卓婉清 臘紅桂
摘 要 DNA甲基化及去甲基化是表觀遺傳的重要標(biāo)志,廣泛存在于細(xì)菌、動(dòng)物、植物中,在控制轉(zhuǎn)座子轉(zhuǎn)錄沉默、調(diào)控基因表達(dá)(X染色體失活,基因印跡,副突變)、維持植物發(fā)育等方面發(fā)揮重要作用。DNA表觀修飾不改變基因序列,僅改變堿基修飾,并通過有絲分裂或者無絲分裂在后代中遺傳。DNA甲基化是在甲基轉(zhuǎn)移酶作用下,以S腺苷甲硫氨酸為甲基供體,使DNA胞嘧啶發(fā)生甲基化。研究發(fā)現(xiàn),DNA去甲基化普遍存在于生物體內(nèi),在植物中,DNA糖基化酶介導(dǎo)的堿基切除修復(fù)機(jī)制被發(fā)現(xiàn)?;诖?,對(duì)模式植物擬南芥中存在的DNA甲基化及去甲基化機(jī)制進(jìn)行綜述。
關(guān)鍵詞 DNA甲基化;DNA去甲基化;表觀遺傳學(xué)
中圖分類號(hào):Q943 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A 文章編號(hào):1673-890X(2015)09-129-05
表觀遺傳學(xué)(Epigenetics)的詞根最早出現(xiàn)于2000多a前,亞里士多德提出后生理論(The Theory of Epigenesis)。直到1975年,Holiday.R對(duì)表觀遺傳學(xué)進(jìn)行了較為準(zhǔn)確的解釋,他認(rèn)為,表觀遺傳學(xué)不僅在發(fā)育過程,而且應(yīng)該在成體階段研究可遺傳的基因表達(dá)改變[1]。經(jīng)典遺傳學(xué)認(rèn)為,核酸是遺傳的分子基礎(chǔ),生命的遺傳信息都是由核酸序列決定的。然而隨著現(xiàn)代分子遺傳學(xué)的發(fā)展,人們發(fā)現(xiàn),不僅DNA序列包含遺傳信息,核苷酸、組蛋白、染色質(zhì)水平的修飾也會(huì)造成基因表達(dá)模式的改變,并可以在后代中穩(wěn)定表達(dá)。
DNA甲基化是最常見的表觀遺傳現(xiàn)象,常見的DNA甲基化發(fā)生在DNA鏈上的胞嘧啶第五位碳原子和甲基間的共價(jià)結(jié)合,胞嘧啶被修飾為5甲基胞嘧啶(5mC)。與之相反,DNA去甲基化則是指5甲基胞嘧啶(5mC)被胞嘧啶取代的過程。
1 擬南芥DNA甲基化模式
在擬南芥中,DNA甲基化包括從頭開始甲基化及維持性甲基化。從頭開始甲基化是指DNA兩條鏈都沒有甲基化,通過甲基轉(zhuǎn)移酶(DNMTs)先使其中一條鏈甲基化,然后再使另一條鏈甲基化。維持性甲基化指DNA中已有一條鏈發(fā)生了甲基化,在DNA復(fù)制過程中通過甲基轉(zhuǎn)移酶來維持甲基化狀態(tài)[2]。DNA甲基化主要發(fā)生在對(duì)稱的CG,CHG序列和不對(duì)稱CHH序列(H代表A,G,C,T)。其中CG甲基化的維持由DNA甲基轉(zhuǎn)移酶MET1( DNMT1-like enzyme )調(diào)控,CHG由CMT3植物特異甲基轉(zhuǎn)移酶來維持[3,4],通過與KYP(H3K9me2甲基化轉(zhuǎn)移酶)形成回路,維持CHG甲基化[5]。不對(duì)稱的CHH甲基化在復(fù)制過程中不能保持,由RdDM(RNA介導(dǎo)的DNA甲基化)通道的甲基轉(zhuǎn)移酶DRM1和DRM2 發(fā)揮作用而形成[6]。新的研究發(fā)現(xiàn),在met1和cmt3缺失突變體中,CHH基因組水平甲基化有更大的影響,相較于drm1和drm2突變體,這說明CMT3和MET1對(duì)于CHH甲基化可能有一定作用。此外維持CG,CHG甲基化可能也需要DRM1和DRM2作用[7]。擬南芥甲基化位點(diǎn)中,1/3位點(diǎn)與siRNAs 相關(guān)[8],剩下2/3位點(diǎn)獨(dú)立于siRNAs。甲基轉(zhuǎn)移酶可以靶向依賴siRNA(siRNA-dependent)通道和不依賴siRNA (siRNA-independent)通道實(shí)現(xiàn)CG或者非CG甲基化。
1.1 MET1介導(dǎo)的CG甲基化
