葛 熙,趙 枰,周 峰,胡忠圣
(南通大學(xué)第二附屬醫(yī)院檢驗(yàn)科,江蘇南通 226001)
?
·臨床研究·
慢性粒細(xì)胞白血病患者外周血Bmi1 mRNA的表達(dá)水平
葛熙,趙枰,周峰,胡忠圣
(南通大學(xué)第二附屬醫(yī)院檢驗(yàn)科,江蘇南通 226001)
摘要:目的采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR(Rt-PCR)檢測(cè)Bmi1基因表達(dá)的方法,了解慢性粒細(xì)胞白血病(CML)患者外周血Bmi1基因的表達(dá)水平。方法采用Rt-PCR方法檢測(cè)CML患者41例和10例健康人外周血中Bmi1基因的表達(dá)水平。結(jié)果Rt-PCR的結(jié)果顯示,基因Bmi1在健康人、CML患者慢性期、加速期及急變期中的表達(dá)相對(duì)值分別為0.544±0.233、1.624±0.632、3.021±0.923及3.561±1.005。CML患者中Bmi1的表達(dá)水平明顯高于健康人(P<0.05),加速期及急變期中Bmi1的表達(dá)水平明顯高于慢性期,急變期Bmi1的表達(dá)水平明顯高于加速期,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)論Bmi1基因在CML外周血中有高水平的表達(dá),是監(jiān)測(cè)CML患者病情進(jìn)展及判斷預(yù)后有價(jià)值的分子標(biāo)記物。
關(guān)鍵詞:白血病;Bmi1;實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)
慢性粒細(xì)胞白血病(CML)是血液系統(tǒng)惡性腫瘤之一,起源于造血干細(xì)胞。臨床上一般分為三期:慢性期、加速期和急變期。CML是臨床治療過程中引起死亡的主要原因。關(guān)于CML 急變的機(jī)制仍不明確。Bil1基因是干細(xì)胞自我更新的關(guān)鍵調(diào)控因子,在血液腫瘤發(fā)病機(jī)制和治療等方面具有較高的潛在價(jià)值,Bmi1基因表達(dá)增高的病例更易轉(zhuǎn)變?yōu)榧毙园籽1]。如何準(zhǔn)確測(cè)定外周血BMI1基因的表達(dá)水平以指導(dǎo)臨床治療,是許多臨床工作者關(guān)注的問題,因此,我們采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR(Rt-PCR)技術(shù)檢測(cè)了CML患者外周血Bmi1基因的表達(dá)水平,現(xiàn)報(bào)道如下。
1資料與方法
1.1一般資料2010年1月至2014年12月在南通大學(xué)第二附屬醫(yī)院就診的門診和住院部CML患者41例納入研究組,其中男29例,女12例,年齡42~79歲。所有患者均經(jīng)臨床、血象、骨髓象及組織化學(xué)染色檢查,符合1981年FAB協(xié)作組提出的分類診斷標(biāo)準(zhǔn)。其中急性變9例,加速期6例,慢性期26例。同期本院體檢健康志愿者10例納入對(duì)照組,其中男7例,女3例,年齡48~70歲。
1.2方法
1.2.1RNA的提取及cDNA合成采集2 mL靜脈血,乙二胺四乙酸(EDTA)抗凝,加于等量的人淋巴細(xì)胞分離液上,以2 000 r/min離心15 min,分離單個(gè)核細(xì)胞,用吸管吸取,提取外周血總RNA(提取總RNA 試劑盒為美國Invitrogen公司提供),測(cè)A260、A280吸光度值,計(jì)算出RNA水平,使用Promega逆轉(zhuǎn)錄劑盒,按說明將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,-20 ℃凍存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.2Bmi1基因表達(dá)的檢測(cè)Rt-PCR 1 μL 稀釋的模板,2 μL引物對(duì)(5 μM),7 μL 無菌去離子水,反應(yīng)混合溶液共10 μL。每種引物,每種模板,都做3個(gè)平行管反應(yīng)。引物設(shè)計(jì) Bmi1 引物對(duì)為5′-ATT CTA CCA GTC CCG AGG TTT G-3′,5′-GGT TCA ACT GCT CAT CAT AGC G-3′;內(nèi)參基因GAPDH引物對(duì)為,5′-CAT CCA TGA CAA CTT TGG TAT C-3′,5′-CCA TCA CGC CAC AGT TTC-3′。Rt-PCR 反應(yīng)程序:95 ℃10 min,95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min。循環(huán)40次。取3個(gè)平行孔Ct比值的平均數(shù),計(jì)算同一個(gè)樣品Bmi1的Ct值與GAPDH的Ct值比值,作圖時(shí)將正常對(duì)照的Ct比值平均數(shù)設(shè)為1.0,計(jì)算出所有樣品的相對(duì)值后制圖。儀器為Applied Biosystems,ABI7500 型Rt-PCR儀。
2結(jié)果
41例CML患者Bmi1基因的表達(dá)水平顯示,Bmi1基因表達(dá)水平在急變期時(shí)高于加速期,慢性期時(shí)表達(dá)水平最低,3組間的表達(dá)水平比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見表1。
表1 41例CML患者Bmi1基因的表達(dá)水平
*:P<0.05,與對(duì)照組比較;#:P<0.05,與研究組慢性期比較;△:P<0.05,與研究組加速期比較。
3討論
