王 棟, 王 旭(綜述), 陳 卓(審校)
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聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)技術(shù)在食品微生物檢測中的應(yīng)用進展
王棟1,2, 王旭1,2(綜述), 陳卓2,3(審校)
聚合酶鏈反應(yīng); 微生物學(xué)技術(shù); 食品
隨著人們生活水平的不斷提高以及世界食品開發(fā)、生產(chǎn)、銷售的迅速發(fā)展,研究和建立食品微生物快速檢測方法,以加強對食品衛(wèi)生安全的監(jiān)測越來越受到各國科學(xué)家們的重視。近日,國家質(zhì)檢總局發(fā)布的《2015年上半年中國進口食品質(zhì)量安全狀況》中顯示:2015年上半年,我國從57個國家或地區(qū)的進口食品中退運或銷毀不合格進口食品共計4 960噸。調(diào)查發(fā)現(xiàn),微生物污染是進口食品不合格的主要原因之一。如何快速、準(zhǔn)確地檢測食品病原微生物含量是保障食品安全的關(guān)鍵,也對促進食品行業(yè)健康發(fā)展具有深遠(yuǎn)意義。
目前對食源性致病菌檢測主要采用傳統(tǒng)方法,包括培養(yǎng)法、血清學(xué)分析法等,這些檢測方法存在步驟繁瑣、費時費力、特異性差和不易分辨結(jié)果等缺點。近年來,隨著微生物學(xué)、生物化學(xué)和分子生物化學(xué)、微生物快速檢測和自動化研究的迅速發(fā)展,對微生物的鑒定已不再局限于對它的外部形態(tài)結(jié)構(gòu)及生理特性等一般檢驗上,而在分子生物學(xué)水平基礎(chǔ)上建立的眾多檢測技術(shù)中,除了核酸探針及基因芯片技術(shù)外,聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction, PCR)技術(shù)以其具有特異強、靈敏度高、操作簡便、成本低等優(yōu)點,越來越多地被用于食品微生物的檢測[1-2]。筆者就近年來利用PCR技術(shù)在食品微生物檢測方面的研究進行簡要綜述。
PCR技術(shù)是一種在體外快速擴增特定基因或DNA 序列的方法,故又稱為基因的體外擴增法。Khorana等在1971年提出,在體外經(jīng)DNA變性,與適當(dāng)引物雜交,再利用DNA聚合酶延伸、克隆DNA的設(shè)想。1983年,美國科學(xué)家Mullis發(fā)明了PCR技術(shù),使Khorana的設(shè)想得到實現(xiàn)[3]。1988年,Saiki等將耐熱DNA聚合酶引入了PCR技術(shù)。1989年,《Science》雜志將PCR技術(shù)列為十余項重大科學(xué)發(fā)明之首,并將1989年喻為PCR爆炸年,而Mullis也因此榮獲1993年諾貝爾化學(xué)獎。PCR技術(shù)的原理是:在微量離心管中,加入適量緩沖液、微量的模板DNA、4種脫氧核苷酸、1對合成DNA的引物、耐熱DNA聚合酶,通過高溫變性、低溫退火和中溫延伸3個階段為1個循環(huán),每次循環(huán)使特異區(qū)段的基因拷貝數(shù)放大1倍。一般樣品經(jīng)過30次循環(huán),最終使特異區(qū)段的DNA片段得以擴增數(shù)百萬倍。最早利用PCR技術(shù)擴增出的DNA序列是人的β-球蛋白基因,并于1987年6月首次進入臨床應(yīng)用。但是,PCR技術(shù)作為一個單純的實驗技術(shù),其反應(yīng)及其產(chǎn)物受到很多因素影響,隨著有關(guān)DNA提取、引物設(shè)計、反應(yīng)溫度、擴增產(chǎn)物的分析技術(shù)等研究成果逐漸增多,國內(nèi)外許多學(xué)者根據(jù)不同需要,對常規(guī)PCR技術(shù)進行了改進,開發(fā)出許多新類型的PCR技術(shù),使之成為一個較為完善的技術(shù)體系。
PCR技術(shù)在食品微生物檢測方面研究的重點在于及時、準(zhǔn)確地檢測出食品中的病原微生物含量,尤其是近年來引起人們廣泛關(guān)注的導(dǎo)致食品污染的主要病原菌。利用PCR技術(shù)對已知和未知被沙門氏菌污染的豬肉的培養(yǎng)物均能準(zhǔn)確檢測,具有特異性高且靈敏、快速等特點。利用該技術(shù)建立快速檢測單核細(xì)胞增生性李斯特氏菌(LM)方法,并檢測模擬污染生豬肉、水和牛奶,其檢測限可達10 CFU/25 g(mL)。近年來,隨著PCR技術(shù)的改進以及與其他技術(shù)的結(jié)合,衍生的新技術(shù)也為實驗設(shè)計提供了新的選擇。這些衍生的新技術(shù)除具有PCR技術(shù)的共性以外,均有各自的優(yōu)缺點及試用的PCR方式(表1)。