MET1具有與哺乳動(dòng)物DNMTs相同的結(jié)構(gòu)域,在DNA復(fù)制過程中,發(fā)揮DNA甲基轉(zhuǎn)移酶作用維持植物CG甲基化。此外,met1突變體表現(xiàn)出明顯的花期延遲現(xiàn)象[9],且通過全基因組甲基化分析發(fā)現(xiàn)其對(duì)于非CG甲基化水平也有一定影響。
1.2 CMT3介導(dǎo)的CHG甲基化
CMT家族含有染色質(zhì)結(jié)合結(jié)構(gòu)域編碼植物特異甲基轉(zhuǎn)移酶,具有3個(gè)成員——CMT1、CMT2和CMT3,主要參與維持CHG甲基化。擬南芥中,通過對(duì)CMT3及KYP組蛋白甲基轉(zhuǎn)移酶進(jìn)行結(jié)構(gòu)分析,揭示CMT3與KYP形成協(xié)同反饋回路共同維持CHG甲基化及TE轉(zhuǎn)座子沉寂[10]。KYP被招募到CHG甲基化位點(diǎn)通過SET和SRA結(jié)構(gòu)域;同時(shí),CMT3的BAH結(jié)構(gòu)域識(shí)別H3K9me2甲基化位點(diǎn),招募CMT3形成CHG甲基化[11,12]。
1.3 RdDM介導(dǎo)的CHH甲基化
在擬南芥中,24個(gè)核苷酸大小的小干擾RNA (24-nt siRNAs)和長鏈非編碼RNA指導(dǎo)的重新開始DNA甲基化及轉(zhuǎn)錄沉寂過程即為RNA指導(dǎo)的DNA甲基化(RdDM)。RNA介導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄基因沉寂是一個(gè)保守的現(xiàn)象,在真菌、植物、動(dòng)物中都會(huì)發(fā)生。對(duì)于許多細(xì)胞內(nèi)功能如轉(zhuǎn)座子沉寂,基因組穩(wěn)定性,細(xì)胞保持等功能維持具有一定作用[13,14]。RdDM模型目前認(rèn)為:RNA聚合酶Pol IV 產(chǎn)生單鏈RNAs 作為siRNAs前體,Pol IV與RNA依賴的RNA聚合酶II(RDR2)緊密聯(lián)系,RDR2對(duì)Pol IV的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物加工成雙鏈RNA,這個(gè)過程借助ATP依賴的染色質(zhì)重塑因子CLSY1 作用。dsRNAs 被DCL3酶切成 24-nt siRNAs小片段,通過HEN1作用使siRNAs甲基化。單鏈siRNAs與AGO4或者AGO6[15]形成RdDM 效應(yīng)因子復(fù)合物。AGO4復(fù)合物結(jié)合于RNA聚合酶Pol V ;同時(shí),Pol V轉(zhuǎn)錄需要蛋白復(fù)合物DDR(包括DRD1、DMS3、RDM1)。其中,DRD1 是ATP依賴的染色質(zhì)調(diào)控因子,DMS3 是黏連蛋白類似物, RDM1 具有單鏈DNA結(jié)合活性。RDM1是RdDM 效應(yīng)因子復(fù)合物的一部分,既與AGO4 相聯(lián)系又與重新開始的甲基轉(zhuǎn)移酶DRM2 一起催化CG, CHG和CHH甲基化的形成。Pol V轉(zhuǎn)錄物的進(jìn)一步擴(kuò)增需要一些RNA結(jié)合蛋白,其中SPT5L/KTF1被招募到Pol V 轉(zhuǎn)錄獨(dú)立于AGO4因子,起著穩(wěn)定效應(yīng)因子復(fù)合物作用[16]。IDN蛋白復(fù)合物也結(jié)合于 Pol V 轉(zhuǎn)錄物招募 SWI/SNF染色質(zhì)重塑復(fù)合物,一起參與異染色質(zhì)形成。而最近又發(fā)現(xiàn),DTF1識(shí)別組蛋白H3K9甲基化,與CLSY1 相互作用在RdDM途徑上游發(fā)揮作用[17]。
2 擬南芥DNA去甲基化模式
