• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞膽固醇逆轉(zhuǎn)運的影響及機制*

      2016-09-05 07:04:06李秀英西南醫(yī)科大學附屬醫(yī)院藥劑科四川瀘州646000
      現(xiàn)代醫(yī)藥衛(wèi)生 2016年14期
      關(guān)鍵詞:葡聚糖源性孵育

      李秀英,葉 云(西南醫(yī)科大學附屬醫(yī)院藥劑科,四川瀘州646000)

      ·論著·

      β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞膽固醇逆轉(zhuǎn)運的影響及機制*

      李秀英,葉云△(西南醫(yī)科大學附屬醫(yī)院藥劑科,四川瀘州646000)

      目的探討β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞膽固醇逆轉(zhuǎn)運的影響及相關(guān)機制。方法采用氧化低密度脂蛋白(oxLDL)誘導的RAW264.7巨噬細胞為泡沫細胞模型,給予β-葡聚糖進行干預。通過油紅O染色及酶比色法定量檢測細胞內(nèi)總膽固醇和膽固醇酯水平的變化;采用Western blotting及實時定量PCR檢測β-葡聚糖對巨噬細胞ATP結(jié)合盒轉(zhuǎn)運蛋白A1(ABCA1)及其mRNA表達的影響并進行統(tǒng)計分析。同時采用蛋白合成抑制劑放線菌酮(CHX)處理細胞4、8、12 h測定ABCA1穩(wěn)定性。結(jié)果與oxLDL處理組比較,β-葡聚糖對巨噬細胞攝取脂質(zhì)的抑制率為 (90.0±1.8)%,oxLDL處理組巨噬細胞源性泡沫細胞內(nèi)膽固醇酯及總膽固醇與β-葡聚糖處理組 (2.5、5.0、10.0 μg/mL β-葡聚糖+oxLDL共同孵育)比較,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);5.0、10.0 μg/mL β-葡聚糖處理組巨噬細胞源性泡沫細胞ABCA1及其mRNA表達與對照組比較,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.01或0.05)。β-葡聚糖(10.0 μg/mL)與CHX共同處理組在細胞孵育4、8、12 h時,ABCA1降低水平均小于CHX處理組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。結(jié)論β-葡聚糖通過增加ABCA1的表達水平及增強其穩(wěn)定性,促進細胞內(nèi)膽固醇的排出,最終抑制巨噬細胞源性泡沫細胞的形成。

      β葡聚糖類;巨噬細胞;膽固醇;泡沫細胞;膽固醇酯;動脈粥樣硬化

      動脈粥樣硬化是冠狀動脈疾病的主要危險因素,是發(fā)達國家人群致死、致殘的首要病因,在發(fā)展中國家其發(fā)生率也逐漸呈增高趨勢[1]。脂質(zhì)含量豐富的巨噬細胞源性泡沫細胞是動脈粥樣硬化損傷形成的標志,也是導致動脈粥樣硬化損傷的原因[2]。巨噬細胞泡沫化與巨噬細胞大量攝取氧化低密度脂蛋白(oxLDL)、細胞內(nèi)膽固醇排出障礙及細胞內(nèi)大量蓄積膽固醇酯(CE)有關(guān)[3]。膽固醇逆轉(zhuǎn)錄受體ATP結(jié)合盒轉(zhuǎn)運蛋白 A1(ABCA1)負責將巨噬細胞內(nèi)膽固醇排出[4]。有研究結(jié)果顯示,增加ABCA1的表達可以抑制泡沫細胞的形成,并最終延緩動脈粥樣硬化的發(fā)生、發(fā)展[5-6]。

      β-葡聚糖主要來源于新鮮的食品,如燕麥、啤酒酵母等。有研究顯示,β-葡聚糖具有降低血脂、抗氧化、預防動脈粥樣硬化的作用[7],但具體機制尚不清楚。本研究擬從ABCA1表達變化的角度探討β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞膽固醇排出的影響,為β-葡聚糖抗動脈粥樣硬化作用機制的研究和臨床應用提供實驗依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1材料

