熊美麗,李勇文,李麗,楊成芳,鐘毓娟(桂林醫(yī)學院,廣西桂林541000)
·論著·
甲基阿魏酸對TGF-β1刺激人肝星狀細胞增殖及活化的抑制作用
熊美麗,李勇文,李麗,楊成芳,鐘毓娟
(桂林醫(yī)學院,廣西桂林541000)
目的 探討甲基阿魏酸(MFA)對轉(zhuǎn)化生長因子(TGF)-β1刺激人肝星狀細胞(HSC)-LX-2增殖及活化的抑制作用。方法 將體外培養(yǎng)的HSC-LX-2細胞作為正常對照組,采用1 μg/L TGF-β1刺激HSC-LX-2進行細胞造模為模型組,藥物組含終質(zhì)量濃度為1 μg/L的TGF-β1和0.312 5、0.625、1.25、2.5、5、10、20、40 mg/L的MFA。根據(jù)MTT法檢測MFA對藥物組HSC-LX-2細胞增殖的影響,選擇MFA作用濃度為1.25、2.5、5 mg/L作為低、中、高劑量組,將細胞孵育72 h后,采用RT-PCR法檢測各組α-平滑肌肌動蛋白(α-SMA)mRNA、Ⅰ型前膠原(PCⅠ)mRNA表達;采用Western blotting法檢測各組α-SMA蛋白表達;采用ELISA法檢測各組PCⅠ蛋白表達。結(jié)果 在0.312 5~5 mg/L質(zhì)量濃度范圍內(nèi),隨著MFA質(zhì)量濃度升高,HSC-LX-2細胞生長抑制率逐漸升高,呈濃度依賴性(P均<0.05);當MFA質(zhì)量濃度大于10 mg/L時,HSC-LX-2生長抑制率逐漸降低(P均<0.05)。在1.25~5.0 mg/L范圍內(nèi)隨MFA質(zhì)量濃度逐漸增高,HSC-LX-2細胞中α-SMA及PCⅠ的mRNA及蛋白表達量逐漸降低(P均<0.05)。結(jié)論 MFA可抑制TGF-β1刺激的人肝星狀細胞-LX-2增殖,減弱α-SMA、PCⅠ表達,抑制HSC-LX-2細胞外基質(zhì)的合成及HSC-LX-2表型的轉(zhuǎn)化。
肝纖維化;人肝星狀細胞;甲基阿魏酸;轉(zhuǎn)化生長因子β1;細胞增殖;α-平滑肌肌動蛋白;Ⅰ型前膠原
肝星狀細胞(HSC)-LX-2是肝纖維化形成過程中的重要細胞來源[1],當外界刺激因子導致肝臟發(fā)生損傷時,HSC-LX-2被激活轉(zhuǎn)變?yōu)榧〕衫w維細胞并表達大量的α-平滑肌肌動蛋白(α-SMA),最終導致肝纖維化的形成[2]。目前普遍認為α-SMA是HSC-LX-2活化的重要標志。Ⅰ型前膠原(PCⅠ)是肝纖維化形成時細胞外基質(zhì)(ECM)的主要成分,可用于判斷肝纖維化的嚴重程度及抗肝纖維化治療的效果[3]。轉(zhuǎn)化生長因子(TGF)-β1是肌纖維母細胞激活因子,其中TGF-β1具有強大的促纖維化作用[4]。在纖維化過程中,TGF-β與細胞分化和細胞外基質(zhì)沉積密切相關(guān),其能增加多種ECM合成,減少基質(zhì)降解酶產(chǎn)生并促進酶活性抑制物的合成,還能調(diào)節(jié)整合素的表達。TGF-β信號通路有兩條,即Smad依賴性通路和p38/MAPK信號通路,其通過TGF-β1/Smad信號傳導通路調(diào)節(jié)ECM表達[5,6],導致肝纖維化的發(fā)生。甲基阿魏酸(MFA)是從蟬翼藤中提取的單體,蟬翼藤具有較強的抗菌消炎、抗癌、免疫增強等多種活性[7]。前期研究發(fā)現(xiàn),MFA對鼠肝星狀細胞(HSC-T6)增殖及膠原合成具有明顯抑制作用[8,9]。2015年1月~2016年3月,我們采用MFA對人HSC-LX-2的活化標志物α-SMA及PCⅠ進行干預(yù),探討MFA對TGF-β1刺激HSC-LX-2增殖及活化的抑制作用。