DNA去甲基化包括被動(dòng)去甲基化和主動(dòng)去甲基化。被動(dòng)去甲化發(fā)生在DNA復(fù)制過程中,DNA甲基轉(zhuǎn)移酶不活躍,導(dǎo)致未被甲基化的位點(diǎn)保留在新合成的鏈中。而活躍的去甲基化獨(dú)立于DNA復(fù)制,存在5種可能的機(jī)制DNA糖基化酶初始的堿基切除修復(fù)機(jī)制、脫氨基作用及G/T堿基錯(cuò)配修復(fù)機(jī)制、核酸切除修復(fù)機(jī)制、氧化去甲基化機(jī)制及水解去甲基化[18]。在擬南芥中研究進(jìn)展主要集中于DNA糖基化酶初始的堿基切除修復(fù)及氧化去甲基化兩個(gè)機(jī)制上。其中,DNA糖基化酶家族中最先發(fā)現(xiàn)ROS1基因,之后DML2 和DML3等與ROS1功能類似的基因被發(fā)現(xiàn),也發(fā)揮著去甲基化作用。目前認(rèn)為 ROS1雙官能團(tuán)酶切除甲基,切割碳鏈暴露缺口,產(chǎn)生脫堿基位點(diǎn),ZDP和APE1L將3'磷酸變成3'羥基,最后通過DNA聚合酶和DNA連接酶進(jìn)行缺口修復(fù),使甲基化位點(diǎn)脫甲基化[18-20]。ROS1是該通道中發(fā)揮作用的主要功能蛋白[19],那么ROS1是怎么靶向特異的位點(diǎn)?最近研究表明,甲基結(jié)合蛋白MBD7特異結(jié)合于高度甲基化的CG位點(diǎn),并通過與IDM2和IDM3的相互作用,招募組蛋白乙酰轉(zhuǎn)移酶IDM1催化H3K18和H3K23的乙?;痆21,22],進(jìn)而招募去甲基化酶ROS1和其他去甲基化酶來限制DNA甲基化的延伸,防止基因沉默。氧化去甲基化機(jī)制揭示JmjC 蛋白對(duì)組蛋白H3K9和H3K36甲基化進(jìn)行氧化去甲基化。在擬南芥中,JmjC 組蛋白去甲基化酶相關(guān)蛋白家族的成員 IBM1被發(fā)現(xiàn),使組蛋白H3K9去甲基化,阻止DNA中BNS(BONSAI ——位點(diǎn)高度甲基化[23,24] ,研究還發(fā)現(xiàn)負(fù)責(zé)可變剪切的EDM2等蛋白[25]通過調(diào)節(jié)H3K9去甲基化酶IBM1的表達(dá)參與DNA去甲基化。
3 擬南芥DNA去甲基化相關(guān)的酶
3.1 ROS1(Repressor Of Silencing 1)
ROS1基因編碼DNA去甲基化酶,是一個(gè)雙官能團(tuán)蛋白,既糖基化DNA又發(fā)揮裂解酶作用裂解DNA,對(duì)于維持轉(zhuǎn)基因及同源內(nèi)源基因的表達(dá)非常重要。ROS1通過抑制啟動(dòng)子甲基化來抑制RD29A-LUC轉(zhuǎn)基因沉寂及內(nèi)源基因沉寂[19]。在ROS1活性缺失的情況下,RdDM介導(dǎo)特異位點(diǎn)高度甲基化并使轉(zhuǎn)錄沉寂。
3.2 IDM1(Increased DNA Methylation 1)
IDM1,擬南芥DNA去甲基化的調(diào)控因子,對(duì)于防止ROS1調(diào)控的同源多拷貝基因及重復(fù)序列基因的高度甲基化非常重要。通過亞硫酸鹽測(cè)序發(fā)現(xiàn)在idm1突變體中造成擬南芥基因組DNA甲基化升高的位點(diǎn)與ros1突變體產(chǎn)生的甲基化位點(diǎn)有較高的重合度,推測(cè)IDM1參與ROS1介導(dǎo)的去甲基化調(diào)控通路。 IDM1 結(jié)合于染色質(zhì)中缺乏組蛋白H3K4二甲基及三甲基位點(diǎn),使組蛋白H3乙?;瘎?chuàng)造一個(gè)染色質(zhì)環(huán)境為后續(xù)ROS1發(fā)揮作用。IDM1 是一個(gè)組蛋白H3乙?;D(zhuǎn)移酶,具有三個(gè)結(jié)構(gòu)域。通過DNA甲基化識(shí)別MBD結(jié)構(gòu)域識(shí)別CG甲基化位點(diǎn),植物同源PHD結(jié)構(gòu)域識(shí)別未被甲基化的組蛋白H3K4表觀遺傳特征,組蛋白乙酰基轉(zhuǎn)移酶HAT結(jié)構(gòu)域使組蛋白H3K18和H3K23乙?;痆26]。由于IDM1與ROS1不能共定位,推測(cè)一個(gè)未知的與ROS1相互作用的蛋白可能識(shí)別乙?;腍3K18 和H3K23 標(biāo)志,招募ROS1靶向特異位點(diǎn)進(jìn)行DNA去甲基化作用。
3.3 IDM2及IDM3(Increased DNA methylation 2 and Increased DNA methylation 3)