      1.1.1細胞RAW264.7巨噬細胞(美國ATCC細胞庫),由重慶醫(yī)科大學生命科學院提供。

      1.1.2試劑油紅O(規(guī)格:5 g,批號:215-295-3)、甘油明膠(規(guī)格:100 mL,批號:G5516,純度:≥99%)、β-葡聚糖(規(guī)格:25 mg,批號:P1120100)均購自美國Sigma公司;ABCA1(ab18180)、β-actin(ab8226)抗體購于美國Abcam公司;DMEM培養(yǎng)基(規(guī)格:500mL,批號:1740266)、胎牛血清(規(guī)格:200 mL,批號:150202)購自Gibco公司;oxLDL(規(guī)格:2 mg,批號:2015-12-22)購自廣州奕源生物公司。

      1.1.3儀器H1650-W臺式高速離心機(湖南湘儀離心機儀器有限公司);ESCO垂直流超凈工作臺(北京五洲東方科技發(fā)展有限公司);BBD6220 CO2培養(yǎng)箱(美國Thermo Fisher公司);IX71-A21PH倒置顯微鏡(日本Olympus公司);DHP-9402電熱恒溫培養(yǎng)箱[德創(chuàng)科儀(北京)科技有限公司];Fluoroskan Ascent FL酶標儀(美國Thermo Forma公司);GelDoc XR+凝膠成像系統(tǒng)(美國Bio-Rad公司)。

      1.2方法

      1.2.1細胞培養(yǎng)及凍存RAW264.7巨噬細胞復蘇后,使用DMEM培養(yǎng)基加10%胎牛血清置于含5%CO2、37℃的培養(yǎng)箱進行培養(yǎng),0.25%胰酶消化傳代,當傳至第5代時可將細胞用于實驗。取對數(shù)生長期細胞,消化、離心、稀釋細胞至密度為2×106mL-1,分裝于凍存管中,置于-80℃冰箱中,過夜后轉(zhuǎn)至液氮罐保存。

      1.2.2噻唑藍(MTT)法檢測細胞活性RAW264.7巨噬細胞接種于96孔板中,將細胞分成對照組及β-葡聚糖(2.5、5.0、10.0 μg/mL)干預組。每組3個復孔,待細胞生長良好后,β-葡聚糖干預組分別加入濃度為2.5、5.0、10.0 μg/mL的β-葡聚糖,培養(yǎng)24 h后,加入20 μL MTT孵育4 h,加入二甲亞砜(DMSO)120 μL,振蕩10 min,在波長570 nm處檢測吸光度A570nm。

      1.2.3油紅O染色檢測細胞內(nèi)脂質(zhì)含量將RAW264.7巨噬細胞接種于6孔板內(nèi),分為對照組、oxLDL處理組(100 μg/mL oxLDL孵育24 h)、β-葡聚糖處理組(5.0 μg/mL β-葡聚糖及100 μg/mL oxLDL共同孵育24 h)。細胞孵育結(jié)束后,棄上清液,10%多聚甲醛固定30 min,用磷酸鹽緩沖液(PBS)輕輕洗1次后,油紅O染色10 min,再用60%異丙醇洗滌細胞1次(孵育時間10 s),棄異丙醇,PBS輕輕洗1次后顯微鏡下照相。

      1.2.4細胞內(nèi)總膽固醇(TC)及CE含量測定將RAW264.7巨噬細胞接種于 6孔板內(nèi),分為對照組、oxLDL處理組(100 μg/mL oxLDL孵育24 h)、β-葡聚糖處理組(2.5、5.0、10.0 μg/mL β-葡聚糖及100 μg/mL oxLDL共同孵育24 h),細胞孵育結(jié)束后,收集細胞,1 000 r/min離心4 min,棄上清液,加入80 μL無水乙醇,超聲提取10 s后,10 000 r/min離心5 min,吸上清液至EP管中,按照試劑盒說明書分別測定細胞內(nèi)TC及CE含量。

