杜莉莉,呂潤瀟,楊曉漪,辛娜,馬廷賢
(1.中國醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室,沈陽 110013;2.第二軍醫(yī)大學(xué)附屬長海醫(yī)院研究生隊(duì),第二軍醫(yī)大學(xué)研究生隊(duì),上海200433;3.中國醫(yī)科大學(xué)95期臨床醫(yī)學(xué)7年制,沈陽 110013)
·論著·
胎盤間充質(zhì)干細(xì)胞低氧培養(yǎng)液對腸黏膜上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷的保護(hù)作用
杜莉莉1,呂潤瀟2,楊曉漪3,辛娜1,馬廷賢1
(1.中國醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室,沈陽 110013;2.第二軍醫(yī)大學(xué)附屬長海醫(yī)院研究生隊(duì),第二軍醫(yī)大學(xué)研究生隊(duì),上海200433;3.中國醫(yī)科大學(xué)95期臨床醫(yī)學(xué)7年制,沈陽 110013)
目的 研究胎盤間充質(zhì)干細(xì)胞(pMSCs)低氧培養(yǎng)液對腸黏膜上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷的作用。方法 組織塊培養(yǎng)法提取pMSCs,流式細(xì)胞術(shù)檢測表面標(biāo)志,ELISA檢測pMSCs常氧(21%O2)或低氧(1%O2)培養(yǎng)5 d后培養(yǎng)液中胰島素樣生長因子1(IGF-1)的含量。人結(jié)腸腺癌細(xì)胞(Caco2)經(jīng)100 μmol/L H2O2處理12 h后分別培養(yǎng)于正常培養(yǎng)液、pMSCs常氧培養(yǎng)液或pMSCs低氧培養(yǎng)液,5 d后臺盼藍(lán)染色測細(xì)胞存活情況,MTT測細(xì)胞增殖,Annexin V-FITC/PI雙染測細(xì)胞凋亡。結(jié)果 pMSCs陽性表達(dá)CD29,CD44。pMSCs低氧培養(yǎng)液中的IGF-1明顯多于pMSCs常氧培養(yǎng)液(P<0.05)。與pMSCs常氧培養(yǎng)液相比,pMSCs低氧培養(yǎng)液中H2O2處理的Caco2存活細(xì)胞多,增殖快,凋亡少(P<0.05)。向pMSCs低氧培養(yǎng)液中加入IGF-1抗體后,細(xì)胞增殖減慢,凋亡增多(P<0.05)。結(jié)論 pMSCs低氧培養(yǎng)液對H2O2處理的Caco2具有保護(hù)作用。機(jī)制與IGF-1促進(jìn)細(xì)胞增殖、抑制凋亡相關(guān)。
胎盤間充質(zhì)干細(xì)胞;低氧;氧化應(yīng)激;人結(jié)腸腺癌細(xì)胞
腸缺血/再灌注(ischemia/reperfusion,I/R)是臨床常見的病理生理過程。I/R時(shí)腸黏膜上皮細(xì)胞損傷、腸內(nèi)細(xì)菌入血引發(fā)全身炎性反應(yīng)綜合征及多系統(tǒng)器官衰竭。缺血再灌注時(shí)形成的大量氧自由基是腸黏膜上皮細(xì)胞損傷的關(guān)鍵因素。
間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenehymal stem cells,MSCs)具有自我更新及多向分化潛能[1~5]。胎盤間充質(zhì)干細(xì)胞(plaeenta derived mesenehymal stem cells,pMSCs)是近年來新發(fā)現(xiàn)的間充質(zhì)干細(xì)胞,生物學(xué)特性與骨髓MSCs相似,并可通過分泌細(xì)胞因子對許多疾病起到治療作用。低氧可促進(jìn)pMSCs分泌細(xì)胞因子。本研究擬檢測正常培養(yǎng)液(normal culture medium,NM)、pMSCs常氧培養(yǎng)液(pMSCs normoxia culture medium,pMSCs-NCM)及pMSCs低氧培養(yǎng)液(pMSCs hypoxia culture medium,pMSCs-HCM)中胰島素樣生長因子l(insulin-like growth factor l,IGF-l)的含量,利用過氧化氫(hydrogen peroxide,H2O2)處理人結(jié)腸腺癌細(xì)胞Caco2建立腸黏膜上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷模型,檢測pMSCs-HCM對該細(xì)胞模型的作用并闡明其機(jī)制。
1.1 材料
二氧化碳培養(yǎng)箱(美國Thermo Fisher公司),醫(yī)用凈化工作臺(蘇州凈化設(shè)備廠),低溫高速離心機(jī)(德國Sigma公司),胎牛血清(美國Gibco公司),DMDM培養(yǎng)基(美國Gibco公司),非必需氨基酸(美國Gibco公司),L-谷氨酰胺(美國Gibco公司),青鏈霉素(美國Gibco公司),β-巰基乙醇(美國Gibco公司),0.25%Trypsin-EDTA(美國Gibco公司),鼠抗人直標(biāo)單克隆抗體(美國BD公司),ELISA試劑盒(美國Sigma公司),IGF-1Ab(美國R&D公司),Annexin V-FITC細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(碧云天生物技術(shù)公司),Caco2細(xì)胞(上海中科院細(xì)胞庫)。