IDM2 屬于高度保守的ACD蛋白家族,ACD蛋白最早在動(dòng)物中發(fā)現(xiàn),在各種細(xì)胞內(nèi)進(jìn)程及抵抗逆境病害等方面有著重要作用[27,28,29],在植物當(dāng)中大部分ACD蛋白屬于熱休克蛋白[30] (sHSPs).大量研究表明ACD蛋白作為分子伴侶發(fā)揮作用[27] ,IDM2是一個(gè)編碼α-晶體結(jié)構(gòu)域的核定位點(diǎn)白其轉(zhuǎn)錄水平并不受熱激影響,與IDM1具有相互作用證明它可能作為分子伴侶與IDM1一起參與組蛋白H3K18 乙?;?,在DNA活躍去甲基化及阻止轉(zhuǎn)錄沉寂中發(fā)揮作用[31]。IDM3與IDM2類似,具有α-晶體結(jié)構(gòu)域且與MBD7具有相互作用[21]。
3.4 MBD7(Methyl-CpG-Binding Domain)
之前研究表明,DNA活躍去甲基化主要是由ROS1蛋白發(fā)揮主要作用,但是ROS1蛋白怎么靶向特異的甲基化位點(diǎn)并不清楚,而研究發(fā)現(xiàn)MBD7在特異識(shí)別甲基化位點(diǎn)發(fā)揮作用。MBD7蛋白的N端為甲基化識(shí)別結(jié)構(gòu)域特異性識(shí)別CG甲基化位點(diǎn),C端有很強(qiáng)的染色質(zhì)識(shí)別能力。與IDM2及IDM3具有相互作用,進(jìn)一步招募IDM1[26] 及其他一些蛋白進(jìn)行組蛋白H3K18 和H3K23乙酰化,為ROS1發(fā)揮作用創(chuàng)造染色質(zhì)環(huán)境(圖1)。mbd7 突變體導(dǎo)致NPTII轉(zhuǎn)基因沉寂 但不影響ProRD29A:LUC轉(zhuǎn)基因沉寂,全基因組甲基化位點(diǎn)分析mbd7突變體甲基化位點(diǎn)與ros1突變體造成的甲基化位點(diǎn)有部分重合,推測(cè)MBD7可能是ROS1調(diào)控通道中的蛋白[22],且MBD7靶向靠近染色體中心高密度DNA甲基化位點(diǎn), 同時(shí)影響Gypsy類型反轉(zhuǎn)座子活動(dòng)。
3.5 ZDP(Zinc Finger DNA 3Phosphoesterase)
ZDP突變體導(dǎo)致DNA高度甲基化及報(bào)告基因轉(zhuǎn)錄沉寂,全基因組甲基化分析zdp突變體使上百個(gè)內(nèi)源基因位點(diǎn)高度甲基化,并且發(fā)現(xiàn)DNA磷酸化酶ZDP與ROS1具有相互作用,是ROS1活躍去甲基化分支的下游蛋白[32]。ROS1作用位點(diǎn)后產(chǎn)生單核苷酸缺口,ZDP將 3'磷酸變?yōu)?'羥基,通過單鏈核苷酸切除和長鏈DNA合成[33,34] ,使后續(xù)發(fā)生DNA聚合及連接反應(yīng)修復(fù)缺口,實(shí)現(xiàn)去甲基化過程。最近又發(fā)現(xiàn)ROS1作用后的位點(diǎn)并不繼續(xù)β,δ裂解而仍然是β裂解產(chǎn)物,產(chǎn)生3'不飽和醛基,不依賴于ZDP活動(dòng),可能通過AP 核酸內(nèi)切酶 (APEs)發(fā)揮作用。
3.6 APE1L(Apurinic/Apyrimidinic Endonuclease)
APE1L,擬南芥AP核酸內(nèi)切酶的一種,與ROS1蛋白在體內(nèi)共定位。ROS1蛋白β裂解產(chǎn)生3'不飽和醛基,隨后APE1L將不飽和醛基轉(zhuǎn)換成3'羥基。生化數(shù)據(jù)表明APE1L有微弱的3'磷酸活性,證明APE1L屬于ROS1調(diào)控通道另一分支的DNA活躍去甲基化下游蛋白,獨(dú)立于ZDP分支通道(圖2)。通過對(duì)突變體ape1l全基因組高度甲基化檢測(cè)[20]。推測(cè)APE1L是一個(gè)多功能酶,可能與ZDP一起作用于DME糖基化酶調(diào)控通道,控制胚乳中印記基因及種子的生長。
3.7 IBM1(Increase in BONSAI Methylation 1)
