劉 鑫,夏 之,羅曉青,熊 花
(1.南華大學附屬第一醫(yī)院中醫(yī)科,湖南 衡陽421001;2.南華大學第一臨床學院,湖南 衡陽421001;3.益陽市中心醫(yī)院呼吸內(nèi)科,湖南 益陽413000)
支氣管哮喘是一種臨床上較為常見的疾病,其發(fā)病機制尚不完全清楚。 目前研究表明,支氣管哮喘的病變主要是以氣道慢性炎癥、 氣道高反應性及氣道重塑為主,其中,氣道重塑與哮喘癥狀的嚴重性、臨床療效及預后有密切關(guān)系[1]。 氣道上皮細胞的增殖以及纖維化是氣道重塑的重要組成部分, 而T 細胞成熟相關(guān)蛋白 (T-lymphocyte maturation associated protein T,MAL)有著維持上皮細胞穩(wěn)定性的作用,研究表明,MAL 隨著大鼠哮喘病程的進展,表達動態(tài)下調(diào)[2]。 明代王肯堂《證治準繩》的柴樸湯,由小柴胡湯和半夏厚樸湯組成,有行氣、化痰、平喘的作用。 本研究旨在探討柴樸湯對哮喘氣道上皮細胞中MAL 表達的影響,現(xiàn)將結(jié)果報道如下。
1.1.1 實驗動物 健康雄性SD 大鼠64 只(南華大學動物部提供),體質(zhì)量(250±10) g。 動物許可證號:scxk (湘)2009-0012, 飼養(yǎng)室溫維持在18~22 ℃之間, 相對濕度40%~70%, 飼養(yǎng)環(huán)境合格證號:scxk(湘)2009-0010,按標準化飼養(yǎng),喂全價營養(yǎng)飼料,每日2~3 次按時喂養(yǎng),每天更換飲用水源。
1.1.2 主要試劑 卵蛋白(OVA,美國Sigma 公司,批號:120602);氫氧化鋁粉末(天津生化試劑廠,批號:120802);小鼠MAL 抗體(博士德生物技術(shù)有限公司,批號:20120818);SABC 免疫組化試劑盒 (博奧森生物技術(shù)有限公司, 批號:20120713);DAB 顯色試劑盒 (博奧森生物技術(shù)有限公司, 批號:20120728);MAL PCR 引物[生工生物工程(上海)股份有限公司,批號:E·129911,上游引物:5-CAG AGC AAT TAA CTG GTC AGC CT-3, 下游引物:5-GGA AGT TAA ATT CAG CAA GCC CT-3];RNA 提取試劑盒 (東盛生物技術(shù)有限公司, 批號:00073758);RNA 樣本保存液 (天根生物, 批號:00084763)。
1.1.3 試藥 中藥柴樸湯:由柴胡、半夏、茯苓、黃芩、厚樸、大棗、白參、甘草、蘇葉、生姜中藥配方顆粒組成,按7∶5∶3∶3∶3∶3∶2∶2∶2∶1 比例配制,由一方制藥有限公司提供,批號:406170t。 1 g 顆粒劑相當于生藥6.8 g,用蒸餾水沖泡,現(xiàn)配現(xiàn)用。
1.1.4 主要儀器 多功能超聲霧化器(鞍山電子醫(yī)療儀器廠,YZB/遼0390-2006 JSC 型);PCR 儀(美國biometra,HBPX2); 輪轉(zhuǎn)式切片機 (德國來卡公司,RM2245);凝膠成像分析系統(tǒng)(英國UVP 公司,BioSpectrum 410); 紫外分光光度儀 (日本島津公司,UV-1206 型分光光度儀);電泳儀(北京市六一儀器廠,DYY-7C 型);光學顯微鏡(o1ympus 公司,SZ61)。
1.1.5 實驗細胞 由中國醫(yī)學科學院基礎(chǔ)醫(yī)學研究所提供大鼠氣道上皮細胞, 資源編號:3111C0001CCC000149。
1.2.1 動物分組及含藥血清制備 隨機從64 只健康雄性SD 大鼠中抽取32 只分為4 組, 即正常組8只,柴樸湯高劑量組8 只(高劑量組)、中劑量組8只(中劑量組)、低劑量組8 只(低劑量組),生理鹽水組8 只(正常組)。 剩余為模型組32 只。 柴樸湯高、中、低劑量組按體表面積[3]折算后,每日給藥提取物量分別為3.00、1.50、0.75 g/kg、 正常組給予等體積生理鹽水,每日2 次,連續(xù)灌胃給藥7 d。末次給藥1 h 后,乙醚麻醉,無菌條件下,經(jīng)心臟采血,每只大白鼠約采集5 mL 血液,冷置1 h,4 ℃,2 500 r/min 離心25 min, 分離得0.5 mL 血清,于56 ℃溫育30 min 滅活,每組8 份血清混合,0.22 μm 微孔濾膜過濾除菌后分裝,-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?所取血清分別為柴樸湯高、中、低劑量組、正常組。