1.1多重PCR技術(shù)該技術(shù)的原理與常規(guī)PCR相同,不同之處在于多重PCR技術(shù)在同一反應(yīng)體系中加入了2對以上的特異性寡核苷酸引物,可以同時擴增多個目的基因或DNA序列。因此,多重PCR技術(shù)可用于同時檢測或鑒定多種病原微生物。2010年,?adlrcl等利用免疫磁分離技術(shù)和多重PCR技術(shù)相結(jié)合的方法,開展了對碎牛肉和生肉丸中大腸桿菌O157∶H7流行因子的檢測[4]。同年,Camila等也報道了利用多重PCR技術(shù)可特異性擴增沙門氏菌屬特異性基因ompC、腸炎沙門氏菌SdfI基因、傷寒沙門氏菌ViaB基因以及鼠傷寒沙門氏菌Spy基因的目的片段[5]。利用該技術(shù)對沙門氏菌的檢出率明顯高于常規(guī)的微生物培養(yǎng)法,并成功檢測巴西境內(nèi)冷凍家禽肉的沙門氏菌污染情況及其常見血清型的流行情況。
表1 不同PCR技術(shù)在食品微生物檢測中的應(yīng)用
然而,多重PCR技術(shù)存在擴增效率不高、擴增條件需要摸索及兼顧協(xié)調(diào)等不足之處,易出現(xiàn)多對引物間相互干擾以及交叉抑制等現(xiàn)象。其中,擴增敏感性偏低是其在微生物檢測應(yīng)用中受限制的關(guān)鍵因素。美國貝克曼庫爾特公司為此將該技術(shù)與毛細(xì)管電泳技術(shù)結(jié)合,推出了用于同時檢測多種微生物的GenomeLabTMGeXP多功能遺傳分析系統(tǒng)(簡稱GeXP)[6]。
1.2qPCR技術(shù)該技術(shù)是指在PCR反應(yīng)體系中加入熒光基團,利用熒光信號的積累,進行實時監(jiān)測整個PCR進程[7],最后通過標(biāo)準(zhǔn)曲線對未知模板進行定量分析。它不僅實現(xiàn)了PCR從定性到定量的飛躍,而且具有特異性強、自動化程度高等特點[8]。
qPCR技術(shù)中涉及到的熒光有2種:一種是熒光探針,如TaqMan熒光探針;另外一種是熒光染料,如SYBR熒光染料。曹東林等通過探針qPCR技術(shù)對血清型肺炎鏈球菌進行檢測,發(fā)現(xiàn)qPCR技術(shù)不僅增強檢測的特異性,而且提高了檢測的靈敏度[9]。沈飚等比較了TaqMan探針qPCR、RT-PCR和常規(guī)PCR 3種方法在檢測白斑綜合征病毒、傳染性皮下及造血組織壞死病毒、桃拉綜合征病毒及黃頭病毒4種對蝦病毒的不同,發(fā)現(xiàn)利用TaqMan探針進行實時qPCR的檢測,靈敏度可提高10~100倍[10]。然而,定量PCR技術(shù)檢測核酸分子往往依賴于基于標(biāo)準(zhǔn)品的標(biāo)準(zhǔn)曲線,并且定量檢測的準(zhǔn)確與否,很大程度上依賴于標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的準(zhǔn)確定標(biāo)[11]。
1.3巢式PCR技術(shù)該技術(shù)是隨著系統(tǒng)發(fā)生學(xué)與基因組學(xué)的發(fā)展而出現(xiàn)的一種變異的PCR。該技術(shù)使用2對PCR引物擴增完整的片段,第1對PCR引物擴增片段和普通PCR相似;第2對引物是在第1次PCR擴增片段的基礎(chǔ)上設(shè)計的,稱為巢式引物。巢式PCR首先通過外引物對樣品DNA進行擴增,得到大量擴增產(chǎn)物后,再由內(nèi)引物進行擴增。這種巢式PCR技術(shù)可得到大量的特異性目標(biāo)序列,顯著增加了檢測的靈敏度[12]。如在運用巢式PCR技術(shù)聯(lián)合焦磷酸測序法檢測乙型肝炎病毒的耐藥基因中,發(fā)現(xiàn)巢式PCR在低拷貝數(shù)條件下較常規(guī)PCR更具敏感性,盡管其對最低基因拷貝數(shù)有一定要求。此外,巢式PCR技術(shù)還可防止反應(yīng)結(jié)束時的非特異性擴增[13]。
1.4PCR-SSCP技術(shù)該技術(shù)是利用DNA單鏈構(gòu)象具有多態(tài)性、在非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳中的遷移速率不同,通過顯色或顯影可以檢驗出小至單個堿基的差異。該技術(shù)快速、廉價、簡便、精確,適用于對大樣本基因突變的篩選。目前,PCR-SSCP技術(shù)在致病微生物的快速檢測、種屬鑒定、微生物分型和微生物群落組成及多態(tài)性分析等工作中發(fā)揮著越來越重要的作用。據(jù)報道,胡秀彩等運用傳統(tǒng)的形態(tài)學(xué)觀察和生理生化特征實驗,鑒別了從草魚腸道中分離的屬于同一分支類群的3株細(xì)菌,通過PCR-SSCP分析,發(fā)現(xiàn)它們的16S rDNA V3區(qū)帶型明顯不同,具有基因的多態(tài)性[14]。研究表明,PCR-SSCP技術(shù)具有很好的菌株鑒別效果,在微生物病原菌診斷中具有良好的應(yīng)用前景。