pMSCs:經(jīng)產(chǎn)婦同意并通過倫理委員會認(rèn)證后,無菌條件下取剖宮產(chǎn)的足月健康新生兒胎盤組織(來源于沈陽市和平區(qū)婦幼醫(yī)院)。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 pMSCs的提取、傳代及鑒定:無菌條件下剪取胎兒面胎盤小葉中央蛻膜側(cè)組織,10%青鏈霉素PBS反復(fù)沖洗,剪成1 mm3左右組織塊,接種于6 cm培養(yǎng)皿,放入37℃,5%CO2飽和濕度孵箱,組織塊貼壁牢固后緩慢加入10%FBS的DMEM培養(yǎng)液,放入孵箱,每5 d換液,10 d后組織塊周圍有細(xì)胞爬出。待細(xì)胞鋪滿皿底70%~80%時(shí)去除組織塊,0.25%胰蛋白酶消化細(xì)胞并傳代。取第3代pMSCs倒置顯微鏡下觀察形態(tài)特征。取第3代pMSCs,每管加入1× 106個(gè)細(xì)胞,小鼠血清5 mL,封閉15 min,分別加入鼠抗人PE標(biāo)記單克隆抗體HLA-DR,F(xiàn)ITC標(biāo)記抗體CD29,CD31,CD34,CD44,CD45各20 μL,設(shè)FITC,PE空白對照管,4℃避光反應(yīng)30 min,PBS洗3次后1 000 r/min離心10 min。棄上清,加200 μL PBS混勻細(xì)胞,流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞表型。
1.2.2 低氧培養(yǎng)對pMSCs分泌IGF-1的影響:取第3代pMSCs,消化后用10%FBS的DMEM培養(yǎng)液調(diào)整細(xì)胞濃度為5×104/mL,每孔200 μL接種于96孔板,分別放于常氧培養(yǎng)箱(21%O2)及低氧培養(yǎng)箱(1% O2),5 d后ELISA檢測各上清中IGF-1含量。
1.2.3 pMSCs-HCM對H2O2處理的Caco2的作用:用10%FBS的DMEM培養(yǎng)液制成Caco2細(xì)胞懸液,接種于12孔板(1×105/孔),每組5個(gè)復(fù)孔,常氧培養(yǎng)過夜后給予終濃度為100 μmol/L的H2O2作用12 h,此為腸黏膜上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷模型。去除含有H2O2的培養(yǎng)液,分別添加NM,pMSc-NCM及pMSCs-HCM,常氧培養(yǎng)5 d后取出細(xì)胞,臺盼藍(lán)染色計(jì)數(shù)活細(xì)胞。
1.2.4 pMSCs-HCM中IGF-1對H2O2處理的Caco2增殖的影響:Caco2用含10%FBS的DMEM培養(yǎng)液配制成5×104個(gè)/mL的細(xì)胞懸液,每孔200 μL接種于96孔板,每組5個(gè)復(fù)孔。過夜培養(yǎng)后,加入終濃度100 μmol/L的H2O2作用12 h,棄掉含H2O2的培養(yǎng)液,分別加入NM,pMSc-NCM,pMSCs-HCM及pMSCs-HCM+IGF-1Ab(0.25 μg/mL)培養(yǎng)5 d,每孔再加入5 mg/mL的MTT 20 μL,37℃孵育4 h,離心1 000 r/min 5 min,棄去培養(yǎng)液,每孔加入150 μL二甲基亞砜,振蕩10 min,充分溶解后于酶標(biāo)儀490 nm處測定各孔調(diào)零后的吸光度值(OD值)。
1.2.5 pMSCs-HCM中IGF-1對H2O2處理的Caco2凋亡的影響:用含10%FBS的DMEM培養(yǎng)液配制成5× 104個(gè)/mL Caco2細(xì)胞懸液,每孔200 μL接種于96孔板,每組5個(gè)復(fù)孔。過夜培養(yǎng)后,加入終濃度為100 μmol/L的H2O2作用12 h,棄掉含有H2O2的培養(yǎng)液,分別加入NM,pMSc-NCM,pMSCs-HCM及pMSCs-HCM+IGF-1Ab(0.25 μg/mL)培養(yǎng)5 d后,棄培養(yǎng)液,PBS洗滌,胰酶消化后細(xì)胞懸液1 000 g離心5 min,PBS重懸細(xì)胞并計(jì)數(shù)。取1.5×105重懸細(xì)胞,離心1 000 g 5 min,棄上清,加入195 μL Annexin V-FITC結(jié)合液重懸細(xì)胞。加入5 μL Annexin V-FITC混勻。加入10 μL碘化丙錠染色液混勻。室溫避光孵育15 min,冰浴,鋁箔避光。隨即進(jìn)行流式細(xì)胞儀檢測。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
