孟祥黔,曾泳梅,劉思瑤,黃軍,周建明,鐘影
(四川省成都市錦江區(qū)婦幼保健院生殖醫(yī)學(xué)中心,成都 610016)
不孕不育夫婦中約40%因男方因素所致,其中50%不育男性的精子形態(tài)異常,男性不育可能與精子形態(tài)異常有關(guān)。在形態(tài)異常的精子中,精子頭部異常是精子形態(tài)異常的主要類型,約占70%[1-3]。其中,精子空泡頭異常比例最高,其次是梨形頭和小頭異常,雙頭和大頭異常的發(fā)生率最低。截至目前,研究人員普遍認(rèn)為精子空泡與精子活力和男性生育能力息息相關(guān),尤其是精子頭部核區(qū)域出現(xiàn)的空泡,認(rèn)為其是男性精子畸形的表現(xiàn)[4]。
自1992年卵胞漿內(nèi)單精子注射(ICSI)技術(shù)誕生以來,傳統(tǒng)的ICSI往往在200~400倍鏡下挑選所謂的“好精子”注射入卵,隨著科學(xué)技術(shù)的不斷發(fā)展,一種新的技術(shù)誕生了,即活精子細(xì)胞器形態(tài)學(xué)檢查(MSOME)[5]。該技術(shù)是利用高質(zhì)量的Nomarshi光學(xué)系統(tǒng)實時檢查精子動態(tài),通過數(shù)字化處理圖像,放大倍數(shù)可以超過6 000倍,并經(jīng)電腦顯示器放大系統(tǒng)選擇形態(tài)好的精子。該技術(shù)最大的優(yōu)點就是對活動精子進(jìn)行實時觀察,且對精子無任何損傷性。相比而言,傳統(tǒng)ICSI對挑選的精子進(jìn)行評估時具有一定的局限性,僅僅評估頂體和核[6]。而利用精子放大系統(tǒng)則能更好地觀察精子形態(tài),可以清晰地觀察到精子頭部的細(xì)微結(jié)構(gòu)。早期對精子細(xì)微結(jié)構(gòu)的研究發(fā)現(xiàn),精子核區(qū)域常常出現(xiàn)至少1個空泡[7],只有在高倍鏡下才能發(fā)現(xiàn)精子頂體到核區(qū)域的空泡[8]。關(guān)于精子空泡的起源機制目前仍不明確。有研究認(rèn)為精子空泡是一種正常的自然現(xiàn)象[8];亦有研究表明精子空泡起源于精子頂體,同時暗示精子頂體的存在[9];但其他研究人員對圓頭精子進(jìn)行觀察時,在精子頭部同樣也發(fā)現(xiàn)了空泡,從而提示空泡的起源并非頂體。到目前為止,人類對精子頭部空泡是否導(dǎo)致男性不育及其潛在的其他作用尚不明確。
本研究利用精子MSOME 放大系統(tǒng)對ICSI患者的精子放大6 000倍后進(jìn)行觀察,并對含有空泡的精子進(jìn)行拍照,測量空泡直徑及其位置,隨后將不同類別的精子注射入卵并單獨培養(yǎng),進(jìn)一步了解精子空泡對胚胎發(fā)育、胚胎移植后臨床結(jié)局的影響。研究結(jié)果報告如下。
選擇2014年1~11月在我院接受輔助生殖治療的患者57例,其中9例為重復(fù)周期。所有患者均由同一位醫(yī)生接診治療,均行常規(guī)長方案促排卵并常規(guī)ICSI助孕治療。
ICSI指征[10]:(1)嚴(yán)重少、弱、畸精子癥;(2)不可逆的梗阻性無精子癥;(3)生精功能障礙(遺傳缺陷疾病所致者除外);(4)男性免疫性不育;(5)體外受精(IVF)失??;(6)精子頂體異常。
1.卵母細(xì)胞的采集與處理:所有患者均使用常規(guī)長方案促排卵:黃體中期予以促性腺激素釋放激素激動劑(GnRH-a,達(dá)必佳,F(xiàn)erring,瑞士)0.05mg肌注,14d后予以重組卵泡刺激素(rFSH,果納芬,Merck Serono,德國)150~300U 對卵巢進(jìn)行刺激,B超監(jiān)測卵泡生長發(fā)育狀況,待卵泡直徑大于18mm后,給予重組人絨毛膜促性腺激素(rHCG,艾澤,Merck Serono,德國)250 mg肌注,36h后在B超介導(dǎo)下經(jīng)陰道穿刺取卵。將獲得的卵母細(xì)胞于透明質(zhì)酸酶(Hyaluronidase,80 U/ml,Sage,美國)中消化去除顆粒細(xì)胞后,置于含Vitrolife序貫培養(yǎng)液(G-IVF,Vitrolife,瑞典)的培養(yǎng)皿中放置37℃、6%CO2的培養(yǎng)箱(Thermo Scientific Forma 3110,美國)培養(yǎng)備用。
