董文閣,袁 斌,周立華,徐建亞,李江全,王明明,孔 飛
呼吸道合胞病毒(respiratory syncytial viral,RSV)為副黏病毒科肺炎病毒屬,是有包膜非片段性的單股負(fù)鏈RNA病毒。RSV是造成嬰幼兒嚴(yán)重下呼吸道感染的主導(dǎo)因素,可引起肺炎和毛細(xì)支氣管炎,還可誘發(fā)慢性阻塞性肺病、過(guò)敏癥和哮喘,并加劇已有的哮喘病癥,嚴(yán)重威脅嬰幼兒健康。RSV病毒感染是嬰幼兒肺炎的主要病原,細(xì)胞免疫功能紊亂在小兒病毒性肺炎發(fā)病機(jī)制中起重要作用[1]。本研究結(jié)合小兒病毒性肺炎痰熱閉肺證的證候特點(diǎn),在經(jīng)方麻杏石甘湯的基礎(chǔ)上,研制出以開(kāi)肺化痰、解毒活血為主要功效的清肺口服液,并發(fā)現(xiàn)其在治療RSV肺炎方面臨床效果良好[2-4],但治療機(jī)理的研究不夠深入。因此本研究從細(xì)胞免疫角度探討該藥治療RSV肺炎的機(jī)理。
1.1 RSV病毒 呼吸道合胞病毒A亞型(Long株),保存于南京中醫(yī)藥大學(xué)第一臨床醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)研究中心液氮罐中,復(fù)蘇并擴(kuò)增后收集病毒,測(cè)感染RSV 后 Hep-2 細(xì)胞 TCID50為 10-3.5/50 μL。
1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 取6~8周齡雌性BALB/c小鼠50只,體重(20±2)g,購(gòu)于北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)中心。合格證:SCXK(京)2012-0001。飼養(yǎng)溫度(21±2)℃,濕度40% ~70%,光照12 h/d,按清潔級(jí)標(biāo)準(zhǔn)適應(yīng)性飼養(yǎng)5 d。
1.3 藥品 清肺口服液藥物組成:炙麻黃4 g,杏仁10 g,生石膏24 g,葶藶子 6 g,桑白皮 10 g,紫花前胡10 g,制僵蠶 6 g,丹參 6 g,虎杖 12 g,拳參 12 g。新博林顆粒成分為利巴韋林。
按照《中華人民共和國(guó)藥典》(2010年版)口服液制劑標(biāo)準(zhǔn),經(jīng)過(guò)煎煮、濃縮、蒸餾、收取等過(guò)程,制成濃度相當(dāng)于生藥1.33 g/mL和4 g/mL的煎劑。
1.4 試劑 ELASA試劑盒(上海聯(lián)碩生物科技有限公司),胎牛血清及培養(yǎng)基(維森特生物技術(shù)有限公司),流式細(xì)胞術(shù)試劑盒:Mouse Treg/Th 17 Phenotyping Kit、Leuko-cyte Activation Cocktail,with BD Golgiplug Stain Buffer(FBS),BD Pharmingen生產(chǎn)。
1.5 實(shí)驗(yàn)儀器 酶標(biāo)儀(EXL800型 BioTek,USA)、低溫高速離心機(jī)Centrifuge 5810R、流式細(xì)胞儀(貝克曼CytomicsTMFC 500)、倒置顯微鏡(DMIL,德國(guó) Leica公司)、CO2培養(yǎng)箱(MCO-20,日本SANYO公司)等。
1.6 實(shí)驗(yàn)方法
1.6.1 動(dòng)物分組 將小鼠按照隨機(jī)數(shù)字表法分為5組:對(duì)照組、模型組、利巴韋林組、清肺高劑量組(4 g/mL)、清肺低劑量組(1.33 g/mL),每組10只。
1.6.2 RSV模型制備方法 在P1級(jí)生物安全實(shí)驗(yàn)室適應(yīng)性飼養(yǎng)小鼠5 d后,分別將各組小鼠置于密封透明容器內(nèi)以乙醚吸入性麻醉,除對(duì)照組外,其余4組均給予 RSV病毒滴入鼻孔制備模型,將TCID50為10-3.5/50μL的RSV病毒稀釋1000倍,每只小鼠50 μL滴鼻,對(duì)照組予等量等滲鹽水刺激,各組小鼠在RSV滴鼻48 h后,給藥72 h即處死。
小鼠肺組織病理采集:實(shí)驗(yàn)結(jié)束剖取小鼠肺小葉,每組5只,經(jīng)4%多聚甲醛溶液固定,常規(guī)取材,脫水,石蠟包理,制片,HE染色,在光學(xué)顯微鏡下(×200)閱片,具體過(guò)程參照文獻(xiàn)[5],根據(jù)小鼠肺組織病理改變程度對(duì)其進(jìn)行評(píng)分。
1.6.3 給藥濃度 對(duì)照組和模型組給予相應(yīng)0.9%等滲鹽水,清肺高劑量組給予濃度為4 g/mL(相當(dāng)于小兒臨床3倍等效量)的清肺口服液,清肺低劑量組給予濃度為1.33 g/mL(相當(dāng)于小兒臨床等效量)的清肺口服液,利巴韋林組給予濃度為0.0025 g/mL(相當(dāng)于小兒臨床等效量)的利巴韋林,各組小鼠均灌胃給藥,1次/d,給藥3 d后處死。
