC3B-Ⅱ/Ⅰ表達(dá)量增加(P<0.05,P<0.01),ERK1/2和AKT蛋白磷酸化水平均增加(P<0.05,P<0.01)。流式細(xì)胞儀檢測(cè)出CdCl2(≤10μmol·L-1)誘導(dǎo)的HEK293細(xì)胞發(fā)生了細(xì)胞凋亡;加入3-MA 20μmol·L-1+CdCl210μmol·L-1后,細(xì)胞自噬被抑制,激活型胱天蛋白酶3表達(dá)增加(P<0.01)。結(jié)論低濃度CdCl2(≤10μmol·L-1)能引起細(xì)胞自噬,可能通過ERK1/2和AKT蛋白介導(dǎo)細(xì)胞自噬;自噬與凋亡相伴發(fā)生,自噬可能抑制凋亡。

    鎘;HEK293細(xì)胞;自噬;細(xì)胞凋亡

    鎘(cadmium,Cd)是一種有毒重金屬,國際癌癥研究組織將鎘及其相關(guān)化合物確認(rèn)為第一類致癌物。鎘的化合物可引起人類腎、肝、肺、咽、前列腺等器官發(fā)生癌癥。大量研究表明,長期低劑量接觸鎘主要引起近曲小管與腎小球系膜細(xì)胞的損傷[1]。

    自噬是真核細(xì)胞自我保護(hù)的一種方式,是自噬泡包裹著部分細(xì)胞器如線粒體、高爾基體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)等被溶酶體所降解的過程。營養(yǎng)缺乏、感染及細(xì)胞器受損等均能激活自噬[2]。目前,自噬的檢測(cè)方法主要有磺酰戊二胺(monodansylcadaverine,MDC)染色法、透射電子顯微鏡檢測(cè)自噬小體、綠色熒光蛋白(GFP)-微管相關(guān)蛋白Ⅰ輕鏈3(lightchain 3,LC3)熒光定位和免疫印跡法檢測(cè)LC3-Ⅰ到LC3-Ⅱ的轉(zhuǎn)化等[3]。

    目前的研究發(fā)現(xiàn),如下幾種信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑誘發(fā)自噬:ClassⅠ磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylino? sitol3-kinases,PI3K)-蛋白激酶B(protein kinase B,PKB/AKT)-哺乳動(dòng)物西羅莫習(xí)(雷帕霉素)靶蛋白〔mammalian target of sirolimus(Rapamycin),mTOR〕和Ras/Raf1-細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(extracel?lular regulated protein kinases,ERK1/2)信號(hào)通路,ClassⅢPI3K復(fù)合物,Ca2+-鈣調(diào)蛋白依賴性激酶激酶(calcium/calmodulin dependent protein kinase kinase,CaMKK)β-絲裂原活化蛋白激酶(mitogenactivated protein kinase,MAPK)信號(hào)通路及活性氧(reactive oxygen species,ROS)等[4]。有研究表明,激活的PI3K-Akt-mTOR信號(hào)通路能夠通過抑制自噬增強(qiáng)細(xì)胞凋亡;而Ras/Raf-1/ERK激酶(ERK kinases,MEK)/ERK的信號(hào)通路中的Raf-1蛋白與PI3K/Akt串聯(lián)的通路通過抑制Raf-1的表達(dá),從而抑制自噬[5],說明ERK和Akt的激活在細(xì)胞自噬現(xiàn)象中也存在著相互作用。用ERK的抑制劑處理細(xì)胞可降低細(xì)胞色素c的釋放,同時(shí)活化胱天蛋白酶3,提示ERK也可能介導(dǎo)細(xì)胞凋亡[6];也有研究表明,在系膜細(xì)胞中,ERK的抑制劑PD98059對(duì)鎘誘導(dǎo)的CaMKⅡ信號(hào)介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡并未起到作用[7]。