2.精子準(zhǔn)備:采用梯度離心法洗滌精液,將洗滌好的精液加入精子緩沖液(Spermrinse,Vitrolife,瑞典)中混勻后置于37℃、6%CO2的培養(yǎng)箱中備用。
3.常規(guī)ICSI:將處理后的精液吸取少許加入注射皿中的聚乙烯吡咯烷酮(PVP)里,在200~400倍顯微鏡下挑選形態(tài)較好的精子(挑選要求:精子頂體完整、形態(tài)正常;精子頭部外部形態(tài)完好無損;精子頸部形態(tài)正?;蝾i部液滴較?。痪游膊啃螒B(tài)正常且無斷缺;盡量挑選前行精子;如果死精子較多時可選微動精子或尾部彎曲的精子),進(jìn)行制動(精子制動時,制動位點應(yīng)在精子尾部靠近精子頭部的1/3處,注射針下壓后橫向快速向右拉動注射針,待看到精子尾部明顯折痕時,表示制動完成),制動1~2次即可,然后放置PVP標(biāo)記過的位置,之后把準(zhǔn)備好的卵母細(xì)胞轉(zhuǎn)入注射皿中的緩沖液滴(G-mops,Vitrolife,瑞典)中,注射時,卵母細(xì)胞的極體調(diào)整為6點或12點方向進(jìn)行注射。
4.精子放大系統(tǒng)的使用:在200~400 倍下挑選精子并確定后,注射前利用精子Nomarshi光學(xué)系統(tǒng)(OCTAX CytoScreenTM,德國)行MSOME 對精子進(jìn)行放大觀察,同時對頭部有空泡的精子進(jìn)行拍照,測量空泡直徑并觀察空泡所在位置。整個實時觀察過程中對精子不造成任何損傷,觀察結(jié)束后按照ICSI的常規(guī)流程進(jìn)行注射,注射時按照精子拍照時的順序一一對應(yīng)地將精子注射入卵母細(xì)胞,隨后按照注射順序進(jìn)行單獨培養(yǎng),以便觀察精子形態(tài)對胚胎發(fā)育的影響。
5.胚胎培養(yǎng)及質(zhì)量評估:顯微注射后的卵母細(xì)胞均置于序貫培養(yǎng)液(卵裂期胚胎用G-1 液,囊胚 用G-2 液,Vitrolife,瑞 典)中,在37℃、6%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。顯微注射16~20h后觀察受精情況,出現(xiàn)兩原核(2PN)為正常受精。采用本實驗室常規(guī)評分法對胚胎進(jìn)行評分,第3 天(D3)胚胎采用WIH 評分法[11],囊胚采用Gardner評 分 法[12]。
6.胚胎移植與妊娠結(jié)果判斷:選擇優(yōu)質(zhì)胚胎或囊胚1~2個在B超下進(jìn)行胚胎移植,移植后4周超聲檢查顯示子宮腔內(nèi)可見孕囊及胎心搏動者確定為臨床妊娠。
采用SPSS 19.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,實驗結(jié)果以百分率(%)表示,采用卡方檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
在精子放大系統(tǒng)下對精子行MSOME 觀察精子形態(tài),對頭部有空泡的精子進(jìn)行拍照(圖1、圖2),測量空泡直徑并觀察空泡所在位置。
觀察空泡精子和無空泡精子注射后胚胎發(fā)育的情況,發(fā)現(xiàn)兩組的胚胎冷凍率、妊娠率有顯著性差異(P<0.05),其余各實驗室指標(biāo)比較均無顯著性差異(P>0.05),無空泡組的正常受精率和胚胎著床率略高于空泡組,妊娠者中無空泡精子者比例較高(表1)。
圖1 空泡位于頂體+核位置 ×6 000
圖2 空泡位于精子頂體位置 ×6 000
比較精子頭部空泡的位置與胚胎發(fā)育的關(guān)系。由于兩組樣本量的原因,因此實驗室各指標(biāo)均無顯著性差異(P>0.05)(表2)。
本次研究中所觀察到的精子空泡直徑均低于2μm。3組不同空泡直徑的精子注射入卵后實驗室各指標(biāo)比較均無顯著性差異(P>0.05)(表3)。
