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    蠟樣芽孢桿菌烯醇還原酶基因的克隆、表達和酶學(xué)性質(zhì)研究

    2015-12-20 08:39:02應(yīng)向賢李國四范雅君胡寶軍
    發(fā)酵科技通訊 2015年1期
    關(guān)鍵詞:氧代烯醇還原酶

    應(yīng)向賢,李國四,范雅君,胡寶軍,汪 釗

    (浙江工業(yè)大學(xué) 生物與環(huán)境工程學(xué)院,浙江 杭州 310014)

    引言

    烯醇還原酶(enone/enoatereductases,EC1.6.99.1)又稱老黃酶(old yellow enzyme),是一類可以利用NADH或NADPH對α,β-不飽和C=C雙鍵進行雙鍵加氫的氧化還原酶。烯醇還原酶可以在不對稱還原C=C反應(yīng)中同時引入兩個手性中心,該反應(yīng)是合成許多手性精細化工品的必要步驟,因此近年來受到廣泛關(guān)注。烯醇還原酶通過分別轉(zhuǎn)移還原態(tài)FMN中和水分子中的[H]到底物的Cβ與Cα上完成底物的反式加氫[1-2],而以金屬催化劑為媒介的化學(xué)催化以底物C=C的順式加氫更為常見[3-4]。這種獨特的反式加氫使得烯醇還原酶成為現(xiàn)有的化學(xué)催化C=C加氫的重要補充?,F(xiàn)已發(fā)現(xiàn)烯醇還原酶能夠催化多種活潑烯烴的還原,包括α,β-不飽和醛酮、硝基烯、羧酸以及他們的衍生物(酯,內(nèi)酯,環(huán)胺,酸酐)[5-8]。烯醇還原酶作為生物催化劑在生物催化中的應(yīng)用主要是整細胞催化法[9-12],然而目前整細胞催化活性低,而且胞內(nèi)羰基還原酶的存在降低了整細胞對α,β-不飽和羰基化合物中C=C和C=O鍵的化學(xué)選擇性[11-12]。與整細胞催化法相比,酶法催化C=C加氫具有高活性和高立體選擇性等優(yōu)點,可以有效克服整細胞催化法的缺點,因而對烯醇還原酶及其酶法催化的研究越來越受矚目[13-16]。

    本研究以實驗室保藏菌株Bacillus cereus WZY004為出發(fā)菌株,對其基因組中的烯醇還原酶基因進行了克隆和表達,并利用親和層析實現(xiàn)了重組烯醇還原酶的分離純化。在此基礎(chǔ)上,研究了該重組酶的酶學(xué)性質(zhì),如最適pH、最適溫度、熱穩(wěn)定性、底物特異性等,為其在C=C加氫上的應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株和載體

    蠟樣芽孢桿菌WZY004(B.cereus WZY004)為實驗室保藏菌株。宿主菌大腸桿菌E.coli DH5α和E.coli BL21(DE3)為實驗室已有資源。表達載體pEASY-E1購自于北京全式金(TransGen Biotech)生物技術(shù)有限公司。

    1.1.2 試劑

    Pfu DNA聚合酶、Taq DNA聚合酶和dNTPs購自北京全式金生物技術(shù)有限公司。用于基因組提取、質(zhì)粒提取、PCR產(chǎn)物純化和DNA膠回收的試劑盒均購自大連TaKaRa公司。輔酶NADH購自上海申能博彩公司。

    1.1.3 引物

    根據(jù)已知Bacillus cereus ATCC 14579基因組中烯醇還原酶基因(AE016877.1)設(shè)計PCR擴增烯醇還原酶基因的引物為:上游引物5'-TTGATGAATTCCAAGCTTTTTTC-3',下游引物 5'-TTATTTATTCGTATGAATTTTTCCTG-3'。引物由上海桑尼生物科技有限公司合成。

    1.1.4 培養(yǎng)基

    LB培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨 10,酵母提取物 5,NaCl 10,用NaOH將pH調(diào)至7.0。固體培養(yǎng)基添加2.0%的瓊脂。培養(yǎng)基于121°C下滅菌20 min。

    LB/Amp培養(yǎng)基:滅菌后的LB培養(yǎng)基加入終濃度為 100 μg/mL的氨芐青霉素(Amp)。

    1.2 方法

    1.2.1 烯醇還原酶Bac-OYE基因的克隆

    PCR擴增烯醇還原酶基因以B.cereus WZY004基因組DNA為模板,擴增條件為:94°C預(yù)變性4 min;94 °C 變性 30 s,55 °C 復(fù)性 30 s,72 °C 延伸 1 min,反應(yīng)循環(huán)數(shù)為 30;72°C后延伸 10 min。擴增后的產(chǎn)物用0.8%的瓊脂糖凝膠電泳檢測并回收。純化后的PCR產(chǎn)物連接到pEASY-E1表達載體上,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入50 μL Trans1-T1感受態(tài)細胞中,具體操作參照pEASY-E1 Expression Kit說明書。利用菌落PCR方法鑒定陽性克隆子,取鑒定正確的克隆子送至上海桑尼生物科技有限公司測序。將測序所得的基因與GenBank中對應(yīng)的基因序列進行比對分析,將含有正確片段的質(zhì)粒命名為pEASY-E1-OYE。