1.7 實(shí)驗(yàn)測(cè)定 酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)檢測(cè)小鼠肺泡灌洗液(Bronchoalveolar Lavage Fluid,BALF)中IL-10、IL-17的表達(dá)。
1.7.1 樣本的制備 摘眼球取血處死小鼠后,每組5只,剝離出氣管,用手術(shù)剪在環(huán)狀軟骨處剪口,插入8號(hào)灌胃器針頭并固定,連接1 mL注射器,依次用預(yù)冷的 PBS 0.8、0.6、0.5 mL 沖洗小鼠肺 3 次,每次緩慢用PBS反復(fù)沖洗3次,移至5 mL離心管中,整個(gè)過(guò)程于冰上進(jìn)行保持溫度為4℃,將離心管置于2500 r/min,離心 5 min,取上清。
1.7.2 濃度測(cè)定 依據(jù)ELISA試劑盒說(shuō)明書,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,加樣,溫育,洗滌后用底物顯色,于酶標(biāo)儀在450 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度(A)值,計(jì)算樣品濃度。
1.8 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)小鼠脾細(xì)胞中Treg/Th17細(xì)胞平衡水平 制備單細(xì)胞懸液,將取過(guò)肺組織病理的小鼠,每組4只,摘取新鮮的小鼠脾半葉加人冷的PBS研磨成為單細(xì)胞懸液,每管抽取200 μL左右;根據(jù)流式試劑盒操作流程操作進(jìn)行染色、破膜及固定,最后用流式儀器檢測(cè)。
1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析,計(jì)量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間均數(shù)的比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD檢驗(yàn),以P≤0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 清肺口服液對(duì)感染RSV肺炎小鼠肺組織的病理改變?cè)u(píng)分結(jié)果 清肺高劑量組、清肺低劑量組、利巴韋林組、對(duì)照組病理改變?cè)u(píng)分[(3.5±0.5)、(4.5 ±0.5)、(2.9 ±0.4)、(0.8 ±0.4)分]較模型組[(5.7 ±0.8)分]降低(P <0.01)。
2.2 清肺口服液對(duì)小鼠BALF中IL-10、IL-17表達(dá)的影響 清肺高劑量組、清肺低劑量組、利巴韋林組、對(duì)照組IL-10表達(dá)較模型組均明顯升高(P<0.01);而 IL-17表達(dá)較模型組均明顯降低(P<0.01)。清肺高、低劑量組IL-10、IL-17表達(dá)分別較利巴韋林組降低和升高(P<0.05)。見(jiàn)表1。
表1 各組小鼠BALF中IL-10、IL-17表達(dá)水平比較(x ±s,n=5)Table 1 Expressions of IL-10 and IL-17 in the bronchoalveolar lavage fluid of different groups of rats(x ± s,n=5)
2.3 清肺口服液對(duì)小鼠脾細(xì)胞中Treg、Th17及Treg/Th17表達(dá)的影響 模型組Treg、Treg/Th17表達(dá)較對(duì)照組降低,Th17表達(dá)升高(P<0.01)。清肺高劑量組、清肺低劑量組、利巴韋林組及對(duì)照組Treg/Th17表達(dá)較模型組均明顯升高(P<0.01);清肺高、低劑量組Treg、Th17、Treg/Th17表達(dá)與利巴韋林組比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)表2。
表2 各組小鼠脾細(xì)胞中Treg、Th17表達(dá)水平及Treg/Th17比值比較(x ± s,n=4)Table 2 Expression levels of Treg,Th17,and Treg/Th17 in the spleen of different groups of rats(x ±s,n=4)
