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    HPLC法同時測定猴頭菇提取物中3種核苷

    2016-09-25 00:59:19汪楊麗陳曉虎王慧蘇晶
    中國現(xiàn)代中藥 2016年10期
    關(guān)鍵詞:鳥苷猴頭菇腺苷

    汪楊麗,陳曉虎,王慧,蘇晶

    (重慶市食品藥品檢驗檢測研究院 重慶市藥物過程與質(zhì)量控制工程技術(shù)研究中心,重慶 401121)

    ·中藥工業(yè)·

    HPLC法同時測定猴頭菇提取物中3種核苷

    汪楊麗*,陳曉虎,王慧,蘇晶

    (重慶市食品藥品檢驗檢測研究院 重慶市藥物過程與質(zhì)量控制工程技術(shù)研究中心,重慶 401121)

    目的:建立高效液相色譜法同時測定猴頭菇提取物中尿苷、鳥苷和腺苷的含量。方法:采用Welch Ultimate AQ C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱,流動相為乙腈- 0.05 mol·L-1磷酸二氫鉀溶液,梯度洗脫;檢測波長為260 nm。結(jié)果:尿苷、鳥苷、腺苷的線性范圍分別為0.034 43~0.688 6 μg(r=1)、0.022 26~0.445 1 μg(r=1 )、0.026 93~0.538 6 μg(r=0.999 9),尿苷、鳥苷、腺苷的平均回收率(n=6)分別為97.6%(RSD=2.0%)、96.3%(RSD=1.0%)、96.3%(RSD=0.8%)。結(jié)論:該方法簡便、準確、可行,可為猴頭菇提取物的生產(chǎn)和使用提供質(zhì)量評價依據(jù)。

    猴頭菇提取物;核苷;高效液相色譜法

    猴頭菇為齒菌科猴頭菌Hericumerinaceus(Bull.)Pers.的子實體[1],為藥食兩用的真菌,入藥能助消化、利五臟、促進腸胃功能,并能提高人體的免疫力[2]。猴頭菇含有多糖、核苷化合物、氨基酸等成分。有關(guān)猴頭菇多糖[1,3-4]的提取及含量測定的研究較多,戚雁飛[5]僅對猴頭菇中腺苷進行確認和含量測定。猴頭菇提取物是猴頭菇子實體的水浸提液以10∶1的比例干燥濃縮干燥而得。本試驗參考相關(guān)文獻,采用高效液相色譜法,應(yīng)用梯度洗脫測定猴頭菇提取物中的尿苷、鳥苷、腺苷的含量。結(jié)果表明,該方法簡便、準確、重復(fù)性好,可作為猴頭菇提取物的質(zhì)量控制方法之一,為猴頭菇保健品和藥品的進一步開發(fā)利用提供質(zhì)量評價依據(jù)。

    1 儀器與試藥

    1.1 儀器

    Waters 2695-2489高效液相色譜儀系統(tǒng);Bp221s 型電子天平(賽多利斯科學儀器有限公司);Ax205電子天平(梅特勒公司);KQ-500DB數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);3-30KS離心機(德國Sigma公司)。

    1.2 試藥

    尿苷對照品、鳥苷對照品(SIGMA公司,批號分別為1181124,101474373);腺苷對照品(中國食品藥品檢定研究院,批號為110879-200202);猴頭菇提取物(紐西蘭安發(fā)保健品有限公司);乙腈、甲醇為色譜純;水為超純水。

    2 方法和結(jié)果

    2.1 色譜條件

    Welch Ultimate AQ C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)為色譜柱;乙腈為流動相A,0.05 mol·L-1磷酸二氫鉀溶液為流動相B,梯度洗脫,見表1;檢測波長為260 nm;體積流量為1.0 mL·min-1;柱溫為40 ℃;進樣量為10 μL。

    表1 梯度洗脫色譜條件

    2.2 對照品溶液的制備

    分別精密稱取尿苷、鳥苷、腺苷對照品適量,加水溶解,制成尿苷對照品儲備液(質(zhì)量濃度為0.430 4 mg·mL-1)、鳥苷對照品儲備液(質(zhì)量濃度為0.556 4 mg·mL-1)和腺苷對照品儲備液(質(zhì)量濃度為0.336 6 mg·mL-1)。精密量取鳥苷對照品儲備液1 mL,尿苷和腺苷對照品儲備液各2 mL,同置25 mL容量瓶中,加水定容,搖勻,即得混合對照品溶液,冷藏保存。

