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    根皮素的微生物轉(zhuǎn)化篩選及消耗率的測定

    2016-05-18 09:24:10崔雨趙艷敏魏小聰劉岱琳天津中醫(yī)藥大學(xué)天津300193中國人民武裝警察部隊(duì)后勤學(xué)院天津30016
    食品研究與開發(fā) 2016年8期
    關(guān)鍵詞:高效液相色譜

    崔雨,趙艷敏,魏小聰,劉岱琳(1.天津中醫(yī)藥大學(xué),天津300193;.中國人民武裝警察部隊(duì)后勤學(xué)院,天津30016)

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    根皮素的微生物轉(zhuǎn)化篩選及消耗率的測定

    崔雨1,2,趙艷敏2,魏小聰2,劉岱琳1,*
    (1.天津中醫(yī)藥大學(xué),天津300193;2.中國人民武裝警察部隊(duì)后勤學(xué)院,天津300162)

    摘要:利用反相高效液相色譜法從24種真菌中篩選出對根皮素具有轉(zhuǎn)化作用的菌種并進(jìn)行底物消耗率的測定。色譜條件:Welchrom C(18)色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相A相:冰醋酸∶水=2∶98(體積比),B相∶乙腈∶水∶冰醋酸= 80∶19.6∶0.4(體積比),梯度洗脫;流速:1.0 mL/min;檢測波長:280 nm。根皮素質(zhì)量濃度在0.067 1 mg/mL~1.073 6 mg/mL內(nèi)線性關(guān)系良好,回歸方程為Y= 3.5×107X + 1.5×106(R2= 0.999 9)。經(jīng)HPLC檢測4種真菌對根皮素有轉(zhuǎn)化作用,當(dāng)液體培養(yǎng)基中根皮素質(zhì)量濃度為0.3 mg/mL時(shí),測得培養(yǎng)后底物消耗率分別為60.46 %、43.67 %、91.63 %、40.32 %。該法簡便、準(zhǔn)確、重現(xiàn)性好,可適用于根皮素微生物轉(zhuǎn)化研究中非單一轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的定性和定量分析。

    關(guān)鍵詞:根皮素;反相-高效液相色譜;微生物轉(zhuǎn)化;底物消耗率

    根皮素(Phloretin)化學(xué)名為3-(4-羥基苯基)-1-(2,4,6-三羥基苯基)-1-丙酮,主要分布于蘋果、梨等水果的果皮及根皮中?,F(xiàn)代藥理學(xué)研究證明,根皮素具有抗腫瘤[1]、抗炎及免疫抑制[2]、降血糖[3]、心血管保護(hù)[4]、抗氧化、美白[5]等多種生物活性,廣泛應(yīng)用于保健品、藥品、化妝品等行業(yè),受到國內(nèi)外學(xué)者的廣泛關(guān)注[6-8]。

    近年來多采用化學(xué)合成的方法[9]對根皮素結(jié)構(gòu)進(jìn)行修飾,以期獲得結(jié)構(gòu)新穎活性更好的根皮素衍生物,但截至目前未達(dá)到理想效果。微生物轉(zhuǎn)化是利用微生物細(xì)胞或其所含酶系為反應(yīng)催化劑的生物轉(zhuǎn)化或生物催化技術(shù),現(xiàn)已作為一種最常見的、有效的生物轉(zhuǎn)化體系廣泛應(yīng)用于天然化合物的生物合成;前體化合物的生物轉(zhuǎn)化;藥用成分篩選及新藥開發(fā)、藥物代謝研究等諸多領(lǐng)域。

    文獻(xiàn)調(diào)研發(fā)現(xiàn)目前利用微生物系統(tǒng)對根皮素進(jìn)行轉(zhuǎn)化的研究鮮見報(bào)道。因此本文首次利用反相高效液相色譜法從24種真菌中篩選出對根皮素具有轉(zhuǎn)化作用的菌種并進(jìn)行底物消耗率的測定。本研究將為后續(xù)利用微生物轉(zhuǎn)化方法對根皮素進(jìn)行結(jié)構(gòu)修飾提供試驗(yàn)參考。

    1 材料與方法

    1.1材料與試劑

    根皮素標(biāo)準(zhǔn)品(純度為98 %):天津市科曼思特醫(yī)藥科技發(fā)展有限公司;根皮素試藥(純度為90 %):天津市尖峰天然產(chǎn)物研究開發(fā)有限公司;甲醇(分析純)、乙腈(色譜純):天津市康科德科技有限公司;純凈水:中國人民武裝警察部隊(duì)后勤學(xué)院自制超純水;24種菌種:中科院微生物菌種庫。