1.1 材料 人源性肝星狀細胞株HSC-LX-2購于博慧斯(無錫)生物醫(yī)藥科技有限公司。MFA(美國Sigma公司,批號101236152);TGF-β1(Novoprotein公司,批號PO1137);MTT(美國Sigma公司,批號M2128);普通ECL Plus發(fā)光液(泛博生化,北京);RNApure高純總RNA快速提取試劑盒、TIANScript cDNA第一鏈合成試劑盒(TIANGEN);鼠抗人GAPDH單克隆抗體、鼠抗人α-SMA單克隆抗體(中杉金橋,北京);人PCⅠ酶聯(lián)免疫檢測試劑盒(南京建成);高糖DMEM培養(yǎng)基、Hyclone胎牛血清(Thermo);青、鏈霉素(碧云天生物技術(shù)研究所,南通)。CO2培養(yǎng)箱(美國Thermo,Model 311);酶標儀(美國Thermo,Model 450);多通道PCR儀(美國MJ公司,PTC-220);電泳儀、半干轉(zhuǎn)膜儀(Bio-Rad,美國)。
1.2 細胞培養(yǎng) HSC-LX-2置于含10%胎牛血清、100 mg/L青霉素和100 mg/L鏈霉素高糖DMEM培養(yǎng)液中,于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),隔天換液。當細胞生長呈單層致密狀態(tài)時,用0.25%EDTA胰蛋白酶消化,每2~3 d按1∶2進行傳代。
1.3 MFA干預(yù)后HSC-LX-2細胞抑制率測算采用MTT法。將HSC-LX-2細胞以4×103/孔接種于96孔板,細胞貼壁生長良好后將細胞分為正常對照組、模型組和藥物組,并設(shè)復(fù)孔,更換含刺激源和成倍比稀釋藥物的培養(yǎng)液各180 μL。正常對照組不進行刺激源及藥物干預(yù),模型組僅含終質(zhì)量濃度為1 μg/L TGF-β1,各藥物組含終質(zhì)量濃度為1 μg/L TGF-β1和終質(zhì)量濃度分別為0.312 5、0.625、1.25、2.5、5、10、20、40 mg/L的MFA。培養(yǎng)72 h后,各孔加入MTT 20 μL,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,吸出上清液,每孔加入200 mL DMSO,置于搖床上低速振蕩10 min,于酶標儀單波長(490 nm)處測定光密度(OD)值,計算細胞抑制率,評價MFA對HSC-LX-2的增殖抑制作用。細胞抑制率(%)=(模型組OD值-藥物組OD值)/模型組OD 值×100%。
1.4 HSC-LX-2中α-SMA及PCⅠmRNA表達測定采用RT-PCR法將細胞以5×107/L接種于10 cm培養(yǎng)皿中,細胞分為正常對照組、模型組、MFA低劑量組、MFA中劑量組、MFA高劑量組,正常對照組僅含細胞培養(yǎng)液,模型組不含TGF-β1,MFA低劑量組給予1 μg/L TGF-β1+1.25 mg/L MFA,MFA中劑量組給予1 μg/L TGF-β1+2.5 mg/L MFA,MFA高劑量組給予1 μg/L TGF-β1+5 mg/L MFA。細胞貼壁生長良好后,更換各組含相應(yīng)藥物的培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)72 h。收集細胞,按照艾德萊總RNA提取說明書,采用TRIzol法抽提細胞中總RNA。用核酸蛋白測定儀測定RNA含量及純度,OD260/OD280均在1.8~2.0。取cDNA 5 μg,采用M-MuLV逆轉(zhuǎn)錄酶將其逆轉(zhuǎn)錄成cDNA。根據(jù)GenBank查找基因序列并設(shè)計引物,以β-actin為內(nèi)參。α-SMA引物序列:FP:5′-CTGTTCCAGCCATCCTTCAT-3′;RP:5′-CCGTGATCTCCTTCTGCATT-3′,產(chǎn)物長度175 bp。PCⅠ引物序列:FP5′-CCTCAAGGCTCCAACGAG-3′,RP5′-TCAATCACTGTCTTGCCCCA-3′,產(chǎn)物長度117 bp。βactin引物序列:FP:5′-CACTCTTCCAGCCTTCCTTCC-3′;RP:5′-CGTACAGGTCTTTGCGGATGTC-3′,產(chǎn)物長度105 bp。