表1 空泡精子和無空泡精子注射后各實驗室指標(biāo)比較[n(%)]
表2 不同空泡位置對胚胎發(fā)育的影響[n(%)]
表3 不同空泡直徑對胚胎發(fā)育的影響[n(%)]
關(guān)于精子空泡的起源到目前為止仍不明確,因此精子空泡引起了眾多研究者的興趣[13]。精子空泡是否僅出現(xiàn)在不育男性精子中,或者畸形精子癥患者中,或者如少數(shù)研究者認(rèn)為的那樣,精子空泡是一種自然現(xiàn)象?為了解決上述的疑問,Watanabe等[14]于2011年對不同男性精液進(jìn)行分析,結(jié)果顯示,具有生育能力的男性精液中,95.80%的精子頭部含有空泡。其他研究者對不育男性精液的研究發(fā)現(xiàn),在其他指標(biāo)正常的情況下,精子空泡分別占97.70%[8]和98.40%[15];不育男性精液指標(biāo)不正常的 情 況 下,空 泡 精 子 分 別 占98.80%[8]和99.40%[14]。最近,研究者對不育2年以上、接受輔助生殖治療的患者51例和有生育能力者50例的精液進(jìn)行比較分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn),精子空泡數(shù)量、位置均無顯著性差異[16]。在普遍認(rèn)為男性精子中有空泡出現(xiàn)的基礎(chǔ)上,人們開始關(guān)注精子空泡大小,圍繞“大空泡”(指空泡體積占精子頭部>4%)展開了一系列研究,并獲得不同結(jié)果。較早對ICSI患者的研究表明,“大空泡”在精子中的比例為30% ~40%[11]。Monqaut等[17]研 究 表 明,“大 空 泡”占 不育男性精子比例的61.8%。另外有研究者將“大空泡”定義為空泡占頭部體積的50%,在此基礎(chǔ)上研究大空泡所占比例,結(jié)果分別為(25.2±19.2)%[18]或(30.1±17.8)%[19]。上述研究中,精子空泡大小僅僅是依靠操作者的主觀評估。與此同時,研究者對精子空泡進(jìn)行精確測量得知,有生育能力男性精液中,“大空泡”(指空泡體積占精子頭部>13%)精子占(9.2±7.2)%,少弱畸精子癥患者中,該類精子占(38±5.1)%[20]。
隨著MSOME 技術(shù)與ICSI技術(shù)的相互結(jié)合,胞漿內(nèi)選擇性單精子注射(IMSI)技術(shù)就此誕生并逐步取得進(jìn)展。該技術(shù)對精子進(jìn)行實時觀察并放大6 000倍,放大后能觀察到傳統(tǒng)ICSI時400倍鏡下所挑選精子時無法觀察到的細(xì)微結(jié)構(gòu),如精子空泡。同時,精子空泡相關(guān)研究也表明,精子空泡與受精低下[21]、低 的 線 粒 體 膜 電 位[22]、高 的 染 色 體 異 常[22]、精子DNA 損傷[23]有關(guān)。然而,精子空泡與胚胎發(fā)育之間的關(guān)系仍不明確。本中心借助精子放大系統(tǒng)對精子拍照并運用軟件測量精子空泡直徑,進(jìn)一步研究精子空泡對正常受精、D3優(yōu)胚及可用囊胚的形成以及移植后患者臨床結(jié)局的影響。本研究結(jié)果表明,無空泡組的正常受精率略高于空泡組(74.1%vs.71.4%),但無統(tǒng)計學(xué)差異,這可能與空泡組樣本較少存在一定的偏倚有關(guān);另外,本次研究中所觀察到的精子空泡直徑均低于2μm,可能對正常受精結(jié)果并不造成顯著影響。Greco等[24]對男性精子進(jìn)行分類,第1類(精子頭部形態(tài)正常,無空泡或空泡體積<頭部的4%)和第2類(精子頭部形態(tài)正?;蝾^部最多含2個空泡,一個<頭部的4%,另一個>頭部的4%)為第1組,第3類(頭部形態(tài)正常伴3個及以上小空泡,空泡體積<頭部的4%)和第4類(精子頭部形態(tài)異常,有大空泡和小空泡)為第2組,兩組的受精率(73.7%vs.66.9%)比較,無顯著性差異。