    用不同濃度鎘處理U937細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)鎘引起細(xì)胞凋亡呈濃度-效應(yīng)關(guān)系和時(shí)間-效應(yīng)關(guān)系[8]。腎小球系膜細(xì)胞已被證實(shí)是鎘致毒的重要靶點(diǎn)[1],但尚無研究證實(shí)CdCl2(≤10μmol·L-1)能否誘導(dǎo)人胚腎細(xì)胞自噬,以及自噬與凋亡關(guān)系。本研究旨在使用GFP-LC3熒光定位法探究CdCl2(≤10μmol·L-1)能否引起人胚腎細(xì)胞自噬,相關(guān)蛋白在自噬信號(hào)通路中的作用,以及自噬與凋亡的關(guān)系。通過促進(jìn)或抑制細(xì)胞自噬的發(fā)生,對(duì)疾病的預(yù)測(cè)和預(yù)防提供一定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 細(xì)胞和質(zhì)粒

    人胚腎細(xì)胞HEK293,GFP-LC3B重組質(zhì)粒均由本實(shí)驗(yàn)室保存。人胚腎細(xì)胞HEK293貼壁培養(yǎng)于含10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)基中,置于37℃,5%CO2的飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng),按1∶3用胰酶消化,傳代。

    1.2 試劑及儀器

    高糖DMEM(美國Gibco公司),小牛血清(杭州四季青公司),DMSO(美國Amresco公司),磷酸鈣轉(zhuǎn)染試劑盒(上海碧云天公司),CdCl2、兔抗人LC3B多克隆抗體(美國Sigma公司),ERK1/2、AKT、激活型胱天蛋白酶3(cleaved caspase 3)抗體和3-MA(南京Bioworld公司),HRP標(biāo)記羊抗兔IgG抗體(二抗)(北京中杉金橋公司),ECL發(fā)光液(美國Thermo公司),流式凋亡試劑盒(美國BD公司)。其他常規(guī)化學(xué)試劑均為國產(chǎn)分析純(南京化學(xué)試劑廠)。Hera Cell150 CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱(德國Heraeus公司),TE-2000U倒置相差顯微鏡(日本尼康公司),F(xiàn)ACS Calibur流式細(xì)胞儀(美國BD公司)。

    1.3 熒光顯微鏡觀察GFP-LC3B在HEK293細(xì)胞中的表達(dá)

    以每孔1×106L-1HEK293細(xì)胞接種于6孔板內(nèi),待細(xì)胞長至70%~80%時(shí),準(zhǔn)備轉(zhuǎn)染。首先,換無抗生素培液(每孔加2 mL培液),30~60 min后將20μL GFP-LC3B質(zhì)粒DNA加到600μL CaCl2溶液中混勻;將DNA-CaCl2溶液加入到600μL BBS(平衡鹽溶液)溶液中,混勻,室溫孵育10~20 min;將DNACaCl2-BBS混合物均勻滴加到6孔板內(nèi),于細(xì)胞培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)24 h后,熒光顯微鏡下檢測(cè)轉(zhuǎn)染基因的表達(dá)。轉(zhuǎn)染成功后的細(xì)胞,隨機(jī)分為GFP-LC3B對(duì)照組和CdCl2(2,4,8和10μmol·L-1)實(shí)驗(yàn)組,6孔板每孔加CdCl22μL,GFP-LC3B對(duì)照組加等量生理鹽水,12 h后熒光顯微鏡下觀察綠色熒光點(diǎn)狀聚集細(xì)胞的形成并拍照。均勻分布于細(xì)胞中的LC3B-Ⅰ在CdCl2的誘導(dǎo)下向LC3B-Ⅱ轉(zhuǎn)化,LC3B-Ⅱ一般只出現(xiàn)在自噬體膜或溶酶體膜上,從而形成集中于自噬體膜或溶酶體膜上的綠色熒光點(diǎn)狀聚集。