RSV感染所致嬰幼兒肺炎以痰熱閉肺證最為多見(jiàn),清肺口服液為南京中醫(yī)藥大學(xué)附屬醫(yī)院院內(nèi)制劑,系在麻杏石甘湯基礎(chǔ)上經(jīng)制劑改良形成,常用于治療RSV感染痰熱閉肺證,在縮短病程、改善癥狀等方面起到了良好效果[6]。鞏固等[7]研究發(fā)現(xiàn),清肺口服液治療小兒呼吸道合胞病毒肺炎療效顯著,優(yōu)于利巴韋林,且不良反應(yīng)極少。RSV病毒感染后,體內(nèi)炎癥細(xì)胞在肺組織中聚集增加[8]。本研究RSV病毒感染后,模型組小鼠肺組織病變主要位于肺間質(zhì),表現(xiàn)為肺泡壁輕度或中度充血、水腫,致肺泡壁增厚,并有少量或中等量中性粒細(xì)胞和單核巨噬細(xì)胞浸潤(rùn)。肺泡腔內(nèi)無(wú)水腫液,無(wú)炎性滲出物。肺內(nèi)支氣管上皮細(xì)胞排列輕度紊亂,有輕度變性,無(wú)細(xì)胞壞死,管腔內(nèi)未見(jiàn)滲出物,支氣管周圍組織無(wú)明顯水腫或炎細(xì)胞浸潤(rùn);給藥治療后各組肺組織病變程度較模型組略減輕,肺內(nèi)支氣管上皮細(xì)胞排列較整齊,腔內(nèi)無(wú)明顯炎性滲出物。與模型組比較,清肺高、低劑量組及利巴韋林組作用于小鼠肺炎中期可有效升高IL-10表達(dá)水平,并可有效降低IL-17表達(dá)水平,有效上調(diào) Treg表達(dá),下調(diào) Th17表達(dá),上調(diào)Treg/Th17,表明清肺組及利巴韋林組治療RSV肺炎均有效;清肺高劑量組、清肺低劑量組與利巴韋林組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),表明清肺高劑量組、清肺低劑量組治療效果略優(yōu)于利巴韋林組;而清肺高劑量組與清肺低劑量組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,表明清肺高劑量組療效并不優(yōu)于清肺低劑量組。清肺口服液療效可能在一定范圍內(nèi)隨著濃度的增加而不斷增強(qiáng),但本研究中2種濃度的療效差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
RSV肺炎痰熱閉肺證主要病理產(chǎn)物是痰,現(xiàn)代醫(yī)學(xué)認(rèn)為,“痰”屬于炎癥反應(yīng)范疇,炎性細(xì)胞產(chǎn)生的分泌物可視之為中醫(yī)的“痰”[9]?,F(xiàn)代醫(yī)學(xué)研究,RSV感染的發(fā)病機(jī)制除RSV直接導(dǎo)致氣道黏膜受損外,RSV可作為變應(yīng)原誘導(dǎo)機(jī)體免疫應(yīng)答,一方面清除RSV,另一方面造成免疫損傷。Th17細(xì)胞為能夠分泌IL-17、IL-22等促炎癥因子的T細(xì)胞亞群,Bera等[10]報(bào)道,急性RSV感染會(huì)引起Th17細(xì)胞因子上調(diào)。有研究報(bào)道,Th17細(xì)胞及IL-17在肺組織纖維化早期肺泡炎階段表達(dá)水平增加,可能與誘導(dǎo)免疫應(yīng)答,促進(jìn)Th17細(xì)胞分化,分泌IL-17,放大致炎效應(yīng)有關(guān)[11]。Treg細(xì)胞是能分泌IL-10并具有負(fù)調(diào)節(jié)作用的T細(xì)胞亞群[12]。既往研究表明,Treg敲除的急性RSV感染小鼠模型癥狀加重,發(fā)病率上升,體重下降更多,氣道阻塞加劇,揭示Treg細(xì)胞在急性RSV感染中起到重要調(diào)節(jié)作用[13-14]。正常機(jī)體Treg/Th17處于相對(duì)平衡狀態(tài),RSV感染促進(jìn)Th17細(xì)胞分化,大量分泌IL-17促炎因子,IL-17促進(jìn)多種細(xì)胞釋放炎癥因子,促使氣道黏液腺分泌大量黏液,增加氣道的高反應(yīng)性。Treg細(xì)胞和IL-10綜合作用可抑制炎癥細(xì)胞因子反應(yīng)[15],RSV感染可能引起Treg細(xì)胞因子下調(diào),IL-10分泌減少,從而導(dǎo)致Treg/Th17平衡失調(diào)發(fā)生急性炎癥病變。本研究中模型組IL-17表達(dá)水平明顯上升,Th17細(xì)胞因子上調(diào),IL-10表達(dá)水平下降,Treg細(xì)胞因子下調(diào),給藥后能抑制Th17細(xì)胞分化,下調(diào)IL-17表達(dá)水平,減少炎癥因子釋放,可能促進(jìn)IL-10表達(dá),誘導(dǎo)Treg細(xì)胞分化[16],使紊亂的 Treg/Th17趨于平衡狀態(tài),進(jìn)而使疾病趨于好轉(zhuǎn)。這也為深入揭示RSV的致病機(jī)制提供了新的思路與方法。
[1] 郭渠蓮,劉文君,曾國(guó)慶,等.嬰幼兒病毒性肺炎的病毒病原學(xué)及臨床特點(diǎn)[J].中國(guó)兒童保健雜志,2006,14(4):333-335.