1.5ddPCR技術(shù)該技術(shù)的出現(xiàn)使病原微生物的分子檢測技術(shù)獲得巨大的飛躍,該技術(shù)通過在傳統(tǒng)的PCR擴增前對樣品進行微滴化處理,即將含有核酸分子的反應(yīng)體系分成成千上萬個納升級的微滴,每個微滴都相當(dāng)于一個獨立的反應(yīng)室。在每個微滴中,可以單獨完成核酸的擴增,然后通過微滴分析系統(tǒng)逐個對微滴進行檢測,最終根據(jù)陽性微滴的比例以及泊松分布原理,可計算出待測DNA分子的濃度或拷貝數(shù)[15]。
繼2013年歐洲馬肉風(fēng)波之后,公眾對于食品具體成分及含量愈發(fā)關(guān)注。德國科學(xué)家Floren采用ddPCR方法檢測肉類制品成分,結(jié)果顯示:ddPCR技術(shù)對不同肉類制品成分進行的定量分析中,檢測限和定量限可分別達0.01%和0.001%水平,優(yōu)于qPCR的表現(xiàn)[16]。Michael在運用ddPCR對葡萄金黃病致病菌類菌原體進行檢測中,通過對葡萄藤的3種不同組織進行實測,發(fā)現(xiàn)qPCR與ddPCR的檢測靈敏度都能達到10-5的水平,但ddPCR具有更好的重復(fù)性[17]。相對于qPCR,ddPCR這種本質(zhì)上基于單分子計數(shù)的核酸定量方法,可實現(xiàn)對病原微生物特定核酸分子的絕對定量,從而徹底擺脫qPCR對于標(biāo)準(zhǔn)曲線的依賴,在檢測結(jié)果的靈敏度、重復(fù)性等方面有更好的表現(xiàn),并且抑制劑對ddPCR的影響也較小[18]。ddPCR有望取代qPCR作為未來定量檢測的發(fā)展方向[19]。
用傳統(tǒng)的方法檢測食品中的微生物需要分離出所有的微生物,而食品中污染微生物的種類繁多,即使是同一種食品中微生物的種類也相當(dāng)多,毋庸置疑,快速、準(zhǔn)確和靈敏的PCR技術(shù),尤其是通過對傳統(tǒng)PCR技術(shù)的改進以及與其他分子生物學(xué)技術(shù)的聯(lián)合使用[20-21],在對環(huán)境、食品中微生物(尤其針對病原性微生物)的檢測中已成為一種重要科學(xué)手段。此外,一般的腐敗菌檢測需要2~5 d,甚至7 d以上,待檢驗結(jié)果出來時通常產(chǎn)品已經(jīng)流向市場,對實際生產(chǎn)具有嚴(yán)重的滯后性。相比之下,PCR技術(shù)檢測食品微生物可以在1 d內(nèi),甚至在幾個小時內(nèi)就可以得到檢測結(jié)果,對食品工業(yè)生產(chǎn)具有很好的指導(dǎo)作用。
同時,我們應(yīng)該看到,PCR技術(shù)應(yīng)用于食品微生物檢測中存在的一些問題,包括由于食品成分復(fù)雜,如果不能有效排除各因素的干擾(如蛋白質(zhì)等PCR抑制劑對PCR反應(yīng)造成污染)可能出現(xiàn)假陰性;PCR技術(shù)無法區(qū)分微生物細(xì)胞是死細(xì)胞還是活細(xì)胞;PCR反應(yīng)靈敏度高,操作時要求嚴(yán)格,稍不注意有外界DNA介入就會造成假陰性等。此外,對于特定的PCR系統(tǒng),不同實驗室的標(biāo)準(zhǔn)不盡相同,PCR技術(shù)的“標(biāo)準(zhǔn)化”任務(wù)依然任重道遠(yuǎn)。近年來,隨著新興的分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,出現(xiàn)了一些用于微生物分析的PCR檢測商品試劑盒。筆者相信,隨著分子生物學(xué)技術(shù)的不斷發(fā)展,PCR技術(shù)在微生物檢測上的應(yīng)用將朝著簡便、高效、特異性強的方向發(fā)展。以PCR技術(shù)為基礎(chǔ),并結(jié)合傳統(tǒng)的微生物培養(yǎng)鑒定技術(shù),勢必在微生物檢測中擁有廣闊的發(fā)展空間。
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(編輯:常志衛(wèi))
2015-10-26
國家自然科學(xué)基金面上項目(81171634);福建省自然科學(xué)基金(2013J01387)
1.福建師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,福州350117;2.中國科學(xué)院 福建物質(zhì)結(jié)構(gòu)研究所,福州350002;3.中國科學(xué)院大學(xué),北京100049
R155.5; R446.5; R446.9; R595.7
A
1672-4194(2016)03-0213-04