    1.2儀器與設(shè)備

    SW-CJ-2FD雙人單面凈化工作臺:蘇州凈化設(shè)備有限公司;HZQ-QX全溫振蕩器:哈爾濱東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司;SB-2000旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:瑞士BUCHI公司;SHB-ⅢS循環(huán)水式多用真空泵:鄭州長城科工貿(mào)有限公司;FA1204B電子天平:上海精密科學(xué)儀器有限公司;高效液相色譜儀:日本島津公司;色譜柱Welchrom C18(4.6 mm×250 mm,5 μm)。

    1.3方法

    1.3.1色譜條件

    流動相:A相:冰醋酸∶水=2∶98(體積比),B相:乙腈∶水∶冰醋酸=80∶19.6∶0.4(體積比),梯度洗脫程序見表1。進(jìn)樣體積:10 μL;流速:1.0 mL/min;檢測波長:280 nm,柱溫箱溫度:30℃。

    表1 HPLC的梯度洗脫程序Table 1 The gradient program of HPLC

    1.3.2標(biāo)準(zhǔn)品溶液的配制

    精密稱取根皮素對照品,加色譜甲醇溶解并定容于25mL容量瓶中,搖勻,制成質(zhì)量濃度為1.342mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)品溶液,用0.45 μm微孔濾膜過濾,4℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.3根皮素的微生物轉(zhuǎn)化與分析樣品的制備[10]

    將保存于固體斜面培養(yǎng)基的24種真菌分別制成104CFU/mL孢子懸液,接種到100 mL液體土豆培養(yǎng)基中,每種真菌設(shè)置空白組和給藥組,于全溫振蕩器中培養(yǎng),培養(yǎng)條件為:轉(zhuǎn)速160 r/min,培養(yǎng)溫度28℃。培養(yǎng)48 h后,給藥組加入2 mL的根皮素甲醇溶液(質(zhì)量濃度為15 mg/mL),空白組加入2 mL的甲醇試劑。繼續(xù)培養(yǎng)72 h,將轉(zhuǎn)化液分別超聲20 min,減壓抽濾,濾液用等體積的正丁醇萃取3次,萃取液濃縮至干,甲醇溶解并定容于25 mL容量瓶中,搖勻,即得到該菌的給藥樣品溶液和空白樣品溶液,待測。

    1.3.4對根皮素具有轉(zhuǎn)化作用的菌種篩選[11-12]

    按照“1.3.1”項(xiàng),每種真菌的給藥樣品溶液和空白樣品溶液分別進(jìn)樣10 μL,對比分析每種菌種的給藥組、空白組及根皮素標(biāo)準(zhǔn)品圖譜,從24種真菌中篩選出對根皮素有轉(zhuǎn)化作用的真菌。

    1.3.5對有轉(zhuǎn)化作用的4種真菌進(jìn)行消耗率的測定

    將已保存的斜面菌種,在無菌條件下注入無菌水10 mL,刮菌苔,用無菌4層紗布過濾,用力振蕩濾液,制成孢子懸液。經(jīng)血球計(jì)數(shù)板對孢子懸液計(jì)數(shù),孢子數(shù)數(shù)量級應(yīng)控制在104CFU/mL。因此,4種真菌的孢子懸液濃度近似一致,其具有可比性。分別將此濃度的四種真菌孢子懸液1 mL接入到液體土豆培養(yǎng)基中,其后處理同“1.3.3”。

    2 結(jié)果與分析

    2.1根皮素含量測定[13-15]結(jié)果

    2.1.1系統(tǒng)適用性試驗(yàn)

    取“1.3.2”中的對照品溶液進(jìn)樣10 μL,注入液相色譜儀中,按“1.3.1”下色譜條件進(jìn)行測定,色譜圖見圖1。

    圖1 根皮素的高效液相色譜圖Fig.1 HPLC chromatograms of phloretin

    根皮素的保留時(shí)間為81.451 min,理論塔板數(shù)按根皮素峰面積計(jì)算為370 032,拖尾因子1.237。

    2.1.2標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作

    精密量取標(biāo)準(zhǔn)品溶液0.5、1.0、4.0、5.0、8.0 mL,置于10mL容量瓶中,加甲醇定容至刻度,搖勻。按“1.3.1”色譜條件分別進(jìn)樣10 μL進(jìn)行測定。以對照品峰面積Y/mAU為縱坐標(biāo),對照品質(zhì)量濃度X/(mg/mL)為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得根皮素回歸方程為:Y=3.5×107X+ 1.5×106(R2=0.999 9)。結(jié)果表明在0.067 1 mg/mL~1.073 6 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