1.2.2 哮喘血清大鼠模型建立[4]及大鼠哮喘血清的采集 模型組在第1 天和第8 天腹腔注射卵蛋白[Albumin(egg white),OVA]1 mg+氫氧化鋁200 mg+生理鹽水1 mL 混懸液分別在大鼠兩腹股溝、腹部、前足趾4個部位皮下注射,每處0.2 mL,同時腹腔注射0.2 mL 致敏,第15 天時以1%OVA 霧化激發(fā),每次激發(fā)時間30 min,隔天1 次,共8 周??乖ぐl(fā)后,以大鼠出現(xiàn)呼吸加深加快、呼吸困難、腹肌收縮、行動緩慢呆滯、精神萎靡等為激發(fā)成功標志,代表哮喘模型復制成功。 末次激發(fā)后,用乙醚麻醉大鼠無菌條件下心臟采血, 每只大白鼠約采集5 mL血液,冷置1 h,離心(4 ℃,2 500 r/min,25 min),分離約0.5 mL 血清,于56 ℃溫育30 min 滅活,共32份血清混合,0.22 μm 微孔濾膜過濾除菌,-70 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?所取血清為大鼠哮喘血清。
1.2.3 大鼠氣道上皮細胞的培養(yǎng) 將大鼠氣道上皮細胞以DMEM 完全培養(yǎng)基制成細胞懸液,置37 ℃、體積分數(shù)5% CO2中培養(yǎng),隔天換液,倒置顯微鏡下觀察細胞生長情況,待細胞長至生長基質(zhì)的70%~80%表面積,予以傳代培養(yǎng)。
1.2.4 分組及細胞誘導 取傳代的第20 代生長良好的大鼠氣道上皮細胞分為:正常血清組、柴樸湯高劑量血清+哮喘血清(下稱柴哮高組)、柴樸湯中劑量血清+哮喘血清(下稱柴哮中組)、柴樸湯低劑量血清+哮喘血清(下稱柴哮低組)、正常血清+哮喘血清(下稱鹽哮血清)、哮喘血清。 每組樣本數(shù)為5,各血清總濃度均為20%,其中柴哮高、中、低組、鹽哮血清各血清濃度為10%,混合后為20%[4],各組培養(yǎng)基量相等。 培養(yǎng)24 h,棄細胞培養(yǎng)液,收集細胞。
1.3.1 肺組織標本留取及組織形態(tài)學觀察 取血后留取模型組及正常組大鼠,充分暴露胸腔,左肺上葉注入4%的多聚甲醛5 mL, 取下后置于4%的多聚甲醛溶液中保存固定1 周, 取固定的肺組織,常規(guī)石蠟包埋、切片,HE 染色,光學顯微鏡下觀察切片肺臟組織形態(tài)結(jié)構(gòu)。
1.3.2 各組氣道上皮細胞中MAL mRNA 檢測 用半定量RT-PCR 檢測氣道上皮細胞中MAL 信使核糖核酸(Messenger RNA,mRNA)的表達,按東盛生物技術(shù)有限公司提供試劑盒操作方法進行。 取實驗上皮細胞,經(jīng)研磨、裂解、沉淀、洗滌、離心等處理后, 溶解于DEPC 處理水中。 用紫外分光光度計測A260/A280 的比值(OD 值)在1.8~2.0 之間,1.5%瓊脂糖凝膠電泳觀察28S 與18S 條帶清晰且密度比值約等于2,表明RNA 樣品無污染,可用。根據(jù)基因庫基因序列設計引物序列,并由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,擴增引物如下:上游引物:5-CAG AGC AAT TAA CTG GTC AGC CT-3,下游引物:5-GGA AGT TAA ATT CAG CAA GCC CT-3,產(chǎn)物擴增長度:185 bp。 預變性94 ℃5 min,變性94 ℃60 s,退火54 ℃50 s,延伸72 ℃50 s,共30個循環(huán), 終末延伸72 ℃7 min, 肌動蛋白[(β-non-muscle actin,β-actin) 上游引物:5-TCA GGT CAT CAC TAT CGG CAA T-3,下游引物:5-AAA GAA AGG GTG TAA AAC GCA-3, 產(chǎn)物擴增長度:432 bp]也按以上程序一起擴增。 循環(huán)后PCR 擴增產(chǎn)物加入1.5%瓊脂糖電泳分離,Image-Tool 2.0 分析各組電泳條帶灰度積分,以β-actin 的灰度積分作為標準校正各組MAL 電泳條帶灰度積分,得出MAL 的相對灰度值,進行半定量分析。