      1.2.5Western blotting檢測ABCA1的表達及其蛋白穩(wěn)定性(1)ABCA1表達量的測定:將處于對數(shù)生長期的RAW264.7巨噬細胞分為對照組、β-葡聚糖(2.5、5.0、10.0 μg/mL)處理組,孵育24 h后,收集細胞,加入細胞裂解液裂解細胞并提取蛋白,采用二喹啉甲酸(BCA)蛋白定量試劑盒檢測蛋白濃度。25 μg蛋白樣品與上樣緩沖液混合后煮沸10 min,十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝膠電泳100 V恒壓2 h,濕轉(zhuǎn)300 mA恒流1.5 h,5%脫脂奶粉封膜1 h,磷酸鹽緩沖液+0.1%吐溫-20(PBST)漂洗 3次后分別加入一抗和 β-actin 4℃孵育過夜,PBST漂洗3次,37℃二抗 (1∶1000稀釋)反應1 h后進行電化學發(fā)光(ECL)顯色。以β-actin作為內(nèi)參,計算目的蛋白的表達量。(2)對于ABCA1穩(wěn)定性的測定:將處于對數(shù)生長期的RAW264.7細胞分為對照組、蛋白合成抑制劑放線菌酮(CHX)處理組、10.0 μg/mL β-葡聚糖與2.0 μg/mL CHX共同處理組,孵育時間為4、8、12 h,收集孵育后的細胞,按照上述方法檢測ABCA1的變化。

      1.2.6熒光定量PCR檢測ABCA1 mRNA表達將處于對數(shù)生長期的RAW264.7巨噬細胞分為對照組、β-葡聚糖(2.5、5.0、10.0 μg/mL)處理組,孵育 24 h后,用Trizol提取細胞RNA,經(jīng)Takara逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA,再通過引物進行熒光定量PCR擴增。所用引物包括:β-actin上游:5′-TTGTCCCTGTATGCCTCTGG-3′;βactin下游:5′-TTGTCCCTGTATGCCTCTGG-3′;ABCA1上游:5′-GGTTTGGAGATGGTTATACAATAGTTGT-3′,ABCA1下游:5′-CCCGGAAACGCAAGTCC-3′,實驗結(jié)果用β-actin的mRNA標準化。

      1.3統(tǒng)計學處理應用SPSS10.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析,實驗數(shù)據(jù)以±s表示,采用雙尾t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

      2 結(jié) 果

      2.1不同質(zhì)量濃度β-葡聚糖對RAW264.7巨噬細胞活性的影響β-葡聚糖質(zhì)量濃度為2.5、5.0、10.0 μg/mL時,檢測所得A570nm值分別為3.68±0.06、3.68±0.06、3.69± 0.07,與對照組(3.65±0.05)比較,差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。2.5、5.0、10.0 μg/mL的β-葡聚糖對RAW264.7巨噬細胞的活性無影響,因此,在后續(xù)實驗中選取的β-葡聚糖質(zhì)量濃度為2.5、5.0、10.0 μg/mL。

      2.2不同質(zhì)量濃度β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞內(nèi)膽固醇含量的影響oxLDL處理組巨噬細胞源性泡沫細胞內(nèi)CE及TC含量明顯增加,與對照組比較,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);oxLDL+β-葡聚糖(2.5、5.0、10.0 μg/mL)處理組TC及CE含量與oxLDL處理組比較,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見表1。

      表1 不同質(zhì)量濃度β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞內(nèi)膽固醇含量的影響(±s,mg/dL,n=3)

      表1 不同質(zhì)量濃度β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞內(nèi)膽固醇含量的影響(±s,mg/dL,n=3)

      注:與對照組比較,aP<0.05;與oxLDL處理組比較,bP<0.05。

      膽固醇對照組 o x L D L處理組o x L D L + 2 . 5 μ g / m L β-葡聚糖處理組o x L D L + 5 . 0 μ g / m L β-葡聚糖處理組o x L D L + 1 0 . 0 μ g / m L β-葡聚糖處理組T C C E 3 6 2 . 0 ± 1 9 . 0 2 1 6 . 0 ± 1 2 . 0 6 5 1 . 6 ± 2 0 . 0a3 2 4 . 0 ± 1 5 . 0a3 9 8 . 2 ± 2 8 . 0b2 5 9 . 2 ± 2 0 . 0b3 2 5 . 8 ± 2 5 . 0b2 4 1 . 9 ± 2 8 . 0b2 8 9 . 6 ± 3 0 . 0b1 9 4 . 4 ± 1 7 . 0b