    2.3 供試品溶液的制備

    取猴頭菇提取物適量,研細,混勻,取約0.6 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,精密加入70%甲醇25 mL,稱定重量,超聲處理30 min(功率:450 W,頻率:50 Khz),放冷,再稱定重量,用70%甲醇補足減失的重量,離心10 min(7000 r·min-1),取上清液10 mL,蒸干,殘渣加水溶解,轉(zhuǎn)移至25 mL量瓶中,并用水稀釋至刻度,搖勻,用0.45 μm的微孔濾膜過濾,取續(xù)濾液,即得。

    2.4 專屬性試驗

    分別精密吸取對照品、供試品溶液及水各10 μL,按上述色譜條件進行測定。結(jié)果供試品色譜中,在與尿苷、鳥苷、腺苷對照品相同的保留時間處均有吸收峰,而水液在此保留時間無干擾,見圖1。

    注:A.混合對照品;B.供試品;C.陰性樣品;1.尿苷;2.鳥苷;3.腺苷。圖1 尿苷、鳥苷、腺苷的高效液相色譜圖

    2.5 線性關(guān)系考察

    取2.2項下的混合對照品溶液,按上述色譜條件,分別進樣1、5、10、15、20 μL測定。以進樣質(zhì)量為橫坐標,以峰面積為縱坐標,繪制標準曲線,得尿苷、鳥苷、腺苷回歸方程分別為Y=2×106X-5 650.1(r=1)、Y=2×106X-7 488.5(r=1)、Y=3×106X-10 816(r=0.999 9)。結(jié)果表明,尿苷、鳥苷、腺苷分別在0.034 43~0.688 6、0.022 26~0.445 1、0.026 93~0.538 6 μg線性關(guān)系良好。

    2.6 精密度試驗

    取2.2項下的尿苷、鳥苷、腺苷混合對照品溶液,連續(xù)進樣5次,每次10 μL,測定峰面積,結(jié)果尿苷、鳥苷、腺苷峰面積的RSD分別為0.04%、1.0%、0.06%,表明精密度良好。

    2.7 穩(wěn)定性考察

    取同一批號樣品,按2.2項下方法制備供試品溶液,分別在0、2、4、6、8、12 h進樣10 μL,測定峰面積,計算尿苷、鳥苷、腺苷的峰面積RSD分別為0.08%、1.7%、1.5 %,表明供試品溶液至少在12 h內(nèi)穩(wěn)定。

    2.8 重復(fù)性考察

    取同一批號樣品,按2.2項方法分別制備6份供試品溶液,分別測定尿苷、鳥苷、腺苷的含量,6次重復(fù)測定結(jié)果的RSD分別為0.76%、0.98%、1.7%。

    2.9 加樣回收率試驗

    分別精密量取尿苷對照品溶液(0.326 4 mg·mL-1)2.3 mL、鳥苷對照品溶液(0.476 4 mg·mL-1)1.0 mL、腺苷對照品溶液(0.336 6 mg·mL-1)1.7 mL,置錐形瓶中(平行6份),置水浴上蒸干,加入已知含量的樣品(尿苷質(zhì)量分數(shù)為2.8 mg·g-1、鳥苷質(zhì)量分數(shù)為1.6 mg·g-1、腺苷質(zhì)量分數(shù)為2.0 mg·g-1)約0.3 g,精密稱定,按2.2項下方法制備供試品溶液,并按2.1項下色譜條件進行測定,計算加樣回收率,結(jié)果見表2。

    表2 尿苷、鳥苷、腺苷的加樣回收率試驗結(jié)果(n=6)

    2.10 樣品的測定

    取3批猴頭菇提取物,按2.2項下方法制備供試品溶液,按2.1項下色譜條件進行測定,用外標法計算,結(jié)果見表3。

    表3 樣品測定結(jié)果(n=3) /mg·g-1

    3 討論

    3.1 提取方法的選擇

    試驗中選用了體積分數(shù)為20%、50%、70%甲醇作為提取溶劑,進行超聲提取,結(jié)果表明,70%甲醇提取的樣品充分,雜質(zhì)少。比較超聲20、30、40 min樣品中各組分的提取率,發(fā)現(xiàn)30 min提取效率高。核苷類成分水溶性較好,若采用甲醇-水混合溶液溶解樣品,易造成色譜峰分叉,故選用70%提取液蒸干后用水溶解。