1.3.3 各組氣道上皮細胞中MAL 蛋白的檢測 用免疫組化檢測氣道上皮細胞中MAL 蛋白的表達,按博奧森生物技術(shù)有限公司提供試劑盒操作方法進行。 常規(guī)10%甲醛固定30 min,脫蠟、水化。 用磷酸鹽生理鹽水緩沖液(PBS)(0.01 M)沖洗3 次,每次3 min; 細胞抗原加熱修復: 煮沸2 次后PBS 洗5 min; 過氧化酶阻斷劑封閉 15 min,PBS 沖洗,3 min×3 次;滴加5%BSA 封閉液,室溫20 min;滴加稀釋為1∶330 的MAL 抗, 室溫下過夜,PBS 沖洗3 min×3 次; 滴加二抗孵育10 min 后,PBS 沖洗3 min×3 次;水沖洗,蘇木素復染;DAB 顯色:室溫顯色3~10 min;脫水干燥、二甲苯透明、中性樹膠封片、光學顯微鏡觀察。 陽性信號為胞質(zhì)或胞核呈現(xiàn)棕黃色顆粒。 采集圖像后,以Image-pro plus 5.1 圖像分析軟件系統(tǒng), 測定陽性顆粒的平均光密度(average optical density,AOD), 計算其平均值, 代表MAL 蛋白表達的相對含量。
所有數(shù)據(jù)應用SPSS 18.0 統(tǒng)計軟件分析,計量資料以“±s”表示,方差齊者用方差分析,方差不齊用秩和檢驗,組間差異顯著性檢驗用F 檢驗,兩兩比較用q 檢驗,P<0.05 為差異具有統(tǒng)計學意義。
正常組:大鼠肺組織結(jié)構(gòu)正常,氣道上皮細胞結(jié)構(gòu)完整無明顯的炎癥細胞浸潤,肺泡結(jié)構(gòu)形態(tài)未見破壞(第72 頁彩圖圖1①)。 哮喘組:大鼠肺組織可以見到大量炎癥細胞浸潤,黏膜皺襞較多,氣道上皮細胞變性、壞死,可見到管腔狹窄,黏液分泌增多致氣道狹窄、閉塞。肺間質(zhì)可見新生血管形成。大量膠原纖維形成,基底膜加寬加厚,大部分肺泡破壞、融合,肺泡腔擴大,肺泡間隔斷裂(第72 頁彩圖圖1②)。
MAL 電泳圖示:MAL 電泳條帶在185 bp 處可見,正常血清組mRNA 的條帶最亮,柴哮高組、柴哮中組、柴哮低組次之,鹽哮血清、哮喘血清組最暗。結(jié)果見圖2。
圖2 MAL 基因表達電泳圖
MALmRNA 和MAL 的AOD 值在正常血清組最高,與其它各組比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);柴哮高、中、低組較鹽哮血清組、 哮喘血清組升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。 結(jié)果見表1。
表1 各組MAL mRNA 和蛋白表達的比較(±s,n=5)
表1 各組MAL mRNA 和蛋白表達的比較(±s,n=5)
注:與正常血清比較●P<0.05;與鹽哮血清、哮喘血清比較★P<0.05。
組 別 MAL mRNA 相對灰度值 OD 值正常血清 0.82±0.04 0.88±0.03鹽哮血清 0.28±0.02● 0.36±0.04●哮喘血清 0.26±0.02● 0.32±0.03●柴哮高組 0.54±0.02●★ 0.57±0.07●★柴哮中組 0.57±0.02●★ 0.62±0.06●★柴哮低組 0.41±0.01●★ 0.49±0.11●★
免疫組化結(jié)果顯示:正常血清組、柴哮高組、柴哮中組、柴哮低組、鹽哮血清組、 哮喘血清組均可見MAL 蛋白免疫反應陽性的棕黃色顆粒細胞。 正常血清組表達最強,柴哮高組、柴哮中組、柴哮低組較正常血清組表達減少,在鹽哮血清組、哮喘血清組表達最弱。 見第72 頁彩圖圖3。