      2.3β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞形成的影響

      對照組細胞內(nèi)聚集的脂質(zhì)較少,oxLDL處理組細胞內(nèi)脂質(zhì)明顯增多,油紅O染色后陽性細胞數(shù)為對照組的(5.00± 0.07)倍,與oxLDL處理組比較,5.0 μg/mL β-葡聚糖處理細胞后,細胞內(nèi)脂質(zhì)聚集減少,油紅O染色后陽性細胞減少(90.0±1.8)%。見圖1。

      圖1 β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞形成的影響(油紅O染色,400×)

      2.4β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞ABCA1及其mRNA表達的影響2.5、5.0、10.0 μg/mLβ-葡聚糖處理組ABCA1表達顯著高于對照組,5.0、10.0μg/mLβ-葡聚糖處理組ABCA1 mRNA表達顯著高于對照組,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.01或0.05),見表2、3,圖2。

      表2 β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞ABCA1表達的影響(±s,n=3)

      表2 β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞ABCA1表達的影響(±s,n=3)

      注:與對照組比較,aP<0.01。

      組別對照組β-葡聚糖處理組(μ g / m L )2 . 5 5 . 0 1 0 . 0 A B C A 1 / β -a c t i n 1 . 5 0 ± 0 . 0 5 1 . 8 0 ± 0 . 0 6a1 . 9 5 ± 0 . 0 8a2 . 2 5 ± 0 . 0 4a

      表3 β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞ABCA1 mRNA表達的影響(±s,n=3)

      表3 β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞ABCA1 mRNA表達的影響(±s,n=3)

      注:與對照組比較,aP<0.05。

      組別對照組β-葡聚糖處理組(μ g / m L )2 . 5 5 . 0 1 0 . 0 A B C A 1 m R N A 1 . 7 0 ± 0 . 0 6 1 . 8 7 ± 0 . 0 5 1 . 9 5 ± 0 . 0 7a2 . 1 0 ± 0 . 0 8a

      圖2 β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞ABCA1表達的影響

      2.5β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞 ABCA1穩(wěn)定性的影響β-葡聚糖(10.0 μg/mL)與CHX共同處理組在細胞孵育4、8、12 h時,ABCA1降低水平均小于CHX處理組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見表4、圖3。

      表4 β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞ABCA1穩(wěn)定性的影響(±s,n=3)

      表4 β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞ABCA1穩(wěn)定性的影響(±s,n=3)

      注:與CHX處理組相同時間點比較,aP<0.05。

      組別 0 h 4 h 8 h 1 2 h C H X處理組C H X + β-葡聚糖處理組1 . 3 0 ± 0 . 0 4 1 . 3 0 ± 0 . 0 4 0 . 3 9 ± 0 . 0 3 0 . 6 5 ± 0 . 0 5a0 . 2 6 ± 0 . 0 6 0 . 5 2 ± 0 . 0 3a0 . 2 4 ± 0 . 0 2 0 . 3 0 ± 0 . 0 3a

      圖3 β-葡聚糖對巨噬細胞源性泡沫細胞ABCA1穩(wěn)定性的影響

      3 討 論

      已有研究表明,β-葡聚糖有降血脂、預防動脈粥樣硬化的作用[7]。但β-葡聚糖是否減少巨噬細胞內(nèi)CE的聚集及相關(guān)機制鮮見報道。本研究結(jié)果顯示,β-葡聚糖通過促進巨噬細胞膽固醇逆轉(zhuǎn)運受體ABCA1的表達及增強ABCA1蛋白穩(wěn)定性,減少巨噬細胞內(nèi)CE的聚集,抑制巨噬細胞源性泡沫細胞的形成。