    1.4 透射電子顯微鏡觀察自噬小體

    以每孔1×106L-1HEK293細(xì)胞接種于6孔板內(nèi),實(shí)驗(yàn)組各孔依次加入2,4,8和10μmol·L-1的CdCl2溶液2μL,正常細(xì)胞對(duì)照組加等量滅菌生理鹽水,24 h后胰酶消化移至離心管,626×g離心5 min,1×PBS洗滌2次,0.5 mL戊二醛固定樣品,放4℃冰箱3~4 h。吸出戊二醛,將離心管放入60℃水浴鍋內(nèi),每管中加入20μL液態(tài)瓊脂,0.2 mL PBS和0.2 mL鋨酸脫水,用30%,50%,70%,80%和90%的丙酮依次脫水,每次15 min,無水丙酮脫水2次,每次10 min。丙酮/樹脂(0.2 mL/0.2 mL)浸透1 h、丙酮/樹脂〔0.2 mL/(0.2 mL+0.2 mL)〕浸透1 h;純樹脂,浸透過夜;包埋。30℃,45℃和60℃各聚合1 d。半薄切片(1~10μmol·L-1),甲苯胺藍(lán)染色。超薄切片,雙染(醋酸雙氧鈾避光染色40 min,檸檬酸鉛染色7 min)。透射電子顯微鏡下觀察自噬小體并拍照。

    1.5 Western蛋白印跡法檢測(cè)自噬及凋亡相關(guān)蛋白的表達(dá)

    HEK293細(xì)胞隨機(jī)分為對(duì)照組和CdCl22,4,8和10μmol·L-1實(shí)驗(yàn)組。收集細(xì)胞,加入含PMSF的裂解液后超聲3次,100℃煮5 min,4℃13 000×g離心2 min,-70℃保存。BCA法進(jìn)行蛋白定量,蛋白上樣量50μg進(jìn)行SDS-PAGE(12%),電泳條件為恒壓90 V,2 h;然后將蛋白轉(zhuǎn)印至PVDF膜上,轉(zhuǎn)膜條件為恒壓24 V,2 h;用含5%脫脂奶粉的PBST封閉2 h,PBST洗膜4次,每次15 min;一抗(兔抗人LC3B、ERK1/2、AKT,1∶1000稀釋)4℃孵育過夜;二抗(羊抗兔IgG-HRP,1∶1000稀釋)4℃孵育8 h。ECL熒光顯色,于暗室顯影后掃描。目標(biāo)蛋白與β肌動(dòng)蛋白的積分吸光度值比值表示蛋白相對(duì)表達(dá)水平。

    以3-MA(自噬抑制劑)20μmol·L-1、CdCl210μmol·L-1和3-MA 20μmol·L-1+CdCl210μmol·L-1分別處理HEK293細(xì)胞12 h后,檢測(cè)LC3B-Ⅱ/Ⅰ和激活型胱天蛋白酶3的表達(dá),一抗(兔抗人LC3B和激活型胱天蛋白酶3,1∶1000稀釋);二抗(羊抗兔IgGHRP,1∶1000稀釋)。

    1.6 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡

    HEK293細(xì)胞實(shí)驗(yàn)組每孔依次加入2μL的CdCl22,4,8和10μmol·L-1溶液,對(duì)照組加等量生理鹽水。凋亡檢測(cè)試劑盒FITC Annexin-Ⅴ和PI檢測(cè)。收集細(xì)胞(2000×g離心5 min),PBS洗滌2次(2000×g離心5 min),制備1×109L-1的細(xì)胞懸液,流式管每管加入100μL 1×結(jié)合緩沖液懸浮細(xì)胞,5μL FITC Annexin-V標(biāo)記,避光染色10 min;加入10μL碘化丙啶染液,避光染色5 min;加350μL 1×結(jié)合緩沖液,1 h內(nèi)用流式細(xì)胞儀檢測(cè)。

    1.7 統(tǒng)計(jì)計(jì)學(xué)分析

    實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以x±s形式表示,統(tǒng)計(jì)學(xué)處理采用Image J軟件分析。SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行單因素方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 CdCl2誘導(dǎo)的HEK293細(xì)胞中GFP-LC3B的表達(dá)

    如圖1所示,與GFP-LC3B細(xì)胞對(duì)照組相比,CdCl2處理各組細(xì)胞出現(xiàn)綠色熒光點(diǎn)狀聚集現(xiàn)象(箭頭所示),提示CdCl2(≤10μmol·L-1)可誘導(dǎo)HEK293細(xì)胞自噬。

    2.2 CdCl2誘導(dǎo)HEK293細(xì)胞自噬

    Fig.1 Expression of plasmid GFP-light chain 3(LC3)B in HEK293 cells detected by fluorescent microscope. HEK293 cells transfected with GFP-LC3B were exposed to 2,4,8 and 10μmol·L-1CdCl2for 12 h.Arrows show cytoplasmic GFP-LC3B punctuates.