反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性3 min,94℃變性30 s,55 ℃/60℃退火30 s,72℃延伸1 min,共反應(yīng)35個循環(huán),最終產(chǎn)物72℃5 min。反應(yīng)結(jié)束后分別取10 μL RTPCR產(chǎn)物及10 μL DNA marker進行2%瓊脂糖凝膠電泳,Gel Doc XR系統(tǒng)檢測OD值。Quantity One軟件進行分析,將α-SMA及PCⅠ的mRNA與內(nèi)參β-actin mRNA的OD比值進行半定量分析。
1.5 HSC-LX-2中α-SMA蛋白表達測定 采用Western blotting法。細胞分組同1.4,培養(yǎng)72 h后收集細胞,冰上PBS液漂洗3次,加入RIPA裂解緩沖液裂解,收集細胞裂解物。于4℃、12 000 r/min離心15 min。離心后取上清液。BCA法測定上清液總蛋白含量,取100 μg總蛋白的上清液,煮沸5 min后進行10%聚丙烯酰胺凝膠電泳,電泳結(jié)束后將凝膠上的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到PVDF膜上(PVDF膜使用前用甲醇浸泡2 min),將質(zhì)量分數(shù)為5%的含TBST脫脂奶粉室溫封閉1 h后,用TBST洗脫4次,每次7 min。然后加入α-SMA一抗(1∶500)孵育,室溫孵育2 h后放置4℃搖床過夜(16~18 h),再用TBST沖洗4次,每次7 min,再與辣根過氧化物酶標記的二抗(1∶5 000)作用1 h,再用TBST沖洗4次,每次7 min,反應(yīng)信號經(jīng)ECL底物化學發(fā)光顯色。GAPDH為內(nèi)參。
1.6 HSC-LX-2中PCⅠ蛋白表達測定 采用ELISA法。細胞分組同RT-PCR法,分別取各組細胞培養(yǎng)液和標準品各50 μL及HRP 50 μL,加入孔內(nèi),37℃孵育60 min,洗板5次,加入顯色液A、B,37℃顯色10 min,加終止液,10 min內(nèi)混勻后隨即在酶標儀450 nm波長處測定OD值,根據(jù)標準曲線及OD值計算PCⅠ蛋白表達。
1.7 統(tǒng)計學方法 采用SPSS18.0統(tǒng)計軟件。作圖軟件為GraphPad Prism 5。計量數(shù)據(jù)以ˉx±s表示,多組均數(shù)比較采用單因素方差分析,多重比較采用LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 不同質(zhì)量濃度MFA對HSC-LX-2的生長抑制作用 MFA作用HSC-LX-2 72 h后,當MFA質(zhì)量濃度小于5 mg/L時,HSC-LX-2細胞生長抑制率隨MFA質(zhì)量濃度增加而升高,當MFA質(zhì)量濃度大于10 mg/L時細胞生長抑制率隨MFA質(zhì)量濃度增加而降低,見表1。5 mg/L MFA對HSC-LX-2的生長有較高抑制率,因此選用MFA劑量相對較小、抑制率相對較高的1.25、2.5、5 mg/L作為低、中、高劑量藥物組,開展后續(xù)實驗。
2.2 MFA對HSC-LX-2α-SMA及PCⅠmRNA表達的影響 經(jīng)刺激源和藥物處理HSC-LX-2 72 h后,α-SMA mRNA和PCⅠmRNA表達隨MFA質(zhì)量濃度增高而逐漸降低(P均<0.05),與正常對照組比較,模型組α-SMA mRNA和PCI mRNA表達增高;與模型組比較,MFA低、中、高劑量(1.25、2.5、5 mg/L)組α-SMA mRNA和PCI mRNA表達均降低,且隨MFA濃度的升高α-SMA mRNA和PCI mRNA表達量逐漸降低(P均<0.05)。見圖1、表2。
表1 MFA作用72 h后各組HSC-LX-2細胞抑制率比較±s)
表1 MFA作用72 h后各組HSC-LX-2細胞抑制率比較±s)