      膽固醇逆轉(zhuǎn)運受體介導的巨噬細胞內(nèi)膽固醇的排出在維持巨噬細胞膽固醇處于平衡狀態(tài)過程中起著重要作用[4]。本研究結(jié)果證明了β-葡聚糖通過減少巨噬細胞內(nèi)CE及TC含量,抑制巨噬細胞對oxLDL的攝取,從而抑制巨噬細胞源性泡沫細胞的形成。此外,β-葡聚糖顯著增加巨噬細胞ABCA1及其mRNA的表達。量化β-葡聚糖對ABCA1變化的影響發(fā)現(xiàn),10.0 μg/mL β-葡聚糖增加ABCA1的表達量(50%,2.25/1.50)大約為β-葡聚糖介導的ABCA1 mRNA升高量(24%,2.10/1.70)及β-葡聚糖穩(wěn)定ABCA1表達量(25%,0.30/0.24)的總和,該結(jié)果表明β-葡聚糖是通過調(diào)控ABCA1逆轉(zhuǎn)錄水平及轉(zhuǎn)錄后水平增加ABCA1的表達。ABCA1是巨噬細胞排出膽固醇的主要膽固醇逆轉(zhuǎn)運受體[4]。此外,ABCA1在維持巨噬細胞內(nèi)膽固醇平衡的重要作用已經(jīng)得到公認[8-9]。由ABCA1的功能可知,β-葡聚糖增加ABCA1表達的作用與β-葡聚糖減少巨噬細胞內(nèi)CE及TC含量,最終抑制巨噬細胞源性泡沫細胞的形成有關(guān)。

      綜上所述。本研究提供了β-葡聚糖抗動脈粥樣硬化的新機制,同時也為抗動脈粥樣硬化提供了治療靶點。

      [1]Fernández-Friera L,Pe?alvo JL,F(xiàn)ernández-Ortiz A,et al.Prevalence,vascular distribution,and multiterritorial extent of subclinical atherosclerosis in a middle-aged cohort:the PESA(progression of early subclinical atherosclerosis)study[J].Circulation,2015,131(24):2104-2113.

      [2]Patel KM,Strong A,Tohyama J,et al.Macrophage sortilin promotes LDL uptake,foam cell formation,and atherosclerosis[J].Circ Res,2015,116(5):789-796.

      [3]Evans CE,Mylchreest S,Charlton-Menys V,et al.The role of hydrostatic pressure in foam cell formation upon exposure of macrophages to LDL and oxidized LDL[J].Atherosclerosis,2008,197(2):596-601.

      [4]Saeed O,Otsuka F,Polavarapu R,et al.Pharmacological suppression of hepcidin increases macrophage cholesterol efflux and reduces foam cell formation and atherosclerosis[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2012,32(2):299-307.

      [5]Tsai JY,Su KH,Shyue SK,et al.EGb761 ameliorates the formation of foam cells by regulating the expression of SR-A and ABCA1:role of haem oxygenase-1[J].Cardiovasc Res,2010,88(3):415-423.

      [6]Wu C,Chen R,Liu M,et al.Spiromastixones inhibit foam cell formation via regulation of cholesterol efflux and uptake in RAW264.7 macrophages[J]. Mar Drugs,2015,13(10):6352-6365.

      [7]申瑞玲,朱瑩瑩,李林,等.燕麥β-葡聚糖調(diào)節(jié)腸道菌群與降脂減肥作用的研究進展[J].食品工業(yè)科技,2014,35(8):364-366.

      [8]Terpstra V,Kondratenko N,Steinberg D.Macrophages lacking scavenger receptor A show a decrease in binding and uptake of acetylated low-density lipoprotein and of apoptotic thymocytes,but not of oxidatively damaged red blood cells[J].Proc Natl Acad Sci USA,1997,94(15):8127-8131.

      [9]Park YM,F(xiàn)ebbraio M,Silverstein RL.CD36 modulates migration of mouse and human macrophages in response to oxidized LDL and may contribute to macrophage trapping in the arterial intima[J].J Clin Invest,2009,119(1):136-145.