IBM1是組蛋白H3K9me2去甲基化酶,在擬南芥中一方面,甲基轉(zhuǎn)移酶CMT3與組蛋白甲基化酶KYP產(chǎn)生CHG甲基化及組蛋白H3K9me2;另一方面,由存在的CG甲基化招募IBM1發(fā)揮去除KYP產(chǎn)生的H3K9me2作用(圖3)。IBM1調(diào)控的甲基化位點(diǎn)位于IBM1基因的一段很長且高度保守的內(nèi)含子上(BONSAI 位點(diǎn)),編碼兩種mRNA變體,長鏈變體(IBM1-L)和短鏈變體(IBM1-S)。IBM-L編碼有功能的IBM1蛋白包含jmjC 結(jié)構(gòu)域[24],有實(shí)驗(yàn)證明在met1突變體中由于CG甲基化缺失,短鏈變體(IBM1-S) 表達(dá)量不受影響,長鏈變體(IBM1-L) 的表達(dá)量下調(diào),導(dǎo)致H3K9me2的聚集。同時(shí),ROS1去甲基化酶的活性也受到影響[23,24]。因此,通過控制H3K9去甲基化酶及DNA去甲基化酶活性,形成自我調(diào)控的回路維持CG甲基化及組蛋白修飾。
3.8 EDM2(Enhanced Downy Mildew 2)
染色質(zhì)調(diào)控因子EDM2在阻止轉(zhuǎn)錄沉寂和DNA高度甲基化方面起作用,包含植物同源結(jié)構(gòu)域識(shí)別活躍的或者受抑制的組蛋白甲基化標(biāo)志。EDM2通過促進(jìn)mRNA轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生3'ployA末端來調(diào)控組蛋白H3K9去甲基化酶基因IBM1的表達(dá),一起控制GHG甲基化和轉(zhuǎn)錄基因沉寂。edm2突變體與ibm1及DNA糖基化酶三突變體rdd重合上百個(gè)高度甲基化區(qū)域,其中包括與ROS1靶向區(qū)域[25]。研究認(rèn)為類似于IDM1,EDM2和IBM1可能一起創(chuàng)造合適的染色質(zhì)環(huán)境以便后續(xù)ROS1發(fā)揮作用,同時(shí)還發(fā)現(xiàn)EDM2在一些轉(zhuǎn)座子的沉寂方面也有著一定的作用。
4 結(jié)語與展望
DNA甲基化、組蛋白修飾、非編碼RNA調(diào)控、染色質(zhì)結(jié)構(gòu)重塑、RNA干擾、基因組印跡、基因沉默、X染色體不活躍等都屬于表觀遺傳學(xué)范疇。其中,DNA甲基化是表觀遺傳學(xué)重要的標(biāo)志之一,發(fā)展了各種方法檢測(cè)DNA甲基化水平。在擬南芥中主要應(yīng)用了甲基敏感酶進(jìn)行核酸雜交(Southern blotting)及酶切PCR(CHOP PCR)檢測(cè),單個(gè)位點(diǎn)重亞硫酸鹽測(cè)序(Bisulfite sequencing),染色質(zhì)免疫共沉淀序列分析(ChIP-seq),全基因組重亞硫酸鹽測(cè)序(Whole genome bisulfite sequencing)等,為進(jìn)行相關(guān)研究提供了極大便利。目前,研究DNA甲基化對(duì)于控制轉(zhuǎn)座子活動(dòng)、植物生長發(fā)育、調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄基因表達(dá)、如X染色體不激活、基因印跡等方面起著重要的生物學(xué)作用。對(duì)于DNA甲基化機(jī)制的研究也逐漸趨于完善,但是對(duì)于DNA甲基化與其他表觀遺傳調(diào)控機(jī)制如組蛋白修飾,染色質(zhì)結(jié)構(gòu)等方面的關(guān)系仍然不是很清楚,這將是今后研究的一個(gè)重點(diǎn)。
與DNA甲基化相反,DNA去甲基化在阻止轉(zhuǎn)錄基因沉寂,防止特異位點(diǎn)高度甲基化等方面發(fā)揮重要作用。目前,對(duì)于DNA去甲基化的研究上不夠完善,如ROS1糖基化酶的堿基切除修復(fù)機(jī)制的下游機(jī)制如何進(jìn)行?是否存在其他獨(dú)立于ROS1的活躍去甲基化機(jī)制及其如何發(fā)揮作用等方面尚不清楚。
DNA甲基化的水平主要由甲基化和去甲基化這兩個(gè)途經(jīng)來協(xié)同調(diào)控。因此,有關(guān)DNA甲基化及去甲基化研究必將有力地促進(jìn)表觀遺傳學(xué)的研究進(jìn)程,進(jìn)一步提高人們對(duì)于表觀遺傳學(xué)的認(rèn)識(shí),為其將來的應(yīng)用奠定堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn)