在哮喘發(fā)病中,氣道上皮細胞可以釋放多種細胞因子和炎癥介質(zhì),造成級聯(lián)放大效應及上皮細胞的損傷, 導致氣道纖毛的清除功能及屏障功能受損, 長期的慢性炎癥刺激可引起以杯狀細胞增生、上皮細胞纖維化及平滑肌細胞增生肥大為主要病理變化的氣道重塑[5]。Holgate 等[6]認為在有害物質(zhì)刺激下氣道上皮細胞正常修復機制受損,是導致難治性哮喘的重要原因。 可見上皮細胞作為氣道內(nèi)外環(huán)境的第一道物理屏障,其結(jié)構(gòu)的破壞及持續(xù)的炎癥反應,在氣道過敏反應性炎癥及氣道重塑的發(fā)生與發(fā)展中,都有著不可忽略的作用。
MAL 基因最初發(fā)現(xiàn)于1987年,Alons[7]發(fā)現(xiàn)該基因表達于T 淋巴細胞分化中晚期,編碼產(chǎn)物為一種高度疏水性蛋白,研究發(fā)現(xiàn),MAL 隸屬于MAL 基因家族,該家族成員編碼產(chǎn)物均屬于四折跨膜蛋白質(zhì),具有相似的生化特性,并在呼吸系統(tǒng)、胃腸道、泌尿生殖系統(tǒng)、內(nèi)分泌腺體等多種組織的上皮細胞中均有廣泛表達。
MAL 在氣道上皮細胞內(nèi)表達較顯著,它定位于上皮細胞的頂膜區(qū),是頂端運輸機制中的膜內(nèi)在蛋白,參與脂質(zhì)囊泡介導的頂端傳送體的形成,將上皮細胞中的蛋白輸送到頂端膜中。 Martín-Belmonte等[8]研究表明,MAL 重要的功能為基底和頂端轉(zhuǎn)運,可在質(zhì)膜、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、高爾基體之間循環(huán)運送蛋白,對維持上皮細胞內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定性具有重大意義。
MAL 也是上皮細胞的頂端靶向過程中的重要組成部分,與細胞膜上酪氨酸激酶高效率表達有密切聯(lián)系, 研究表明,MAL 參與控制上皮細胞吸收和分泌功能,并可調(diào)控頂端膜蛋白的轉(zhuǎn)運與蛋白的分泌機制[9]。 其功能涉及上皮細胞中胞內(nèi)運輸,信號傳導等相關(guān)方面,與維持上皮細胞正常的形態(tài)和功能密切相關(guān)。 在去除MAL 的情況下,酪氨酸激酶在質(zhì)膜的功能將遭受破壞。 而酪氨酸激酶與多種細胞信號傳導機制有關(guān),在氣道炎癥反應和氣道重塑中都有十分重要的作用[10]。 MAL 缺失可以引起上皮細胞形態(tài)及功能的改變甚至惡性增殖過程。
中醫(yī)學認為[11]“外因誘發(fā),觸動伏痰,痰阻氣道,氣道壅塞”為哮喘的發(fā)病機制。 柴樸湯由小柴胡湯和半夏厚樸湯組成,全方有行氣、化痰、平喘的作用。 是中醫(yī)治療哮喘的方劑之一。
本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),柴樸湯可以減輕炎癥細胞的浸潤,抑制氣道的重塑[12]。 通過基因芯片技術(shù),對差異表達基因進行Pathway 及GO 分析,我們發(fā)現(xiàn)MAL 基因在哮喘大鼠模型中表達下調(diào), 而柴樸湯可以逆轉(zhuǎn)這一現(xiàn)象,且柴樸湯組中氣道炎癥程度及氣道重塑情況都較哮喘模型組減輕,說明柴樸湯治療哮喘的作用靶點可能與MAL 有關(guān)[2]。而MAL基因在氣道上皮細胞中表達較為顯著,與上皮細胞內(nèi)運輸、信號傳導等功能關(guān)系密切,因此我們推測MAL 通過維持氣道上皮細胞的正常形態(tài)和功能,進而抑制哮喘發(fā)生過程中上皮細胞產(chǎn)生細胞因子及炎癥介質(zhì)過程, 從而減弱上皮細胞的炎癥反應,以及炎癥所致的氣道上皮細胞纖維化、氣道重塑的相關(guān)病理變化和發(fā)展。MAL 表達下降則導致氣道上皮細胞正常極性發(fā)生改變,從而使氣道內(nèi)外環(huán)境的第一道物理屏障即氣道上皮發(fā)生了一系列的生理改變,導致哮喘發(fā)生、發(fā)展。