注:與正常對照組比較,aP<0.05,bP<0.01;與模型組比較,cP <0.05,dP<0.01;與MFA 1.25 mg/L比較,eP<0.05,fP<0.01;與MFA 2.5 mg/L比較,gP<0.05,hP<0.01。
組別OD值細胞抑制率(%)0.480±0.016-模型組0.556±0.076a-藥物組MFA 0.312 5 mg/L0.453±0.01821.267 MFA 0.625 mg/L0.450±0.02622.043 MFA 1.25 mg/L0.395±0.029c33.857 MFA 2.5 mg/L0.331±0.019ce46.912 MFA 5 mg/L0.222±0.026ceg70.935 MFA 10 mg/L0.315±0.01849.938 MFA 20 mg/L0.379±0.02636.838正常對照組MFA 40 mg/L0.471±0.01718.065
圖1 MFA作用下各組HSC-LX-2的α-SMA 及PCⅠmRNA表達
表2 MFA作用下各組HSC-LX-2的α-SMA 及PCⅠmRNA表達比較±s)
表2 MFA作用下各組HSC-LX-2的α-SMA 及PCⅠmRNA表達比較±s)
注:與正常對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與MFA低劑量組比較,cP<0.05;與MFA中劑量組比較,dP<0.05。
組別α-SMA mRNAPCⅠmRNA正常對照組0.784±0.1490.059±0.011模型組1.513±0.173a0.262±0.013aMFA低劑量組1.164±0.139ab0.218±0.027abMFA中劑量組0.651±0.115abc0.155±0.027abcMFA高劑量組0.359±0.102abcd0.084±0.026bcd
2.3 MFA對HSC-LX-2細胞中α-SMA、PCⅠ蛋白表達的影響 經(jīng)刺激源和藥物處理HSC-LX-2 72 h后,α-SMA和PCⅠ蛋白表達水平隨MFA質(zhì)量濃度的增高逐漸降低(P均<0.05),與正常對照組比較,模型組兩蛋白表達增高;與模型組比較MFA低、中、高劑量組兩蛋白表達均降低,且隨MFA濃度的升高蛋白表達量依次降低(P均<0.05)。見圖2、表3。
圖2 MFA作用下各組HSC-LX-2的α-SMA 及PCⅠ蛋白表達
表3 MFA作用下各組HSC-LX-2的α-SMA 及PCⅠ蛋白表達比較±s)
表3 MFA作用下各組HSC-LX-2的α-SMA 及PCⅠ蛋白表達比較±s)
注:與正常對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與MFA中劑量組比較,cP<0.05;與MFA中劑量組比較,dP<0.05。
組別α-SMA蛋白PCⅠ蛋白正常對照組0.812±0.0740.421±0.058模型組1.140±0.220a2.045±0.035aMFA低劑量組0.634±0.99ab0.645±0.035abMFA中劑量組0.453±0.154abc0.109±0.013abcMFA高劑量組0.282±0.095abcd0.045±0.025abcd
HSC正常生理狀態(tài)下增殖較慢,主要參與維生素A的代謝,并產(chǎn)生少量的ECM。在致病因子的作用下,特別是病毒性肝炎、酒精性肝病、非酒精性脂肪性肝炎、中毒性肝病時,HSC-LX-2被激活、活化轉(zhuǎn)變?yōu)榧〕衫w維細胞,產(chǎn)生大量的ECM導致肝臟內(nèi)膠原纖維不斷沉積,并表達大量的α-SMA和膠原類物質(zhì)(PCⅠ為主)[10],進一步導致肝臟內(nèi)部結(jié)構(gòu)重建,故肝纖維化發(fā)生的主要原因與ECM生成增多有關(guān)[11,12]。因此,HSC是治療肝纖維化的一個重要靶點,而α-SMA及PCⅠ大量表達是HSC活化的重要標志。MFA是從蟬翼藤屬中提取的活性單體,我們研究發(fā)現(xiàn)MFA對CCl4致急性肝損傷小鼠有一定的保護作用[13]。MFA通過對大鼠肝星狀細胞干預(yù)后,檢測細胞上清液中羥脯氨酸、金屬蛋白酶組織抑制因子和透明質(zhì)酸含量降低,從而使ECM合成減少,肝纖維化減輕[9]。本研究結(jié)果表明MFA對HSC-LX-2的增殖有抑制作用,且在一定濃度范圍內(nèi)(1.25~5 mg/L)呈劑量依賴性。