[1]薛京倫,汪旭.表觀遺傳學(xué):原理、技術(shù)與實(shí)踐[M].上海:科學(xué)技術(shù)出版社,2006:5-6.
[2]李娜,張旸.植物DNA甲基化進(jìn)展[J].植物生理學(xué)報(bào),2012,48(11):1027-1036 .
[3]He XJ,Chen TP,Zhu JK.Regulation and Function of DNA Methylation in Plants and Animals[J].Cell Res,2011,21(3):442-465.
[4]Law JA,Jacobsen SE.Establishing,Maintaining and Modifying DNA Methylation Patterns in Plants and Animals[J].Nat Rev Genet,2010,11(3):204-220.
[5]Henderson IR,Jacobsen SE.Epigenetic Inheritance in Plants[J].Nature,2007(447):418-424.
[6]Huettel B,Kanno T,Daxinger L,et al.Endogenous Targets of RNA-directed DNA Methylation and Pol IV in Arabidopsis[J].EMBO J,2006(25):2828-2836.
[7]Zhu JK.Epigenome Sequencing Comes of Age[J].Cell,2008(133):395-397.
[8]Lister R,O'Malley RC,Tonti-Filippini J,et al.Highly Integrated Single-base Resolution Maps of the Epigenome in Arabidopsis[J].Cell,2008(133):523-536.
[9]Kankel MW,Ramsey DE,Stokes TL,et al.Arabidopsis MET1 Cytosine Methyltransferase Mutants[J].Genetics,2003(163):1109-1122.
[10]Du J,Zhong X,Bernatavichute YV,et al.Dual Binding of Chromomethylase Domains to H3K9me2-containing Nucleosomes Directs DNA Methylation in Plants[J].Cell,2012(151):167-180.
[11]Johnson LM,Bostick M,Zhang X,et al.The SRA Methyl-cytosine-binding Domain Links DNA and Histone Methylation[J].Curr Biol,2007(17):379-384.
[12]Cui X,Cao X.Epigenetic Regulation and Functional Exaptation of Transposable Elements in Higher Plants[J]. Curr Opin Plant Biol,2014(21):83-88.
[13]Zhang H,He X,Zhu JK.RNA-directed DNA Methylation in Plants:Where to start?[J].RNA Biol,2013(10):1593-1596.
[14]Zhang HM,Zhu JK.RNA-directed DNA methylation[J].Curr Opin Plant Biol,2011,14(2):142-147.
[15]Zheng X,Zhu J,Kapoor A,et al Role of Arabidopsis AGO6 in siRNA Accumulation,DNA Methylation and Transcriptional Gene Silencing[J].EMBO J,2007(26):1691-1701.