精子空泡在注射入卵后對患者胚胎發(fā)育的影響也引起研究者們的關(guān)注。有研究顯示,由于精子的個體形態(tài)差異,導(dǎo)致胚胎具有不同的發(fā)育潛力,精子頭部無空泡或者少于2個小空泡相比其他形態(tài)精子而言,囊胚形成率較高[25]。亦有研究認(rèn)為精子空泡的存在影響囊胚的形成[26]。2014年,Vingris等[27]對72對行輔助生殖治療夫婦的14 400條精子進(jìn)行分組分析,研究發(fā)現(xiàn)精子空泡數(shù)低于2個的精子比例與囊胚形成、胚胎種植率呈正相關(guān),且無空泡的精子流產(chǎn)率較低。
為了能更好地觀察精子空泡對胚胎發(fā)育的影響,本研究將精子注射入卵后進(jìn)行了單獨培養(yǎng),觀察胚胎發(fā)育情況,結(jié)果顯示雖然各組間比較無顯著性差異,但無空泡組的可用囊胚形成率和D3 優(yōu)胚率均高于空泡組,而進(jìn)一步將空泡精子進(jìn)行分組后發(fā)現(xiàn),空泡直徑分別為<1μm、1~1.5μm、>1.5~2μm的精子注射入卵后,3組的正常受精率、D3優(yōu)胚率、可用囊胚形成率均無顯著性差異,這一方面可能與本研究所納入的樣本量較少有關(guān),另一方面可能與在低倍鏡下挑選精子時,往往對存在清晰可見的大空泡精子放棄使用,因此本研究所納入的精子空泡直徑均較小有關(guān)。Watanabe 等[14]在400 倍下,觀察不育和有生育能力男性的精子形態(tài)發(fā)現(xiàn),空泡>1.5μm 所占比例分別是4.6%和4.2%。有研究顯示,精液指標(biāo)正常和不正常男性精子空泡大小的平 均 值:前 者 空 泡 平 均 大 小 為1.49 μm[8],1.8μm[15];后 者 為1.59μm[8],1.9μm[15]。Setti等[28]對60 對接受ICSI治療患者的549 枚胚胎進(jìn)行觀察,結(jié)果發(fā)現(xiàn),精子大空泡的出現(xiàn)會影響受精卵的卵裂、D3優(yōu)胚、囊胚的形成以及形成囊胚的滋養(yǎng)層細(xì)胞和內(nèi)細(xì)胞團(tuán)的細(xì)胞數(shù),同時還建議大空泡的體積應(yīng)該低于精子頭部的24.5%,當(dāng)大空泡體積低于19.5%時,所形成的囊胚質(zhì)量較高。2013 年,Knez等[29]在研究中首次運用精子放大系統(tǒng)和胚胎動態(tài)觀察系統(tǒng),發(fā)現(xiàn)無空泡精子形成的胚胎卵裂至4細(xì)胞和形成囊胚均要早于大空泡精子。
相關(guān)研究還顯示,精子空泡的存在不會影響卵母細(xì)胞的受精和受精卵的早期卵裂,但是D3 胚胎移植后,患者的臨床結(jié)局和活產(chǎn)率有顯著性差異,且IMSI技術(shù)的運用能提高臨床妊娠率和胚胎種植率[30-31]。本研究結(jié)果顯示,無空泡組與空泡組D3胚胎移植后的著床率(40.3%vs.22.2%)比較無顯著性差異,但臨床妊娠率(77.3%vs.22.7%)比較有顯著性差異,研究結(jié)果與前述研究有所不同,可能與樣本量較小、精子空泡直徑均較小有關(guān)。本研究中無空泡組的臨床妊娠患者無一例流產(chǎn),胚胎質(zhì)量亦相對好于空泡組,這與之前研究報道精子放大系統(tǒng)能有效提高胚胎質(zhì)量[32]、增加臨床妊娠率[33]、相比傳統(tǒng)ICSI周期更能降低流產(chǎn)率[34-35]的結(jié)果相似。
綜上所述,精子頭部空泡直徑低于2μm 時,與無空泡精子相比,兩者注射入卵后,僅胚胎冷凍率和妊娠率有顯著性差異,而胚胎著床率和其余實驗室指標(biāo)均無顯著性差異。但樣本量較少是本次研究存在的主要問題,后續(xù)研究應(yīng)加大樣本量以驗證精子空泡對胚胎著床率和臨床妊娠率的影響,并做好長期的隨訪工作以觀察妊娠后新生兒的健康狀況,為臨床應(yīng)用提供一定參考。
[1] Check ML,Bollendorf A,Check JH,et al.Reevaluation of the clinical importance of evaluating sperm morphology using strict criteria[J].Arch Androl,2002,48:1-3.