    Fig.2 Electron micrographs of HEK293 cells exposed to CdCl2(A-E:×1000;F:×4000).HEK293 cells were exposed to CdCl22,4,8 and 10μmol·L-1for 12 h.Arrows show autophagic vacuoles.

    如圖2所示,正常細(xì)胞對(duì)照組細(xì)胞形態(tài)基本完好,CdCl2組均出現(xiàn)了自噬泡,CdCl210μmol·L-1時(shí)出現(xiàn)了損傷的細(xì)胞器,如內(nèi)質(zhì)網(wǎng)和線粒體出現(xiàn)腫脹破裂,其周圍出現(xiàn)空泡狀雙層膜樣結(jié)構(gòu),以及自噬溶酶體內(nèi)最終不能降解的殘?bào)w等(箭頭所示)。提示CdCl2(≤10μmol·L-1)可誘導(dǎo)HEK293細(xì)胞自噬。

    2.3 CdCl2誘導(dǎo)對(duì)HEK293細(xì)胞自噬蛋白LC3B-Ⅱ/Ⅰ表達(dá)的影響

    以CdCl22,4,8和10μmol·L-1處理HEK293細(xì)胞12 h后,自噬蛋白LC3B-Ⅱ/Ⅰ的表達(dá)量均增加(P<0.05,P<0.01)(圖3A);以CdCl210μmol·L-1處理HEK293細(xì)胞2,4,8,12和24 h后,LC3B-Ⅱ/Ⅰ的表達(dá)均增加(P<0.05,P<0.01)(圖3B),提示CdCl2(≤10μmol·L-1)誘導(dǎo)了HEK293細(xì)胞的自噬。

    Fig.3 Effect of CdCl2on expression of LC3B-Ⅱ/Ⅰproteins in HEK293 cells detected by Western blotting. See Fig.2 for the celltreatment.A2 and B2 are semi-quantitative results of A1 and B1.*P<0.05,**P<0.01,compared with normalcontrolgroup.

    2.4 CdCl2誘導(dǎo)對(duì)HEK293細(xì)胞自噬相關(guān)蛋白p-ERK1/2和p-AKT表達(dá)的影響

    圖4結(jié)果所示,以CdCl22,4,8和10μmol·L-1處理HEK293細(xì)胞12 h后,LC3B-Ⅱ/Ⅰ的表達(dá)量均增加,即細(xì)胞發(fā)生自噬;ERK1/2和AKT在不同CdCl2濃度下表達(dá)量相同時(shí),p-ERK1/2和p-AKT蛋白表達(dá)均增加(P<0.05,P<0.01)。提示CdCl2(≤10μmol·L-1)誘導(dǎo)細(xì)胞自噬時(shí),可能激活了ERK1/2和AKT蛋白的磷酸化,或激活了相關(guān)信號(hào)通路。

    Fig.4 Effect of CdCl2on expression of p-extracellular regulated protein kinases(ERK)and p-protein kinase B(PKB/AKT)in HEK293 cells exposed for 12 h detected by Western blotting.See Fig.2 for the cell treatment.B and C:semi-quantitative results of p-ERK and p-AKT in A.*P<0.05,**P<0.01,compared with normal cell control group.

    2.5 CdCl2誘導(dǎo)對(duì)HEK293細(xì)胞凋亡的影響

    流式結(jié)果(圖5)顯示,以CdCl22,4,8和10μmol·L-1處理HEK293細(xì)胞12 h后,與對(duì)照組相比,CdCl22,4,8和10μmol·L-1組均出現(xiàn)細(xì)胞凋亡現(xiàn)象;同時(shí),CdCl2(≤10μmol·L-1)可誘導(dǎo)HEK293細(xì)胞自噬。提示CdCl2(≤10μmol·L-1)時(shí)細(xì)胞自噬與凋亡相伴發(fā)生。

    Fig.5 Effect of CdCl2exposure for 12 h on apoptosis of HEK293 cells by flow cytometry microscopy.See Fig.2 for the celltreatment.