α-SMA主要分布于血管平滑肌,具有一定的收縮功能并參與維持血管的正常結(jié)構(gòu)與功能。在肝臟受到損傷時,纖維化區(qū)HSC大量表達α-SMA,因此α-SMA常作為HSC活化的重要標志。研究[14]表明α-SMA表達水平與肝纖維化程度呈正相關(guān)。Ⅰ型前膠原作為肝纖維化組織中一種重要的ECM,主要由激活的HSC產(chǎn)生。本研究結(jié)果顯示,模型組α-SMA及PCⅠ的mRNA及蛋白表達均升高,表明活化的HSC-LX-2細胞模型造模成功。α-SMA及PCⅠ在MFA(1.25、2.5、5 mg/L)任一濃度干預(yù)下均有不同程度的抑制作用,其中以5 mg/L效果顯著。MFA各濃度劑量組與模型組比較纖維化程度有所減輕,證實MFA在合適濃度范圍內(nèi)有一定抑制肝纖維化的作用。
綜上所述,MFA可抑制TGF-β1刺激HSC-LX-2細胞增殖及活化,從mRNA及蛋白水平上均減弱了α-SMA、PCⅠ表達,而HSC-LX-2活化是肝纖維化發(fā)生發(fā)展的主要途徑之一。以此我們推測MFA可抑制肝纖維化的發(fā)展,但MFA是否直接通過減弱α-SMA、PCⅠ的表達來發(fā)揮抗肝纖維化的作用機制還有待進一步證明。
[1]Friedman SL.Mechanisms of hepatic fibrogenesis[J].Gastroenterology,2008,134(6):1655-1669.
[2]Xu L,Hui AY,Albanis E,et al.Human hepatic stellate cell lines,LX-1 and LX-2:new tools for analysis of hepatic fibrosis [J].Gut,2005,54(1):142-151.
[3]Thompson KJ,McKillop IH,Schrum LW.Targeting collagen expression in alcoholic liver disease[J].World J Gastroenterol,2011,17(20):2473-2481.
[4]Gressner AM,Weiskirchen R.Modern pathogenetic concepts of liver fibrosis suggest stellate cells and TGF-beta as major players and therapeutic targets[J].J Cell Mol Med,2006,10(1):76-99.
[5]Wrana JL.The secret life of Smad4[J].Cell,2009,136(1):13-14.
[6]Cutroneo KR.TGF-beta-induced fibrosis and SMAD signaling:oligo decoys as natural therapeutics for inhibition of tissue fibrosis and scarring[J].Wound Repair Regen,2007,15(Suppl 1):S54-60.
[7]李勇文,李麗,梁榮感,等.含蟬翼藤大鼠血清的免疫調(diào)節(jié)作用[J].中國現(xiàn)代應(yīng)用藥學,2007,24(6):452-454.
[8]容明智,李麗,李勇文,等.甲基阿魏酸對PDGF-BB刺激的肝星狀細胞增殖的影響[J].右民族醫(yī)學院學報,2012,34(6):738-739.