[2] Cooper TG,Yeung CH,F(xiàn)etic S,et al.Cytoplasmic droplets are normal structures of human sperm but are not well preserved by routine procedures for assessing sperm morphology[J].Hum Reprod,2004,19:2283-2288.
[3] 韓樹標(biāo),韓偉,黃國寧.短時受精結(jié)合早期補救ICSI技術(shù)的臨床應(yīng)用[J].生殖醫(yī)學(xué)雜志,2014,23:211-213.
[4] Bartoov B,Eltes F,Pansky M,et al.Improved diagnosis of male fertility potential via a combination of quantitative ultramorphology and routine semen analyses[J]. Hum Reprod,1994,9:2069-2075.
[5] Bartoov B,Berkovitz A,Eltes F.Selection of spermatozoa with normal nuclei to improve the pregnancy rate with intracytoplasmic sperm injection[J].N Engl J Med,2001,345:1067-1068.
[6] Baccetti B,Collodel G,Piomboni P.Apoptosis in human ejaculated sperm cells(notulae seminologicae 9)[J].J Submicrosc Cytol Pathol,1996,28:587-596.
[7] Schultz-Larsen J.The morphology of the human sperm;electron microscopic investigations of the ultrastructure[J].Acta Pathol Microbiol Scand Suppl,1958,44(Suppl 128):1-121.
[8] Tanaka A,Nagayoshi M,Tanaka I,et al.Human sperm head vacuoles are physiological structures formed during the sperm development and maturation process[J].Fertil Steril,2012,98:315-320.
[9] Montjean D,Belloc S,Benkhalifa M,et al.Sperm vacuoles are linked to capacitation and acrosomal status[J].Hum Reprod,2012,27:2927-2932.
[10] 中華醫(yī)學(xué)會 編著.臨床診療指南 輔助生殖技術(shù)與精子庫分冊[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,2009:9.
[11] Berkovitz A,Eltes F,Ellenbogen A,et al.Does the presence of nuclear vacuoles in human sperm selected for ICSI affect pregnancy outcome?[J].Hum Reprod,2006,21:1787-1790.
[12] Jequier AM.Clinical andrology-still a major problem in the treatment of infertility [J]. Hum Reprod,2004,19:1245-1249.
[13] Perdrix A,Rives N.Motile sperm organelle morphology examination(MSOME)and sperm head vacuoles:state of the art in 2013[J].Hum Reprod Update,2013,19:527-541.
[14] Watanabe S,Tanaka A,F(xiàn)ujii S,et al.An investigation of the potential effect of vacuoles in human sperm on DNA damage using a chromosome assay and the TUNEL assay[J].Hum Reprod,2011,26:978-986.
[15] Perdrix A,Saidi R,Menard JF,et al.Relationship between conventional sperm parameters and motile sperm organelle morphology examination(MSOME)[J].Int J Androl,2012,35:491-498.
[16] Gatimel N,Leandri RD,Marino L.Sperm vacuoles cannot help to differentiate fertile men from infertile men with normal sperm parameter values[J].Hum Reprod,2014,29:2359-2367.
[17] Monqaut AL,Zavaleta C,Lopez G,et al.Use of highmagnification microscopy for the assessment of sperm recovered after two different sperm processing methods[J].Fertil Steril,2011,95:277-280.