本實驗結(jié)果表明:哮喘血清可誘導氣道上皮細胞中MAL 的表達下調(diào), 加重氣道上皮的炎癥反應及重塑情況,而柴樸湯上調(diào)MAL 的表達,從而維護氣道上皮的正常結(jié)構(gòu)和功能。 但柴樸湯上調(diào)MAL表達的具體機制,仍有待進一步實驗。
[1]Payne DN,Rogers AV,Adlehoth E,et al. Earlythickening of the reticular basement membrane in children with difficult asthma1[J]. Am J Re spir Crit Care Med,2003,167(1):78-82.
[2]劉 鑫,熊 花.基因芯片技術(shù)篩選哮喘大鼠差異表達基因的研究[J].中國現(xiàn)代醫(yī)學雜志,2013,23(10):10-15.
[3]張維溪,李昌崇,程曉明,等.哮喘小鼠支氣管MIP-1α、RANTES基因和蛋白的表達[J].中國病理生理雜志,2004,20(5):858-861.
[4]Iwama H,Amagaya S,Ogihara Y. Eff ect of sho saiko to a japanese and chinese traditiona l herbal medicinl mix ture,on the mitogenic activity of lipopoly saccha ride:a new pharmacological testing method. Journal of Ethnopharmacology,1987,21:45-53.
[5]Nakagome K,Nagata M. Pathogenesis of airway inflammation in bronchial asthma [J]. Auris Nasus Larynx,2011,38(5):555-563.
[6]Holgate ST,Davies DE. Rethinkingthe pathogenesis of asthma[J]. Immunity,2009,31(3):362-367.
[7]Alonso MA,Weissman SM. cDNA cloning and sequence of MAL,ahydrophobic protein associated with human T-cell differentiation[J]. Proc Natl Acad Sci USA,1987,84(7):1 997-2 001.
[8]Martín-Belmonte F,Puertollano R,Millán J, et al. The MAL proteolipid is necessary for the overall apical delivery of membrane proteins in the polarized epithelial Madin-Darby canine kidney and fischer rat thyroid cell lines [J]. Mol Biol Cell,2000,11(6):2 033-2 045.
[9]Kamsteeg EJ,Duffield AS,Konings IB, et al. MALdecreases the internalization of the aquaporin-2 water channel [J]. PNAS,2007,104(42):16 696-16 701.
[10]Wong WSF,Koh DSK. Advances in immunopharmacology of asthma [J]. Biochem pharmacol,2000(59):1 323-1 335.
[11]歐正武,帥明華.哮喘伏痰新識[J].湖南中醫(yī)學院學報,1998,18(4):25.
[12]黃 艷,劉 鑫,戴愛國,等.柴樸湯對卵蛋白誘導豚鼠哮喘的干預作用與對核因子-κB 的影響[J].中醫(yī)藥導報,2007,13(6):1-3.