    2.1.3精密度試驗(yàn)

    取“1.3.2”項(xiàng)中的根皮素對照品溶液按照“1.3.1”連續(xù)進(jìn)樣6次,測得根皮素對照品峰面積及RSD值。RSD值為0.88 %,結(jié)果表明儀器精密度良好。

    2.1.4穩(wěn)定性試驗(yàn)

    取同一批樣品,按“1.3.3”中樣品溶液測定方法操作,分別在0、2、4、6、8、10h進(jìn)行測定,其RSD為1.12%,結(jié)果表明樣品溶液在10 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

    2.2根皮素微生物轉(zhuǎn)化結(jié)果

    2.2.1對根皮素具有轉(zhuǎn)化作用的菌種篩選結(jié)果

    按照“1.3.1”色譜條件,將各真菌的給藥樣品溶液與空白樣品溶液分別進(jìn)樣10 μL,把每種真菌的給藥組、空白組及根皮素標(biāo)準(zhǔn)品圖譜進(jìn)行比對,分析給藥組除根皮素峰是否比空白組多出明顯的峰。經(jīng)對比分析,從24種真菌中篩選出4種對根皮素有轉(zhuǎn)化作用的真菌,菌種編號分別為AS 3.2450、AS 3.1858、AS 3.2882、AS 3.510,4種真菌除根皮素峰外比空白都多出了明顯的峰。這4種真菌對根皮素的轉(zhuǎn)化測定的HPLC圖譜見圖2。

    圖2 4種真菌對根皮素轉(zhuǎn)化的液相圖Fig.2 HPLC of biotransformation of phloretin by four kinds of fungi

    2.2.2加樣回收率試驗(yàn)

    取已知含量的轉(zhuǎn)化后供試品,分別精密加入相當(dāng)于原供試品質(zhì)量的80 %、100 %、120 %根皮素對照溶液,按“1.3.3”方法制備供試溶液,按“1.3.1”色譜條件分別進(jìn)樣測量峰面積,計(jì)算測得量及其回收率,結(jié)果見表2。

    表2 根皮素的加樣回收率Table 1 Results of phloretin recovery

    由表2可知,加樣回收率分別為101.2 %、103.7 %、103.2 %,平均回收率102.7 %,RSD值為1.30。試驗(yàn)結(jié)果表明,加樣回收率良好。

    2.2.3重現(xiàn)性試驗(yàn)

    按照“1.3.1”的色譜條件,分別對有轉(zhuǎn)化作用的菌種AS 3.2450、AS 3.1858、AS 3.2882、AS 3.510的加藥樣品進(jìn)行液相分析,每種真菌平行操作6份,測得這4種真菌的剩余根皮素峰面積的RSD值分別為0.72 %、0.86 %、1.29 %、1.68 %,結(jié)果表明重現(xiàn)性良好。

    2.2.4培養(yǎng)基中根皮素回收率的測定

    分別向4組液體土豆培養(yǎng)基中加入2 mL根皮素甲醇溶液(質(zhì)量濃度為15 mg/mL),按照“1.3.3”樣品的制備方法培養(yǎng),萃取,減壓濃縮至干,用色譜甲醇溶解并定容于25 mL容量瓶中。分別取適量用0.45 μm濾膜過濾,進(jìn)樣10 μL,測得根皮素的峰面積,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線的回歸方程計(jì)算出根皮素的含量。根皮素的回收率/%=根皮素質(zhì)量/加藥量×100,結(jié)果見表3。

    表3 培養(yǎng)基中根皮素的回收率Table 3 The loss of phloretin in medium(n=3)

    由表3可知,培養(yǎng)基中根皮素的平均回收率為69.68%。該法能夠準(zhǔn)確測定培養(yǎng)基中根皮素的回收率。

    2.2.5根皮素消耗率的測定

    分別取4種真菌的給藥組供試液適量,在“1.3.1”色譜條件下進(jìn)樣分析,測得根皮素平均峰面積(n=3),根據(jù)回歸方程求得剩余的根皮素的質(zhì)量,算出消耗率。消耗率/%=(加藥量-剩余量/回收率)/加藥量×100,結(jié)果見表4。