    2.6 3-MA對(duì)CdCl2誘導(dǎo)的HEK293細(xì)胞凋亡的增強(qiáng)作用

    圖6結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,CdCl210μmol·L-1組自噬蛋白LC3B-Ⅱ/Ⅰ和凋亡蛋白激活型胱天蛋白酶3的表達(dá)增強(qiáng),出現(xiàn)細(xì)胞自噬和凋亡;與CdCl210μmol·L-1組相比,3-MA 20μmol·L-1+CdCl210μmol·L-1組自噬蛋白LC3B-Ⅱ/Ⅰ的表達(dá)減弱(P<0.05,P<0.01),凋亡蛋白激活型胱天蛋白酶3表達(dá)量增加(P<0.05,P<0.01);提示3-MA抑制了細(xì)胞自噬,增強(qiáng)了細(xì)胞凋亡(圖6A)。即低濃度CdCl2(≤10μmol·L-1)誘導(dǎo)細(xì)胞自噬同時(shí)可能抑制細(xì)胞凋亡。

    Fig.6 Effect of CdCl2on expression of LC3B-Ⅱ/Ⅰand cleaved capase 3 proteins in HEK293 cells exposed for 12 h by Western blotting.See Fig.2 for the cell treatment. B:semi-quantitative results of cleaved capase 3 in A*P<0.05,**P<0.01,compared with normalcontrolgroup.

    3 討論

    自噬廣泛存在于生物體內(nèi),是生物降解胞內(nèi)蛋白,完成細(xì)胞器轉(zhuǎn)化,保持內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定的重要方式[8]。本研究運(yùn)用重組質(zhì)粒GFP-LC3B的轉(zhuǎn)染、透射電子顯微鏡技術(shù)、Western蛋白印跡和流式細(xì)胞術(shù)等方法,表明CdCl2(≤10μmol·L-1)可誘導(dǎo)HEK293細(xì)胞自噬,與長期低劑量接觸鎘主要引起近曲小管與腎小球系膜細(xì)胞的損傷結(jié)果[1]一致;Lim等[9]和Oh[10]等通過對(duì)鎘抵抗細(xì)胞RWI38(通過6個(gè)月逐漸增加鎘濃度處理人肺上皮細(xì)胞WI38而誘導(dǎo)形成)進(jìn)行鎘處理后,也發(fā)現(xiàn)細(xì)胞凋亡特征不明顯,而細(xì)胞自噬作用明顯。由此初步證明,細(xì)胞自噬與凋亡相伴發(fā)生,細(xì)胞自噬可能早于凋亡出現(xiàn)。

    本研究中,ERK1/2和AKT的磷酸化在鎘誘導(dǎo)細(xì)胞自噬中起到了重要作用。ERK1/2具體在細(xì)胞自噬中如何發(fā)揮作用還未可知,因此,ERK1/2介導(dǎo)細(xì)胞自噬的具體機(jī)制仍值得探討。

    本研究顯示,鎘可誘導(dǎo)細(xì)胞自噬和凋亡。自噬抑制劑3-MA增加了細(xì)胞內(nèi)激活型胱天蛋白酶3的表達(dá)和細(xì)胞凋亡的發(fā)生,推測(cè)細(xì)胞自噬在一定范圍內(nèi)抑制了凋亡,在一定程度上延長了細(xì)胞的存活時(shí)間,這與用三氧化二砷等藥物處理細(xì)胞后,自噬與凋亡共存的實(shí)驗(yàn)結(jié)果[11]相一致。Dong等[12]在血管上皮細(xì)胞上發(fā)現(xiàn)低濃度鎘(<10μmol·L-1)在無血清和bFGF條件下,能誘導(dǎo)自噬同時(shí)抑制凋亡。由此可見,自噬的發(fā)生為細(xì)胞內(nèi)物質(zhì)的重復(fù)利用提供了基礎(chǔ),這也可能是鎘作為一種促細(xì)胞分裂劑,刺激細(xì)胞增殖,抑制細(xì)胞凋亡的一種途徑。