利用SPSS 19.0軟件進(jìn)行單因素方差分析。所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均重復(fù)3次以上,數(shù)據(jù)用表示,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 pMSCs的提取、傳代及鑒定
胎盤組織塊接種第10天,組織塊周圍有少量細(xì)胞爬出,短梭形。隨后爬出細(xì)胞數(shù)量增多,并逐漸伸展(圖1A)。第3代pMSCs形態(tài)較一致,呈梭形,似成纖維細(xì)胞。細(xì)胞排列規(guī)則(圖1B)。利用第3代pMSCs進(jìn)行流式細(xì)胞檢測,pMSCs陽性表達(dá)CD29、CD44(圖2),而CD31、CD34、CD45、HLA-DR呈陰性。
圖1 pMSCs的提取及傳代 ×100Fig.1 Isolation and passage of pMSCs×100
圖2 流式細(xì)胞檢測pMSCs的CD29及CD44表達(dá)Fig.2 CD29 and CD44 expression of pMSCs detected by flow cytometry
2.2 低氧培養(yǎng)促進(jìn)pMSCs分泌IGF-1
圖3 低氧培養(yǎng)促進(jìn)pMSCs分泌IGF-1Fig.3 Hypoxic culture promoted the secretion of IGF-1 by pMSCs
如圖3所示,與NM相比,pMSCs-NCM及pMSCs-HCM中IGF-1含量明顯增多,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。pMSCs-HCM中的IGF-1含量明顯多于pMSCs-NCM,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
2.3 低氧培養(yǎng)增強(qiáng)pMSCs培養(yǎng)液對H2O2處理Caco2的保護(hù)作用
臺盼藍(lán)染色表明,與NM相比,NM+H2O2組中存活的Caco2數(shù)量明顯減少,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。經(jīng)H2O2處理后,pMSCs-NCM及pMSCs-HCM組中存活的Caco2數(shù)量明顯多于NM組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),而pMSCs-NCM和pMSCs-HCM 2組相比,pMSCs-HCM中有較多的細(xì)胞存活,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖4。
2.4 pMSCs-HCM中的IGF-1促進(jìn)H2O2處理的Caco2增殖
MTT結(jié)果表明,與NM相比,NM+H2O2組中Caco2增殖能力減弱,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。經(jīng)H2O2處理后,pMSCs-NCM及pMSCs-HCM組中Caco2增殖能力明顯強(qiáng)于NM組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),而pMSCs-NCM及pMSCs-HCM 2組相比,pMSCs-HCM中的Caco2增殖較快,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),pMSCs-HCM中加入IGF-1中和抗體后,Caco2的增殖能力較pMSCs-HCM+H2O2組明顯減弱,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖5。
圖4 低氧增強(qiáng)pMSCs培養(yǎng)液對H2O2處理Caco2的保護(hù)作用Fig.4 The protection effects of pMSCs on H2O2-treated Caco2 was enhanced by hypoxia
圖5 pMSCs-HCM中的IGF-1促進(jìn)H2O2處理的Caco2增殖Fig.5 The IGF-1 in pMSCs-HCM promoted the proliferation of H2O2-treated Caco2
2.5 pMSCs-HCM中的IGF-1抑制H2O2處理的Caco2凋亡
Annexin V-FITC/PI雙染結(jié)果(圖6)表明,與NM相比,NM+H2O2組Caco2凋亡增多,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。經(jīng)H2O2處理后,pMSCs-NCM及pMSCs-HCM組Caco2凋亡明顯少于NM組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),而pMSCs-NCM及pMSCs-HCM 2組相比,pMSCs-HCM組Caco2凋亡較少,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),pMSCs-HCM中加入IGF-1中和抗體后,Caco2凋亡較pMSCs-HCM+H2O2組增多,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