    表4 根皮素消耗率結(jié)果Table 4 The results of consumption rate

    由表4試驗(yàn)結(jié)果顯示,本試驗(yàn)所篩選出的4種真菌對根皮素有一定的消耗作用,但若要獲得該些菌種生物轉(zhuǎn)化根皮素的最優(yōu)條件,有待于更進(jìn)一步研究。

    3 討論

    1)通過試驗(yàn)確定4種真菌(菌種編號分別為:AS 3.2450、AS 3.1858、AS 3.2882、AS 3.510)對根皮素具有轉(zhuǎn)化作用,并利用HPLC法測定其消耗率,為深入研究其轉(zhuǎn)化產(chǎn)物奠定基礎(chǔ)。當(dāng)液體培養(yǎng)基中底物濃度為0.3 mg/mL時(shí),利用RP-HPLC法測定了4種真菌對根皮素的消耗率分別為60.46 %,43.67 %,91.63 %,40.32 %。試驗(yàn)結(jié)果顯示不同菌種對根皮素的消耗率存在差異性,其原因可能是菌種自身代謝酶的差異。

    2)在微生物轉(zhuǎn)化試驗(yàn)中,菌種的篩選一般選用TLC法,該方法簡便但靈敏度低。作者通過HPLC法對根皮素微生物轉(zhuǎn)化進(jìn)行檢測,簡便快速、靈敏、準(zhǔn)確。

    3)對比加藥組和空白組的液相圖譜,理論上兩組圖譜除根皮素及轉(zhuǎn)化峰外應(yīng)該和空白組圖譜一致,但是在菌種篩選過程中,有的空白組圖譜中的色譜峰比給藥組圖譜的峰多,其原因可能是加入根皮素對真菌的生長有所影響,所以和空白組有一定的差別。同時(shí),培養(yǎng)基組成、培養(yǎng)條件(溫度、搖床轉(zhuǎn)速)、轉(zhuǎn)化時(shí)間、底物加入量等對微生物轉(zhuǎn)化的影響也是很大的,這些因素不僅影響消耗率,還可能對轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的種類有所影響。在后續(xù)研究過程中,本課題組將深入研究根皮素的轉(zhuǎn)化產(chǎn)物及轉(zhuǎn)化條件,以期獲得該菌株生物轉(zhuǎn)化根皮素的最優(yōu)條件。

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    Biotransformation Screen of Phloretin and Determination of Consumption Rate

    CUI Yu1,2,ZHAO Yan-min2,WEI Xiao-cong2,LIU Dai-lin1,*
    (1. Tianjin University of Traditional Chinese Medicine,Tianjin 300193,China;2. Logistics College of Chinese People's Armed Police Forces,Tianjin 300162,China)

    Abstract:To study 24 species of fungi on the transformation of phloretin and determine the consumption rate of activated fungi by RP-HPLC. The biotransformation reactions of phloretin were identified by RP-HPLC. The optimum HPLC conditions were as follows:column was Welchrom C(18)(4.6 mm×250 mm,5 μm). Gradient elution with mobile phase A:HAC∶H2O =2∶98(volume ratio)and mobile phase B:MeCN∶H2O∶HAC=80∶19.6∶0.4 (volume ratio)in the gradient program at a flow rate of 1.0 mL/min was utilized after optimization. The detection wavelength was set at 280 nm. The calibration curve was Y= 3.5×107X + 1.5×106(R2= 0.999 9)with the linear in the range of 0.067 1 mg/mL~1.073 6 mg/mL for phloretin. The results showed that phloretin was biotransformed by four kinds of fungi and the consumption rate were 60.46 %,43.67 %,91.63 %,40.32 % when the concentration of phloretin in medium was 0.3 mg/mL. The results indicated that this detective method was stable and accurate for qualitation and quantitation of the microbial conversation products of phloretin.

    Key words:phloretin;RP-HPLC;biotransformation;consumption rate

    收稿日期:2015-02-18

    *通信作者:劉岱琳(1973—),女(漢),教授,研究方向:天然產(chǎn)物活性成分研究。

    作者簡介:崔雨(1990—),女(漢),碩士研究生,研究方向:天然產(chǎn)物活性成分研究。

    基金項(xiàng)目:國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31201345);中國博士后基金項(xiàng)目(2014M562674);天津市自然科學(xué)基金項(xiàng)目(13JCYBJC24400)

    DOI:10.3969/j.issn.1005-6521.2016.08.040

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