      Effects of β-glucan on reverse cholesterol transport of macrophage-derived foam cells and its mechanism*

      Li Xiuying,Ye Yun△(Department of Pharmacy,Affiliated Hospital of Southwest Medical University,Luzhou,Sichuan 646000,China)

      ObjectiveTo explore the effects of β-glucan on the reverse cholesterol transport of macrophage-derived foam cells and its relative mechanism.MethodsOxidized low-density lipoprotein(oxLDL)induced RAW264.7 macrophages were adopted as the foam cells model for giving the β-glucan intervention.The Oil-red O staining and enzymatic colorimetry were employed to examine the changes of intracellular total cholesterol and cholesteryl ester;Western blotting and real-time PCR were used to detect the effect of β-glucan on the expression on ATP-binding cassette transporter protein A1(ABCA1)and mRNA in macrophages.The obtained data were statistically analyzed.The protein synthesis inhibitors cycloheximide(CHX)processed cell 4,8,12 h,thus,deter minated ABCA1 stability.ResultsThe inhibiting rate of β-glucan on macrophage′lipid uptake was(90.0± 1.8)%,total cholesterol and cholesteryl ester levels had statistical difference between the oxLDL group and the co-incubation groups of oxLDL and 5.0,10.0 μg/mL β-glucan(P<0.05);the expression of ABCA1 and mRNA had statistical differences between the 5.0,10.0 μg/mL β-glucan groups and the control group(P<0.01 or 0.05).β-glucan(10.0 μg/mL)and CHX common treatment group in cell incubation 4,8,12 h,ABCA1 lower level less than CHX treatment group,the difference was statistically significant (P<0.05).Conclusionβ-glucan promotes the intracellular cholesterol discharge and finally inhibits the formation of macrophagederived foam cells by enhancing ABCA1 expression and protein stability.

      Beta-glucans;Macrophages;Cholesterol;Foam cells;Cholesterol esters;Atherosclerosis

      10.3969/j.issn.1009-5519.2016.14.001

      A

      1009-5519(2016)14-2117-03

      國家青年自然科學基金項目(81500357);西南醫(yī)科大學附屬醫(yī)院課題項目(15044);西南醫(yī)科大學課題項目(2015-03-10)。

      李秀英(1987-),博士研究生,主管藥師,主要從事動脈粥樣硬化發(fā)病機制研究。

      △,E-mail:yeyun8622@163.com。

      (2016-04-07)

      猜你喜歡
      葡聚糖源性孵育
      后溪穴治療脊柱源性疼痛的研究進展
      三物黃芩湯組分(群)配伍在大鼠肝微粒體孵育模型中的相互作用
      中成藥(2017年9期)2017-12-19 13:34:27
      Identifying vital edges in Chinese air route network via memetic algorithm
      大鼠肝微粒體孵育體系中2種成分的測定及其代謝
      中成藥(2017年5期)2017-06-13 13:01:12
      葡聚糖類抗病誘導劑在水稻上的試驗初報
      雄激素源性禿發(fā)家系調(diào)查
      健康教育對治療空氣源性接觸性皮炎的干預作用
      椒蓮酊劑治療男子雄性激素源性禿發(fā)50例
      小麥麩皮中β-葡聚糖的分離純化及組成研究
      (1,3)-β-D葡聚糖檢測對侵襲性真菌感染早期診斷的意義
      枣阳市| 洛扎县| 乐都县| 岢岚县| 乌兰浩特市| 福安市| 黎城县| 梓潼县| 博爱县| 突泉县| 沁源县| 襄垣县| 方城县| 交城县| 兴化市| 乾安县| 东阳市| 洛阳市| 临江市| 潢川县| 万荣县| 乌兰县| 德惠市| 道孚县| 织金县| 台山市| 彭州市| 永仁县| 马公市| 屏南县| 康乐县| 利辛县| 阳东县| 平昌县| 竹北市| 闻喜县| 丹阳市| 罗平县| 邵武市| 荥阳市| 松原市|