    1.2.2 重組烯醇還原酶Bac-OYE的表達和純化

    用質(zhì)粒提取試劑盒從Trans1-T1菌體中提取重組質(zhì)粒pEASY-E1-OYE,取10 μL將其轉(zhuǎn)入200 μL E.coli BL21(DE3)感受態(tài)細胞中,并涂布于LB/Amp抗性平板上37°C下培養(yǎng)過夜。挑取陽性菌株單菌落接種于含Amp的LB液體培養(yǎng)基中在30°C和200 r/min下?lián)u瓶培養(yǎng)12 h,作為種子液。然后按1%接種量擴大培養(yǎng)接種至150 mL LB液體培養(yǎng)基中,在37°C和200 r/min下培養(yǎng)至菌液濃度(OD600)約為 0.6~0.8 時,添加誘導(dǎo)劑IPTG(異丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷)至終濃度為0.2 mmol/L,在25°C和200 r/min下繼續(xù)培養(yǎng)8~10 h過量表達目的蛋白。誘導(dǎo)完成后10000 r/min離心10 min收集菌體,超純水清洗并重懸菌體,然后在冰浴條件下超聲破碎細胞。超聲破碎細胞條件為:工作時間2 s,間歇時間5 s,破碎總工作時間為40 min。細胞破碎液在4°C下12000 r/min離心10 min,收集上清;相同離心條件下重復(fù)離心3次。將收集到的上清液進行Ni-NTA親和層析獲取目的蛋白,收集到的目的蛋白經(jīng)超濾濃縮脫鹽后,進行SDS-PAGE檢測(丙烯酰胺濃度為13.5%)并測定蛋白濃度。分裝Bac-OYE純酶保存于-20°C冰箱備用。

    1.2.3 重組烯醇還原酶Bac-OYE的酶學(xué)性質(zhì)研究

    酶活力的測定在96微孔板中進行,標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)體系總體積為200 μL,分別包含10 mmol/L的氧代異佛爾酮、0.4 mmol/L 的 NADH、100 μg/mL 的純酶,50 mmol/L的Tris-HCl緩沖液。反應(yīng)在pH 7.5和40°C下進行,通過最終加入NADH啟動反應(yīng),通過檢測1 min內(nèi)在340 nm下NADH吸光值的降低來確定酶活大小。NADH的摩爾消光系數(shù)為 6.22×103M-1cm-1,一個酶活力單位(U)定義為每分鐘消耗1 μmol NADH所需的酶量。Bac-OYE對底物氧代異佛爾酮的動力學(xué)參數(shù)測定方法按照上述酶活性分析方法進行,其中氧代異佛爾酮的濃度范圍為0.25~10 mmol/L。采用雙倒數(shù)法計算重組烯醇還原酶Bac-OYE以氧代異佛爾酮為底物時的Km和Vmax。

    通過測定不同pH緩沖液中Bac-OYE的酶活確定該蛋白的最適pH。采用的緩沖液分別為Tris-HCl緩沖液 (pH 7.0~9.0)和檸檬酸緩沖液(pH 4.0~7.2)。最適溫度通過測定不同溫度下的酶活來確定,溫度范圍為25~70°C,5°C為一個間隔。

    為了測定重組烯醇還原酶Bac-OYE的熱穩(wěn)定性,一定濃度的酶溶液在不同溫度下孵育120 min,每20 min取樣一次,檢測Bac-OYE在不同條件下的殘余活力。以孵育前的酶活力為100%計算相對酶活力。

    為了測定重組烯醇還原酶Bac-OYE底物特異性,在標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)還原體系中,分別添加不同的α,β-不飽和羰基化合物作為底物,在最適反應(yīng)條件下檢測重組酶對不同底物的催化效果。以對氧代異佛爾酮的活力為100%,其他底物以此計算相對酶活力。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 重組烯醇還原酶Bac-OYE的表達和純化