    鎘誘導(dǎo)自噬和凋亡均通過細(xì)胞內(nèi)Ca2+信號(hào)的介導(dǎo),Ca2+信號(hào)介導(dǎo)的細(xì)胞自噬和凋亡的發(fā)生分別通過ERK依賴途徑和線粒體胱天蛋白酶信號(hào)通路途徑[13]。鎘能夠同時(shí)誘導(dǎo)自噬和凋亡的發(fā)生,最終介導(dǎo)腎細(xì)胞死亡,表明自噬是通過Ca2+-ERK及ROS-糖原合酶激酶3β兩條途徑所介導(dǎo)[14-15]。本研究顯示,抑制細(xì)胞自噬后,凋亡增強(qiáng),提示自噬的發(fā)生可能抑制凋亡,在細(xì)胞凋亡前期,自噬的發(fā)生可能是細(xì)胞的自我保護(hù)機(jī)制。盡管如此,細(xì)胞自噬和凋亡的具體關(guān)系仍然撲朔迷離,因?yàn)樵诩?xì)胞自噬和凋亡的信號(hào)通路中存在著眾多的交叉和重疊。因此,后續(xù)實(shí)驗(yàn)中,將重點(diǎn)探究細(xì)胞自噬和凋亡的關(guān)系以及各信號(hào)蛋白在細(xì)胞自噬中的作用。以便通過促進(jìn)或抑制細(xì)胞自噬的發(fā)生,為某些疾病的預(yù)測(cè)和預(yù)防提供一定理論基礎(chǔ)。

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    CdCl2induces autophagy and apoptosis in HEK293 cells

    LIU Xuan-xuan2,WANGWen-qian2,MAO Wei-ping1
    (1.Laboratory of Molecular and MedicalBiotechnology,Nanjing NormalUniversity,Nanjing 210023,China;2.DepartmentofPhysiology,Kangda College ofNanjing MedicalUniversity,Lianyungang 222000,China)

    OBJECTIVE To evaluate the possibility that CdCl2induces autophagy and apoptosis in HEK293 cells,and the role of extracellular regulated protein kinases(ERK1/2)and AKT proteins in autophagy.METHODS Green fluorescence protein(GFP)-lightchain 3B(LC3B)expression plasmid was transfected into HEK293 cells.After 24 h,HEK293 cells were induced with CdCl22,4,8 and 10μmol·L-1for 12 h.The expression of GFP-LC3B was detected by fluorescent microscopy.HEK293 cells were induced with CdCl22,4,8 and 10μmol·L-1withouttransfection of GFP-LC3B for 12 h while autophagic vacuoles were observed by transmission electron microscopy.The expression of LC3B-Ⅱ/Ⅰproteins and the phosphorylation levels of ERK1/2 and AKT were analyzed by Western blotting.Apoptosis was detected by flow cytometry microscopy.HEK293 cells were treated with 3-MA 20μmol·L-1+CdCl210μmol·L-1for 12 h before cleaved caspase 3 protein was detected by Western blotting.RESULTS When HEK293 cells were exposed to CdCl2(≤10μmol·L-1)for 12 h,cytoplasmic GFP-LC3B punctuates were observed under the fluorescence microscope,and autophagic vacuoles were observed under an electron microscope.The expression of LC3B-Ⅱ/Ⅰ,p-ERK1/2 and p-AKT proteins was significantly increased in CdCl2-induced cells(P<0.05,P<0.01).Moreover,apoptosis was observed.The addition of 3-MA 20μmol·L-1+CdCl210μmol·L-1enhanced apoptosis.Cleaved capase 3 protein expression was significantly increased(P<0.01).CONCLUSION CdCl2(≤10μmol·L-1)can induce autophagy in HEK293 cells.ERK1/2 and AKT proteins mightbe associated with the activation ofautophagy thatis accompanied by apoptosis,suggesting thatautophagy can inhibitapoptosis atcertain concentrations ofCdCl2.

    cadmium;HEK293 cells;autophagy;apoptosis

    E-mail:maoweiping@njnu.edu.cn,Tel:(0518)80689625

    R995

    A

    1000-3002-(2016)05-0569-07

    10.3867/j.issn.1000-3002.2016.05.014

    2015-05-08接受日期:2016-05-10)

    (本文編輯:賀云霞)

    劉宣宣,女,理學(xué)碩士,助教,主要從事重金屬鎘致細(xì)胞自噬與凋亡的研究。

    毛偉平,E-mail:maoweiping@njnu.edu.cn.Tel:(0518)80689625

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