[9]容明智,李麗,李勇文,等.甲基阿魏酸對肝星狀細胞增殖和細胞外基質(zhì)的影響[J].中國醫(yī)藥科學,2012,2(23):32-34.
[10]Kisseleva T,Brenner DA.Anti-fibrogenic strategies and the regression of fibrosis[J].Best Pract Res Clin Gastroenterol,2011,25 (2):305-317.
[11]Friedman SL.Liver fibrosis--from bench to bedside[J].J Hepatol,2003,38(Suppl 1):S38-53.
[12]Tsukada S,Parsons CJ,Rippe RA.Mechanisms of liver fibrosis [J].Clin Chim Acta,2006,364(1-2):33-60.
[13]龐文簫,李勇軍,李勇文,等.蟬翼藤中甲基阿魏酸對CCl4致急性肝損傷小鼠模型的影響[J].中國藥房,2015,26 (1):21-24.
[14]Akpolat N,Yahsi S,Godekmerdan A,et al.The value of alpha-SMA in the evaluation of hepatic fibrosis severity in hepatitis B infection and cirrhosis development:a histopathological and immunohistochemical study[J].Histopathology,2005,47(3):276-280.
Inhibitory effect of meth-ferulic acid on proliferation and activation of TGF-β1-induced human hepatic stellate cells
XIONG Meili,LI Yongwen,LI Li,YANG Chengfang,ZHONG Yujuan
(Guilin Medical University,Guilin 541000,China)
Objective To investigate inhibitory effect of meth-ferulic acid(MFA)on proliferation and activation of transforming growth factor-β1(TGF-β1)-induced human hepatic stellate cells(HSC-LX-2).Methods HSC-LX-2 were cultured in vitro as the contol group and using 1 μg/L TGF-β1to stimulate HSC-LX-2 as the model group.Meanwhile,the drug intervention group contained 1 μg/L TGF-β1and 0.312 5,0.625,1.25,2.5,5,10,20 and 40 mg/L MFA.MTT assay was used to evaluate the effect of MFA on the proliferation of HSC-LX-2 in the model group and the drug intervention group,then the we chose the suitable concentrations of MFA into the low-dose,medium-dose and high-dose groups(1.25,2.5 and 5.0 mg/L).After 72 h incubation,the mRNA expression of α-SMA and PCⅠin the above five groups was determined by RT-PCR,the protein expression of α-SMA was determined by Western blotting,and the protein expression of PCⅠin each group was determined by ELISA.Results With the increasing MFA concentration in the range of 0.312 5-5 mg/L,the growth inhibition rate of HSC-LX-2 cell accelerated proportionally,which was in a dose-dependent manner(all P<0.05).However,when the MFA cell concentration was greater than 10 mg/L,the growth inhibition rate decreased.Similarly,within a certain concentration range(1.25-5.0 mg/L),as MFA concentration increased,we found that the expression of α-SMA and PCⅠin HSC-LX-2 cells declined progressively(all P<0.05).Conclusion MFA may inhibit the proliferation,down-regulate the mRNA and protein expression of α-SMA and PCⅠin the TGF-β1-induced HSC-LX-2 and inhibit the extracellular matrix synthesis and phenotype transformation of HSC-LX-2.
liver fibrosis;human hepatic stellate cells;meth-ferulic acid;transforming growth factor β1;cell proliferation;α-smooth muscle actin;procollagenⅠ
10.3969/j.issn.1002-266X.2016.25.001
R657.31
A
1002-266X(2016)25-0001-04
國家自然科學基金資助項目(81360497);廣西高等學校優(yōu)秀中青年骨干教師培養(yǎng)工程項目。
熊美麗(1991-),女,在讀研究生,主要研究方向為肝纖維化基礎(chǔ)與臨床。E-mail:xiongmeili12345@163.com
簡介:李勇文(1969-),男,博士,教授,主要研究方向為肝纖維化基礎(chǔ)與臨床。E-mail:liyongwen99@163.com
2016-01-15)