[16]He XJ,Hsu YF,Zhu S,et al.An Effector of RNA-directed DNA Methylation in Arabidopsis is an ARGONAUTE 4- and RNA-binding Protein[J].Cell,2009(137):498-508.
[17]Zhang H,Ma ZY,Zeng L,et al. DTF1 is a Core Component of RNA-directed DNA Methylation and May Assist in the Recruitment of Pol IV[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2013(110):8290-8295.
[18]Zhu JK.Active DNA demethylation Mediated by DNA Glycosylases[J].Annu Rev Genet,2009(43):143-166.
[19]Gong Z,Morales-Ruiz T,Ariza RR,et al. ROS1,a repressor of transcriptional gene silencing in Arabidopsis, encodes a DNA glycosylase/lyase[J].Cell,2002(111):803-814.
[20]Li Y,Cordoba-Canero D,Qian W,et al. An AP Endonuclease Functions in Active DNA Dimethylation and Gene Imprinting in Arabidopsis[J].PLoS Genet,2015(11):1004905.
[21]Lang Z,Lei M,Wang X,et al.The Methyl-CpG-Binding Protein MBD7 Facilitates Active DNA Demethylation to Limit DNA Hyper-Methylation and Transcriptional Gene Silencing[J].Mol Cell,2015(57):971-983.
[22]Wang C,Dong X,Jin D,et al.Methyl-CpG-Binding Domain Protein MBD7 Is Required for Active DNA Demethylation in Arabidopsis[J].Plant Physiol,2015(167):905-914.
[23]Rigal M,Kevei Z,Pelissier T,et al.DNA Methylation in an Intron of the IBM1 Histone Demethylase Gene Stabilizes Chromatin Modification Patterns[J].EMBO J,2012(31):2981-2993.
[24]Fan D,Dai Y,Wang X,et al.IBM1,a JmjC Domain-containing Histone Demethylase,is Involved in the Regulation of RNA-directed DNA Methylation Through the Epigenetic Control of RDR2 and DCL3 Expression in Arabidopsis[J].Nucleic Acids Res,2012(40):8905-8916.
[25]Lei M,La H,Lu K,et al.Arabidopsis EDM2 Promotes IBM1 Distal Polyadenylation and Regulates Genome DNA mMethylation Patterns[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,2014(111):527-532.
[26]Qian W,Miki D,Zhang H,et al.A Histone Acetyltransferase Regulates Active DNA Demethylation in Arabidopsis[J].Science,2012(336):1445-1448.
[27]Basha E,O'Neill H,Vierling E.Small Heat Shock Proteins and Alpha-crystallins:Dynamic Proteins with Flexible Functions[J].Trends Biochem Sci,2012(37):106-117.
[28]Hilton GR,Lioe H,Stengel F,et al.Small Heat-shock Proteins:Paramedics of the Cell[J].Top Curr Chem,2013(328):69-98.
[29]Welsh MJ,Gaestel M.Small Heat-shock Protein Family:Function in Health and Disease[J].Ann N Y Acad Sci,1998(851):28-35.
[30]Scharf KD,Siddique M,Vierling E.The Expanding Family of Arabidopsis Thaliana Small Heat Stress Proteins and A New Family of Proteins Containing Alpha-crystallin Domains(Acd proteins)[J].Cell Stress Chaperones,2001(6):225-237.
[31]Qian W,Miki D,Lei M,et al.Regulation of Active DNA Demethylation by an α-crystallin Domain Protein in Arabidopsis[J]. Mol Cell,2014(55):361-371.
[32]Martinez-Macias MI,Qian W,Miki D,et al. A DNA 3' Phosphatase Functions in Active DNA Demethylation in Arabidopsis[J].Mol Cell,2012(45):357-370.
[33]Cordoba-Canero D,Morales-Ruiz T,Roldan-Arjona T,et al.Single-nucleotide and Long-patch Base Excision Repair of DNA Damage in Plants[J]. Plant J,2009(60):716-28.
[34]Cordoba-Canero D,Dubois E,Ariza RR,et al.Arabidopsis Uracil DNA Glycosylase (UNG)is Required for Base Excision Repair of Uracil and Increases Plant Sensitivity to 5-fluorouracil[J].J Biol Chem,2010(285):7475-7483.
(責(zé)任編輯:劉昀)