1991年荷蘭癌癥中心的學(xué)者們?cè)趯?duì)小鼠淋巴瘤進(jìn)行研究時(shí),發(fā)現(xiàn)了癌基因——Bmi1基因,開始被認(rèn)為是癌基因C-myc的協(xié)同基因,把它歸屬于多梳基因PcG家族;進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)人類的Bmi1基因定位于10號(hào)染色體的短臂1區(qū)3帶(10p13),該區(qū)域與惡性淋巴瘤和兒童白血病的染色體移位有關(guān),研究還發(fā)現(xiàn)Bmi1基因與干細(xì)胞成長(zhǎng)調(diào)控,細(xì)胞分化及惡性病變密切相關(guān)[2-7]。此外,Bmi1基因在細(xì)胞周期的調(diào)節(jié)、細(xì)胞的永生化和衰老方面也發(fā)揮著重要作用[8-9]。Bmi1基因還可通過作用于PcG 家族中的某些靶位,使靶基因轉(zhuǎn)錄沉默。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明,首先Bmi1表達(dá)陽性的小鼠其外周血中白血病細(xì)胞的數(shù)量明顯高于Bmi1表達(dá)陰性的小鼠[10];其次,將Bmi1缺失小鼠的骨髓細(xì)胞移植給受者小鼠,這些小鼠不發(fā)生急性髓系白血病,然而將Bmi1轉(zhuǎn)染給原本Bmi1缺失的小鼠骨髓細(xì)胞中,然后再移植給受者小鼠,受者小鼠則可發(fā)生急性髓系白血病,上述研究表明Bmi1對(duì)白血病干細(xì)胞的增殖和其致白血病的能力具有決定性作用。研究還發(fā)現(xiàn)[11-12],急性白血病患者的骨髓中Bmi1的表達(dá)水平明顯高于健康人,尤其是在急性髓細(xì)胞白血病微分化型的患者骨髓中,Bmi1的表達(dá)水平更高。通過實(shí)時(shí)R-PCR的方法檢測(cè),發(fā)現(xiàn)CML患者外周血中Bmi1基因的表達(dá)具有一定的規(guī)律性:急性變患者表達(dá)相對(duì)值在5的數(shù)量級(jí),加速期患者其表達(dá)相對(duì)值在2的數(shù)量級(jí),經(jīng)化療后轉(zhuǎn)入慢性期的患者其表達(dá)的相對(duì)值僅小于1的數(shù)量級(jí),3者之間依次相差1~2個(gè)數(shù)量級(jí),表明Bmi1基因在CML患者外周血中的表達(dá)相對(duì)值是隨其白血病細(xì)胞數(shù)的減少而降低的。在CMI治療過程的不同時(shí)期,Bmi1基因的表達(dá)相對(duì)值存在明顯差異,因而外周血中Bmi1基因檢測(cè)可作為監(jiān)測(cè)CML病情進(jìn)展及判斷預(yù)后的有價(jià)值的分子標(biāo)記物。
參考文獻(xiàn)
[1]Mihara K,Chowdhury M,Nakaju N,et al.Bmi-1 is useful as a novel molecular marker for predicting progression of myelodysplastic syndrome and patient prognosis[J].Blood,2006,107(1):305-308.
[2]陳鳳花,王琳,胡麗華.原癌基因BMI-1的研究進(jìn)展[J].臨床血液學(xué)雜志:輸血與檢驗(yàn)版,2007,4(4):189-191.
[3]Sauvageau M,Sauvageau G.Polycomb group genes:keeping stem cell activity in balance[J].PLoS Biol,2008,6(4):113.
[4]Takihara Y.Role of polycomb-group genes in sustaining activities of normal and malignant stem cells[J].Int J Hematol,2008,87(1):25-34.
[5]Lobo NA,Shimono Y,Qian D,et al.The biology of Cancer stem cells[J].Annu Rev Cell Dev Biol,2007,23(4):675-699.
[6]Yong AS,Stephens N,Weber G,et al.Improved outcome following allogeneic stem cell transplantation in chronic myeloid leukemia is associated with higher expression of BMI-1 and immune responses to BMI-1 protein[J].Leukemia,2011,25(4):629-637.
[7]Bhattacharyya J,Mihara K,Yasunaga S,et al.BMI-1 expression is enhanced through transcriptional and posttranscriptional regulation during the progression of chronic myeloid leukemia[J].Ann Hematol,2009,88(4):333-340.
[8]Jiang Y,Su B,Meng X,et al.Effect of siRNA-mediated silencing of Bmi-1 gene expression on HeLa cells[J].Cancer Sci,2010,101(2):379-386.
[9]Silva J,García JM,Peía C,et al.Implication of polycomb members Bmi-1,Mel-18,and Hpc-2 in the regulation of p16INK4a,p14ARF,h-TERT,and c-Myc expression in primary breast carcinomas[J].Clin Cancer Res,2006,12(23):6929-6936.
[10]Lessard J,Sauvageau G.Bmi-1 determines the proliferative capacity of normal and leukaemic stem cells[J].Nature,2003,423(6937):255-260.
[11]Sawa M,Yamamoto K,Yokozawa T,et al.BMI-1 is highly expressed in M0-subtype acute myeloid leukemia[J].Int J Hematol,2005,82(1):42-47.
[12]Shen Q,Liu S,Hu J,et al.The differential expression pattern of the BMI-1,SALL4 and ABCA3 genes in myeloid leukemia[J].Cancer Cell Int,2012,12(1):42.
(收稿日期:2015-11-20)
DOI:10.3969/j.issn.1673-4130.2016.03.041
文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A
文章編號(hào):1673-4130(2016)03-0382-02