    3.2 流動相的選擇

    參考相關(guān)文獻[6-8],分別采用甲醇-水、甲醇-磷酸緩沖鹽(pH=6.5)、乙腈-0.05 mol·L-1磷酸二氫鉀等作為流動相體系,梯度洗脫。結(jié)果表明,本試驗使用的流動相體系能使供試品色譜圖基線平穩(wěn),色譜峰分離度好、峰形尖銳、對稱性好、保留時間適宜,且方法的重復(fù)性好。

    3.3 供試品溶液終濃度的選擇

    3批樣品的三苷含量較高,考慮到藥材質(zhì)量的波動可能使供試品溶液進樣量超出線性范圍,因此供試品提取后最終用水溶解并定容至25 mL,其較定容至10 mL更合理。不同批次猴頭菇提取物之間尿苷、鳥苷、腺苷的含量較穩(wěn)定,表明三苷可以作為一個穩(wěn)定的控制因子,為猴頭菇提取物提供質(zhì)量分析指標。

    [1] 賈聯(lián)盟,劉柳,董群,等.猴頭菇子實體中的主要多糖成分[J].中草藥,2005,36(1):10-12.

    [2] 杜鵑,王琰.猴頭菇種7種金屬元素含量分析[J].微量元素與健康研究,2010,27(1):46-47.

    [3] 猴梁華,李雪華,陸亞春.猴頭菇多糖提取工藝研究[J].食品與機械,2006,22(1):35-38.

    [4] 張帥,沈楚燕,董基.酶法提取猴頭菇多糖的研究[J].河南工業(yè)大學學報(自然科學版),2010,31(2):76-79.

    [5] 戚雁飛.HPLC測定復(fù)方猴頭膠囊中腺苷的含量[J].中成藥,2002,24(3):181-183.

    [6] 孫忠華,肖建輝,遲強,等.高效液相色譜法測定三種蟲草發(fā)酵液與菌絲體核苷化合物含量[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2014,26(12):2000-2003.

    [7] 顏棟林.HPLC法測定冬草夏草膠囊中腺苷含量[J].藥學實踐雜志,2010,28(4):293-294.

    [8] 武彥舒,周丹蕾,鄢丹.天然蟲草與蟲草菌絲體的HPLC指紋圖譜研究[J].中國中藥雜志,2008,33(19):2212-2214.

    SimultaneousDeterminationofThreeNucleosidesinHericumerinaceusExtractbyHPLC

    WANG Yangli*,CHEN Xiaohu,WANG Hui,SU Jing

    (ChongqingInstituteforFoodandDrugControl,ChongqingEngineeringTechnologyResearchCenterforPharmaceuticalProcessandQualityControl,Chongqing401121,China)

    Objective:To establish an HPLC method to simultaneously determine the contents of uridine,guanosine and adenosine inHericumerinaceusextract.Methods:Welch Ultimate AQ-C18(250 mm×4.6 mm,5μm) was used for determination.Acetonitrile-0.05 mol·L-1potassium dihydrogen phosphate solution was used as the mobile phase in a gradient elution mode,and the detection wavelength was 260 nm.Results:The linearity ranges obtained from calibration curves of uridine,guanosine and adenosine were 0.034 43~0.688 6 μg (r=1),0.022 26 ~ 0.445 1 μg (r=1),0.026 93~0.538 6 μg (r=0.999 9),respectively.The average recoveries (n=6) were 97.6%(RSD=2.0%),96.3%(RSD=1.0%),96.3%(RSD=0.8%),respectively.Conclusion:The method is simple,accurate and validated,which can be used for the quality evaluation ofH.erinaceusextract.

    Hericumerinaceusextract;nucleoside;HPLC

    10.13313/j.issn.1673-4890.2016.10.022

    2015-12-04)

    *

    汪楊麗,主管中藥師,研究方向:中藥分析;E-mail:wangyangli81@163.com

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