圖6 pMSCs-HCM中的IGF-1抑制H2O2處理的Caco2凋亡Fig.6 The IGF-1 in pMSCs-HCM inhibited the apoptosis of H2O2-treated Caco2
腸黏膜上皮細(xì)胞是腸黏膜屏障的第一道防線,可阻止腸腔內(nèi)有害物質(zhì)進(jìn)入血液。缺血再灌注可破壞腸道屏障功能,此時(shí)的腸道成為全身炎性反應(yīng)綜合征的始動(dòng)器官及多系統(tǒng)器官衰竭的發(fā)源地。如何減少I/R時(shí)腸黏膜上皮細(xì)胞的損傷是目前研究的熱點(diǎn)及難點(diǎn)。目前認(rèn)為,I/R引起的氧化應(yīng)激是腸黏膜上皮細(xì)胞損傷的主要因素之一。Caco2細(xì)胞來源于人結(jié)腸腺癌細(xì)胞,含有與小腸刷狀緣上皮相關(guān)的酶系,也可形成與小腸相似的緊密連接[6,7],正常培養(yǎng)條件下的Caco2結(jié)構(gòu)和功能類似于腸黏膜上皮細(xì)胞,是體外腸黏膜上皮細(xì)胞研究的最佳模型[8]。以往的研究[9,10]表明,H2O2能夠引起腸黏膜上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激并導(dǎo)致屏障功能破壞。因此,本研究應(yīng)用H2O2處理Caco2,在體外建立腸黏膜上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷模型。
MSCs是一種成體干細(xì)胞,其分泌的細(xì)胞因子可作用于受損器官,促進(jìn)組織修復(fù),因此MSCs對許多疾病有一定的治療作用。研究[11]證實(shí),低氧培養(yǎng)可影響MSCs的生物學(xué)特性。低氧時(shí)MSCs分泌VEGF、HGF、bFGF、SCF、SDF-1、G-CSF增多,對許多疾病的治療作用也增強(qiáng)。pMSCs具有干細(xì)胞的生物學(xué)特性,且提取不涉及倫理道德問題,因此,pMSCs已經(jīng)引起研究者的普遍關(guān)注。本研究發(fā)現(xiàn)低氧對pMSCs分泌細(xì)胞因子也有促進(jìn)作用,低氧培養(yǎng)后,pMSCs分泌的IGF-1明顯增多。
IGF-1又名生長介素,是胰島素樣生長因子系統(tǒng)的重要成員。其空間結(jié)構(gòu)與胰島素相似,與受體結(jié)合后可產(chǎn)生胰島素樣作用。IGF-1與機(jī)體組織增殖、分化和成熟密切相關(guān)。IGF-1可與小腸隱窩上皮細(xì)胞的IGF-1受體結(jié)合,通過促進(jìn)細(xì)胞增殖、分化及DNA合成而促進(jìn)小腸生長[12,13]。IGF-1還可抑制腸黏膜細(xì)胞凋亡[14]。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明,IGF-1能降低損傷時(shí)小鼠腸黏膜的通透性,增強(qiáng)腸上皮細(xì)胞的屏障功能[15]。
MSCs對腸道保護(hù)作用的相關(guān)研究[16,17]已取得了一定的進(jìn)展:MSCs促進(jìn)放射性腸損傷小鼠腸上皮的修復(fù)、降低I/R后大鼠小腸的通透性、減輕小腸絨毛的損傷。前期實(shí)驗(yàn)表明,小鼠腸道I/R后,尾靜脈輸入低氧培養(yǎng)的pMSCs可減輕腸道損傷。pMSCs輸入12 h即可檢測出損傷減輕,而12 h內(nèi)pMSCs很難完成向腸黏膜上皮細(xì)胞的分化。因此推測此時(shí)pMSCs的保護(hù)作用并不是通過分化為腸黏膜上皮細(xì)胞完成的,更多的與其旁分泌作用相關(guān)。本研究的體外實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,與pMSCs-NCM相比,pMSCs-HCM對H2O2處理的Caco2有更強(qiáng)的保護(hù)作用。低氧時(shí)pMSCs分泌增多的IGF-1是其保護(hù)作用增強(qiáng)的因素之一,IGF-1可促進(jìn)H2O2處理的Caco2增殖,抑制其凋亡。本研究只在體外實(shí)驗(yàn)中初步探索了pMSCs-HCM對氧化應(yīng)激損傷腸黏膜上皮細(xì)胞的保護(hù)作用,以后將利用體內(nèi)實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步完善本研究。
找到有效的方法減輕氧化應(yīng)激導(dǎo)致的腸黏膜上皮細(xì)胞損傷,對防治腸缺血再灌注損傷一系列疾病具有十分重要的意義。本研究結(jié)果證實(shí)缺氧促進(jìn)pMSCs分泌IGF-1,IGF-1可促進(jìn)H2O2處理的Caco2增殖,抑制凋亡。因此,pMSCs-HCM對氧化應(yīng)激損傷的腸黏膜上皮細(xì)胞具有更強(qiáng)的保護(hù)作用。本研究為臨床應(yīng)用pMSCs防治腸缺血再灌注損傷提供了一定的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