[2] 汪受傳,趙 霞,韓新民,等.小兒病毒性肺炎的中醫(yī)藥治療與療效評(píng)價(jià)力一法分析[J].世界中西醫(yī)結(jié)合雜志,2007,2(1):31-34.
[3] 袁 斌,廖 輝,汪受傳,等.清肺口服液含藥血清對(duì)呼吸道合胞病毒載附、膜融合影響的實(shí)驗(yàn)研究[J].中國(guó)中西醫(yī)結(jié)合兒科學(xué),2009,1(1):14-17.
[4] 汪受傳,韓新民,任現(xiàn)志,等.小兒病毒性肺炎痰熱閉肺證治療力法研究[J].南京中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào),2004,20(2):72-75.
[5] Martin RJ,Chu HW,honour JM.Airway inflammation and bronchial hypersponsiveness after mycoplasma pneumoniaw infection in a murine model[J].J Am J Reapir Cell Mol Biol,2001,24(5):577-582.
[6] 袁 斌,任現(xiàn)志,孫軼秋,等.清肺口服液治療小兒呼吸道合胞病毒肺炎166例多中心單盲對(duì)照臨床觀察[J]中醫(yī)雜志,2009,50(3):221-223.
[7] 鞏 固,謝鳳蓮.小兒呼吸道合胞病毒肺炎臨床治療研究[J].中外醫(yī)學(xué)研究,2013,25:36.
[8] 朱亞非,包 玲.肺表面活性蛋白D與呼吸道合胞病毒感染[J].醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報(bào),2014,27(9):998-1001.
[9] Costello RW,Jacoby DB,Gj G,et al.Eosinopils and airway nerve[J].histtolpathol,2000,15(13):861.
[10] Bera MM,Lu B,Martin TR,et al.GerardNP.Th17 Cytokines Are Critical for Respiratory Syncytial Virus-Associated Airway hyperreponsiveness through Regulation by Complement C3a and Tachykinins[J].J Immunology,2011,187(8):4245-4255.
[11] 鮑文華,梁建合,李樹(shù)民,等.Th17細(xì)胞和IL-23/IL-17軸在肺纖維化大鼠肺組織動(dòng)態(tài)表達(dá)的意義[J].醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報(bào),2014,27(3):240-244.
[12] Dobrzanski MJ,Rewers-Felkins KA,Samad KA,et al.Immunotherapy with IL-10-and IFN-γ-producing CD4 effector cells modulate"Natural"and"Inducible"CD4 TReg cell subpopulation levels:observations in four cases of patients withovarian cancer[J].Cancer Immunology,Immunotherapy.2012,61(6):839-854.
[13] Fulton RB,Meyerholz DK,Varga SM,et al.Foxp3+CD4 Regulatory T Cells Limit Pulmonary Immunopathology by Modulating the CD8 T Cell Responseduring Respiratory Syncytial Virus Infection[J].J Immunology,2010,185(4):2382-2392.
[14] Matthew T,Lotz R,Stokes Peebles Jr.Mechanisms of respiratory syncytial virus modulation of airway immune responses[J].Curr Allergy Asthma Rep,2012,12(5):380-387.
[15] Allison F.Christiaansen,Cory J.Knudson,Kayla A.Weiss,et al.The CD4 T cell response to respiratory syncytial virus infection[J].Immunologic Research,2014,59(1):109-117.
[16] Yu-Jung Heo,Young-Bin Joo,Hye-Jwa Oh,etal.IL-10 suppresses Th17 cells and promotes regulatory T cells in the CD4+T cells population of rheumatoid arthritis patients[J].Immunology Letters,2009,127(2):150-156.