    蠟樣芽孢桿菌WZY004基因組DNA中的重組烯醇還原酶Bac-OYE基因經(jīng)PCR擴增后,通過TA連接的方式連接至表達載體pEASY-E1上,構(gòu)建得到重組質(zhì)粒pEASY-E1-OYE。將重組質(zhì)粒pEASY-E1-OYE轉(zhuǎn)化入宿主菌E.coli BL21(DE3)。在IPTG誘導(dǎo)下,重組烯醇還原酶Bac-OYE在E.coli BL21(DE3)中以可溶蛋白形式過量表達。利用重組質(zhì)粒攜帶的多組氨酸標(biāo)簽,表達的重組酶經(jīng)Ni2+親和色譜分離純化。純化的重組酶經(jīng)SDS-PAGE檢測為單一條帶(圖1),實現(xiàn)了重組蛋白的一步純化。該重組酶分子量約為38.2 kD,與預(yù)期相符。經(jīng)過酶活力和蛋白質(zhì)濃度測定,計算得該重組酶的比活力為0.72 U/mg。

    圖1 重組烯醇還原酶Bac-OYE純化前后的SDS-PAGE分析

    2.2 酶促動力學(xué)參數(shù)測定

    對不同濃度氧代異佛爾酮進行酶活力測定,根據(jù)測定結(jié)果進行雙倒數(shù)曲線擬合(圖2)。曲線擬合度R2=0.99411,擬合方程為y=0.54659x+0.8859,根據(jù)擬合曲線計算得到Bac-OYE對氧代異佛爾酮的Km和Vmax分別為1.83 mmol/L與1.13 U/mg。測定時發(fā)現(xiàn)Bac-OYE能同時利用NADH和NADPH,但更傾向于利用NADH為輔酶。以NADH為輔底物時比酶活是NADPH的1.5倍。

    2.3 最適pH和最適溫度

    純化后的 Bac-OYE在 pH 7.0~8.0的 Tris-HCl緩沖液中活力較高,在pH 7.5的Tris-HCl緩沖液中活力達到最高 (圖3)。Bac-OYE在溫度30~60°C范圍內(nèi)酶活緩慢升高并且在60°C時達到最大,而當(dāng)溫度超過60°C后,酶活迅速降低,在70°C時酶完全失活(圖4)。

    圖2 重組烯醇還原酶Bac-OYE的雙倒數(shù)曲線

    圖3 pH對重組烯醇還原酶Bac-OYE酶活力的影響

    圖4 溫度對重組烯醇還原酶Bac-OYE酶活力的影響

    2.4 熱穩(wěn)定性

    純化后的Bac-OYE的熱穩(wěn)定性研究表明,在溫度40°C和45°C孵育2 h后其活力基本保持不變。而50°C孵育1 h后酶活就迅速下降,2 h后酶活基本消失。60°C酶極不穩(wěn)定,20 min后酶活損失接近50%,1 h后完全失活(圖5)。

    2.5重組烯醇還原酶Bac-OYE的底物特異性

    圖5 重組烯醇還原酶Bac-OYE的熱穩(wěn)定性

    以α,β-不飽和醛酮及其衍生物為底物,研究了重組烯醇還原酶Bac-OYE的底物特異性。以Bac-OYE對氧代異佛爾酮的比酶活為100%,計算Bac-OYE對所有底物的相對活力(表1)。Bac-OYE對氧代異佛爾酮及其衍生物的活力相差很大,只對氧代異佛爾酮表現(xiàn)出活力,而對4號位沒有酮基的衍生物(如異佛爾酮、4-羥基異佛爾酮、3-環(huán)己烯-1-酮)不表現(xiàn)活力,由此推測4號位酮基對酶活力具有重要作用。該重組酶對于直鏈化合物上的α,β-不飽和C=C雙鍵均表現(xiàn)出活力,尤其對檸檬醛、2-甲基-2-戊烯醛和反式-2-癸烯醛表現(xiàn)出較高活力。對于環(huán)狀化合物側(cè)鏈上的α,β-不飽和C=C雙鍵,Bac-OYE只對肉桂醛有較低活力。同時該酶對馬來酰亞胺表現(xiàn)出較高活力而對其結(jié)構(gòu)類似物馬來酸酐不表現(xiàn)活力。此外,對α,β-不飽和醛酮的衍生物肉桂酸甲酯也有和對氧代異佛爾酮相似的活力。

    表1 重組烯醇還原酶Bac-OYE的底物特異性

    3 結(jié)論

    本研究以實驗室保藏菌株Bacillus cereus WZY004的基因組為模板,成功克隆、表達并純化出了一種烯醇還原酶Bac-OYE。該酶可以同時利用NADH和NADPH作為輔酶,但更傾向于NADH。對Bac-OYE的底物特異性分析發(fā)現(xiàn)其對鏈狀α,β-不飽和醛具有較高活力,尤其是檸檬醛、2-甲基-2-戊烯醛以及反式-2-癸烯醛。目前對于α,β-不飽和醛酮以及其衍生物的不對稱還原主要集中在化學(xué)方法上,區(qū)域選擇性和立體選擇性不高,本研究的結(jié)果可以作為化學(xué)加氫方法的補充。

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