[18] Oliveira JB,Petersen CG,Massaro FC,et al.Motile sperm organelle morphology examination(MSOME):intervariation study of normal sperm and sperm with large nuclear vacuoles[J].Reprod Biol Endocrinol,2010,8:56.
[19] Franco JG Jr,Mauri AL,Petersen CG,et al.Large nuclear vacuoles are indicative of abnormal chromatin packaging in human spermatozoa[J].Int J Androl,2012,35:46-51.
[20] Perdrix A,Travers A,Chelli MH,et al.Assessment of acrosome and nuclear abnormalities in human spermatozoa with large vacuoles[J].Hum Reprod,2011,26:47-58.
[21] Mundy AJ,Ryder TA,Edmonds DK.A quantitative study of sperm head ultrastructure in subfertile males with excess sperm precursors[J].Fertil Steril,1994,61:751-754.
[22] Garolla A,F(xiàn)ortini D,Menegazzo M,et al.High-power microscopy for selecting spermatozoa for ICSI by physiological status[J/OL].Reprod Biomed Online,2008,17:610-616.
[23] Bartoov B,Berkovitz A,Eltes F,et al.Real-time fine morphology of motile human sperm cells is associated with IVF-ICSI outcome[J].J Androl,2002,23:1-8.
[24] Greco E,Scarselli F,F(xiàn)abozzi G.Sperm vacuoles negatively affect outcomes in intracytoplasmic morphologically selected sperm injection in terms of pregnancy,implantation,and livebirth rates[J].Fertil Steril,2013,100:379-385.
[25] Knez K,Tomazevic T,Zorn B,et al.Intracytoplasmic morphologically selected sperm injection improves development and quality of preimplantation embryos in teratozoospermia patients[J/OL].Reprod Biomed Online,2012,25:168-179.
[26] Balaban B,Yakin K,Alatas C,et al.Clinical outcome of intracytoplasmic injection of spermatozoa morphologically selected under high magnification:aprospective randomized study[J/OL].Reprod Biomed Online,2011,22:472-476.
[27] Vingris L,Setti AS,De Almeida Ferreira Braga DP,et al.Sperm morphological normality under high magnification predicts laboratory and clinical outcomes in couples undergoing ICSI[J].Hum Fertil(Camb),2015,18:81-86.
[28] Setti AS,Braga DP,Vingris L.Sperm morphological abnormalities visualised at high magnification predict embryonic development,from fertilisation to the blastocyst stage,in couples undergoing ICSI[J].J Assist Reprod Genet,2014,31:1533-1539.
[29] Knez K,Tomazevic T,Vrtacnik-Bokal E.Developmental dynamics of IMSI-derived embryos:a time-lapse prospective study[J/OL].Reprod Biomed Online,2013,27:161-171.
[30] Setti AS,F(xiàn)igueira RD,Braga DP,et al.Intracytoplasmic morphologically selected sperm injection benefits for patients with oligoasthenozoospermia according to the 2010 World Health Organization reference values[J].Fertil Steril,2011,95:2711-2714.
[31] Setti AS,de Almeida Ferreira Braga DP,Vingris L,et al.The prevalence of sperm with large nuclear vacuoles is a prognostic tool in the prediction of ICSI success[J].J Assist Reprod Genet,2014,31:307-312.
[32] Vanderzwalmen P,Hiemer A,Rubner P,et al.Blastocyst development after sperm selection at high magnification is associated with size and number of nuclear vacuoles[J/OL].Reprod Biomed Online,2008,17:617-627.
[33] Hazout A,Dumont-Hassan M,Junca AM,et al.Highmagnification ICSI overcomes paternal effect resistant to conventional ICSI[J/OL].Reprod Biomed Online,2006,12:19-25.
[34] Cassuto NG,Bouret D,Plouchart JM,et al.A new real-time morphology classification for human spermatozoa:a link for fertilization and improved embryo quality[J].Fertil Steril,2009,92:1616-1625.
[35] Wilding M,Coppola G,di Matteo L,et al.Intracytoplasmic injection of morphologically selected spermatozoa(IMSI)improves outcome after assisted reproduction by deselecting physiologically poor quality spermatozoa[J].J Assist Reprod Genet,2011,28:253-262.