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(編輯 于 溪)
Protection EffectofPlacenta MesenchymalStem Cells Hypoxia Culture Medium on Oxidative Stress-induced Injury of IntestinalMucosalEpithelialCells
DULi-li1,LüRun-xiao2,YANGXiao-yi3,XINNa1,MA Ting-xian1
(1.Department of Pathophysiology,College of Basic Medical Science,China Medical University,Shenyang 110013,China;2.Unit of Graduate Students,Affiliated Changhai Hospital of Second Military Medical University,Unit of Graduate Students,Second Military Medical University,Shanghai 200433,China;3.The 95th SevenyearSystem,ClinicalMedicine,China MedicalUniversity,Shenyang 110013,China)
Objective To study the effect of placenta mesenchymal stem cells(pMSCs)hypoxia culture medium on the oxidative stress-induced injury of intestinal mucosal epithelial cells.Methods pMSCs were extracted by tissue culture method and identified by flow cytometry.The IGF-1 content in the culture medium of pMSCs cultured under both normal oxygen(21%O2)and hypoxia(1%O2)were detected by ELISA.Caco2 were treated with H2O2(100 μmol/L)for 12 h and then cultured in normal culture medium(NM),pMSCs normoxia culture medium(pMSCs-NCM)or pMSCs hypoxia culture medium(pMSCs-HCM)for5 d respectively.Cellsurvivalwas detected by trypan blue staining,cellproliferation was detected with MTT and cell apoptosis was detected with Annexin V-FITC/PI.Results pMSCs positively expressed CD29 and CD44.IGF-1 in pMSCs-HCM was significantly more than that in pMSCs-NCM(P<0.05).Compared with pMSCs-NCM,H2O2-treated Caco2 in pMSCs-HCM contained more living cells.Theirproliferation was fasterand apoptosis was slower(P<0.05).Afterthe addition ofIGF-1 antibody to pMSCs-HCM,the proliferation of H2O2-treated Caco2 decreased and the apoptosis increased(P<0.05).Conclusion pMSCs-HCM had a protective effect on H2O2-treated Caco2,and the mechanism may be related to the IGF-1 mediated cellproliferation and cellapoptosisinhibition.
placenta mesenchymal stem cells;hypoxia;oxidative stress;human colon adenocarcinoma cells
R574.5
A
0258-4646(2016)02-0131-05
10.12007/j.issn.0258-4646.2016.02.008
遼寧省科學(xué)技術(shù)廳2015年博士科研啟動(dòng)基金計(jì)劃(201501003)
杜莉莉(1979-),女,講師,博士.
E-mail:lilidu123456@126.com
2015-05-28
網(wǎng)絡(luò)出版時(shí)間: