郝彥明,王洪震 ,賈正平 ,徐又佳,俞 晨
(1.江蘇省昆山市第一人民醫(yī)院關(guān)節(jié)科,江蘇 蘇州 215300; 2.蘇州大學(xué)附屬第二醫(yī)院骨科,江蘇 蘇州 215004)
目前,甲基強的松龍(MPSS)是臨床治療急性神經(jīng)損傷相對有效的藥物,對損傷早期有一定效果,但不良反應(yīng)大、后期效果不佳。因此,對于現(xiàn)階段交通事故及墜落傷導(dǎo)致的高發(fā)疾病神經(jīng)損傷,迫切需要其他藥物以得到更好的救治效果。我科研組通過動物大體研究發(fā)現(xiàn),促紅細胞生成素(EPO)對神經(jīng)系統(tǒng)損傷有明顯療效,其他學(xué)者同樣發(fā)現(xiàn)EPO用于神經(jīng)損傷早期及后期均能顯著降低繼發(fā)性炎性反應(yīng)及改善預(yù)后等。若將兩者聯(lián)合應(yīng)用,是否會得到更理想的效果,且以原代細胞為載體研究兩者聯(lián)合應(yīng)用對神經(jīng)細胞的作用目前尚未見報道。為此,筆者將MPSS與EPO聯(lián)用對星形膠質(zhì)細胞(AST)的作用進行了研究,現(xiàn)報道如下。
器械及儀器:眼科鑷,精細刀片,200目濾網(wǎng),小燒杯,離心管,離心機;37℃恒溫搖床,超凈工作臺,倒置顯微鏡,勻漿機,高速低溫離心機,分光光度儀,聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)儀,F(xiàn)R-200型紫外與可見光分析裝置。
試藥與動物:DMEM/F12培養(yǎng)基(Gibco公司);胎牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司);胰蛋白酶,多聚賴氨酸(Sigma公司);膠質(zhì)纖維酸性蛋白(GFAP)熒光抗體(Sigma公司);甲基強的松龍(MPSS,Pfizer Manufacturing Belgium NV公司,批號為H20080285);促紅細胞生成素(EPO,日本麒麟啤酒株式會社高崎醫(yī)藥工廠,進口藥品注冊證號J20060040);磷酸鹽緩沖液(PBS,自行配制)。新生SD大鼠(蘇州大學(xué)動物中心提供,動物合格證號SCXK2008-0005);GFAP引物、β-actin引物(生工生物工程<上海>股份有限公司);PCR試劑(Promega公司)。
星形膠質(zhì)細胞原代培養(yǎng):將新生3 d內(nèi)的SD大鼠靜脈血釋放、處死,取出大腦(盡量完整),在預(yù)冷的PBS中剝離腦膜,并以PBS沖洗3遍(去血細胞及雜質(zhì)),將大腦切碎,吹打均勻,以1 000 r/min的轉(zhuǎn)速離心10 min,取上清液,再次吹打均勻,10 min后過濾,按1.5×107計數(shù)接種于培養(yǎng)瓶(需提前1 d用0.01%多聚賴氨酸包被),置培養(yǎng)箱(5%CO2,95%O2,37 ℃ )中培養(yǎng),3 d 后換液,8 ~10 d 細胞可分裂增殖滿瓶壁,放于搖床(200 r/min,18 h)去除少突膠質(zhì)細胞和小膠質(zhì)細胞,換液培養(yǎng)1 d后傳代,即得到純度較高的星形膠質(zhì)細胞,取培養(yǎng)至第3代、第4代的細胞進行試驗。
分組及處理:將試驗用細胞分為8組,分別進行如下處理。正常對照組(A1組)細胞傳代后培養(yǎng)2 d,棄去培養(yǎng)基,更換新培養(yǎng)基培養(yǎng);正常細胞+MPSS組(A2組)細胞傳代后培養(yǎng)2 d,更換培養(yǎng)基,按 10 μmol/L 將 MPSS 加入并于新的培養(yǎng)基培養(yǎng)[1];正常細胞+EPO組(A3組)細胞傳代后培養(yǎng)2 d,更換培養(yǎng)基,按10 U/L將EPO加入并于新的培養(yǎng)基培養(yǎng)[2];正常細胞+MPSS+EPO組(A4組)細胞傳代后培養(yǎng)2 d,更換培養(yǎng)基,將 MPSS(10 μmol/L)與 EPO(10 U /L)加入并于新的培養(yǎng)基培養(yǎng);損傷組(B1組)細胞傳代后培養(yǎng)2 d,以PBS代替培養(yǎng)基培養(yǎng)3 h,再換新的培養(yǎng)基培養(yǎng);損傷細胞+MPSS組(B2組)細胞傳代后培養(yǎng)2 d,以PBS 代替培養(yǎng)基培養(yǎng) 3 h,將 MPSS(10 μmol/L)加入并于新的培養(yǎng)基培養(yǎng);損傷細胞+EPO組(B3組)細胞傳代后培養(yǎng)2 d,以PBS代替培養(yǎng)基培養(yǎng)3 h,將EPO(10 U/L)加入并于新的培養(yǎng)基培養(yǎng);損傷細胞+MPSS+EPO組(B4組)細胞傳代后培養(yǎng)2 d,以PBS代替培養(yǎng)基培養(yǎng) 3 h,將 MPSS(10 μmol/L)與 EPO(10 U /L)加入并于新的培養(yǎng)基培養(yǎng)。
星形膠質(zhì)細胞鑒定:以GFAP鑒定,采用免疫熒光染色并鑒定。免疫熒光顯微鏡觀察可見較明顯的細胞形態(tài),待星形膠質(zhì)細胞培養(yǎng)至第3代,細胞爬片3 d后用PBS洗3次(5 min)后,按熒光染色說明書染色、觀察并攝像。
MTT法檢測細胞活性:將傳代至第3代的細胞吹打均勻后,按照1×106/孔種植于96孔板,待細胞完全貼壁,按照上述分組分別制造試驗?zāi)P?;培養(yǎng)3 d后每孔加入MTT 20 μL,繼續(xù)培養(yǎng)4 h后,然后每孔加二甲基亞砜(DMSO)150 μL,振動器振蕩10 min;在酶聯(lián)免疫檢測儀上選用490 nm波長測定各孔吸光度值,記錄結(jié)果。
PCR法檢測GFAP的表達變化:將上述分組(共8組)細胞分別收集1×106,按PCR儀說明書操作步驟完成。GFAP和β-actin引物序列和擴增產(chǎn)物大小見表1。將各組電泳條帶通過Smartview-2001生物電泳圖象分析軟件進行吸光度分析,可得到試驗組與對照組各時間點GFAP mRNA的相對表達量。
采用SPSS 10.0統(tǒng)計軟件處理數(shù)據(jù),各組樣本均數(shù)間比較行t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
通過去纖維、血細胞、雜質(zhì),搖床,分離傳代方式培養(yǎng)方法,可得到高純度(純度超過95%)的星形膠質(zhì)細胞,待傳代至第3代,細胞突觸明顯變長,相互間交織成網(wǎng)狀,細胞純化度高,基本未見其他雜細胞(見圖1 A)。缺營養(yǎng)3 h后細胞形態(tài)已發(fā)生較明顯變化,如大部分細胞胞體變小,突觸變短,細胞間相互連接減少或消失,部分甚至呈空泡樣,個別細胞萎縮至呈圓形(見圖1 B)。
圖1 星形膠質(zhì)細胞倒置顯微鏡圖
因GFAP為星形膠質(zhì)細胞的特異性蛋白,GFAP染色可使星形膠質(zhì)細胞呈陽性,可清晰顯示正常星形膠質(zhì)細胞:胞體多數(shù)為三角形,胞膜光滑,邊界清楚,突觸長并多數(shù)相互連接;DAPI熒光染色可清晰顯示細胞核,多為藍色圓形,GFAP陽性細胞占總細胞數(shù)的比例在95%以上(見圖2)。
圖2 星形膠質(zhì)細胞熒光免疫化學(xué)染色圖
結(jié)果見表2和表3??梢?,B1組與A1組細胞活性有顯著性差異(P<0.05),故該細胞損傷模型制作成功;MPSS與EPO聯(lián)用及兩者單用對缺營養(yǎng)損傷后細胞活性有顯著性影響(P<0.05),單用MPSS、單用EPO與缺營養(yǎng)損傷后的細胞活性有顯著性差異(P<0.05),但單用MPSS與單用EPO組間細胞活性則無顯著性差異(P>0.05);MPSS與EPO聯(lián)用及兩者單用對正常細胞活性無顯著性影響(P>0.05),單用MPSS與單用EPO組間細胞活性也無顯著性差異(P>0.05)。
表2 各組細胞活性測定結(jié)果(吸光度值,MTT法)
表3 各組細胞活性測定結(jié)果比較
結(jié)果見表4、表5及圖3??梢?,各組細胞 GFAP mRNA表達水平比較,B1組與A1組有顯著性差異(P<0.05),故該細胞損傷模型制作成功;B4組比 B1組、B2組、B3組明顯升高,B2組、B3組比B1組也明顯升高,而B2組與B3組間則無明顯差異;A4組比A1組、A2組及A3組均無明顯差異;A2組、A3組比A1組及A2組比A3組間也無明顯差異。
表4 各組細胞GFAP mRNA表達水平測定結(jié)果(相對表達量,PCR法)
表5 各組細胞GFAP mRNA表達水平比較
圖3 各組細胞GFAP mRNA及βactin的電泳條帶
原代神經(jīng)細胞培養(yǎng)難度大,且細胞純化難度大,本研究中利用星形膠質(zhì)細胞在0.01%多聚賴氨酸包被過的培養(yǎng)皿貼附能力大于其他神經(jīng)細胞的原理純化得到星形膠質(zhì)細胞,通過反復(fù)吹打洗滌可去除血細胞;腦膜表面的纖維細胞要得到良好去除,必須完整剝離腦膜,故選擇乳鼠,迅速完整取出大腦,在PBS內(nèi)適當(dāng)浸泡后腦膜與腦實質(zhì)可較容易分離。試驗細胞純度鑒定采用GFAP。GFAP為特有細胞骨架蛋白,可作為星形膠質(zhì)細胞生理和病理情況下的特異性分子標(biāo)志,且可根據(jù)其表達評價細胞的損傷程度。已有研究發(fā)現(xiàn),在維持星形膠質(zhì)細胞的形態(tài)結(jié)構(gòu)及功能中,GFAP擔(dān)任重要作用,若阻滯GFAP的表達,細胞的生長、增殖均受到嚴(yán)重 影響 。Farooque 等[3]與 O′Brein 等[4]報道 ,在 急 性 脊 髓 損 傷(ASCI)模型大鼠可觀測到星形膠質(zhì)細胞體積變大,GFAP含量明顯增加。
糖皮質(zhì)激素對神經(jīng)系統(tǒng)的作用已有較多研究,但其對GFAP表達及合成的影響研究相對較少。O′Callaghan等[5]發(fā)現(xiàn),糖皮質(zhì)激素能抑制未損傷大鼠腦組織海馬區(qū)內(nèi)GFAP的合成,卻不能影響損傷后GFAP合成的增加。EPO對神經(jīng)系統(tǒng)的作用為目前研究的熱點,鑒于神經(jīng)細胞損傷后除糖皮質(zhì)激素大量沖擊治療暫無明顯有效的藥物,但大量糖皮質(zhì)激素應(yīng)用后會產(chǎn)生嚴(yán)重不良反應(yīng),故許多學(xué)者開始研究新的藥物或聯(lián)合應(yīng)用的效果。Villa等[2]通過動物模型研究證明,外源性的重組人促紅細胞生成素(rhEPO)能有效地通過血腦屏障,并能提供神經(jīng)保護。俞歐[6]認為,rhEPO不僅能糾正腎性貧血,還具有改善細胞營養(yǎng)狀態(tài)和抗炎作用,局部缺血可產(chǎn)生致炎因子、腫瘤壞死因子、白細胞介素-6,應(yīng)用rhEPO后炎性因子及腫瘤壞死因子可減少50%以上。Sirén等[7]研究發(fā)現(xiàn),EPO和EPO受體在損傷8~48 h的神經(jīng)細胞和血管內(nèi)皮細胞的表達水平明顯增加;且在損傷后12~24 h EPO受體上調(diào),到損傷后8 d EPO免疫反應(yīng)性減少,但顯示為EPO陽性的神經(jīng)元數(shù)目未發(fā)生變化,并在損傷周圍區(qū)大量血管顯示強EPO受體陽性,而在星形膠質(zhì)細胞中可見中度的EPO和EPO受體免疫反應(yīng)性表達;損傷后14 d,雖然血管內(nèi)皮細胞和神經(jīng)細胞的EPO免疫反應(yīng)性極弱,但EPO受體陽性仍持續(xù)不變。上述研究可證明,在神經(jīng)細胞及組織中不僅有EPO及EPO受體表達,且在損傷后表達可明顯改變,為EPO應(yīng)用于損傷神經(jīng)細胞能夠產(chǎn)生藥物作用提供了理論依據(jù)。
EPO與MPSS聯(lián)合應(yīng)用于神經(jīng)細胞已有學(xué)者進行了研究,但存在不少爭議,這為進一步的研究提供了思路及研究空間。Gorio等[8]的研究認為,EPO不可與MPSS聯(lián)用,因為MPSS有可能抑制EPO在脊髓損傷中的某些作用。Cetin等[9]的研究卻認為,EPO聯(lián)合MPSS治療神經(jīng)損傷,能更好地提高神經(jīng)功能恢復(fù)并改善組織病理學(xué)形態(tài)。王望曉[10]對照研究了采用MPSS與鼠神經(jīng)生長因子對視神經(jīng)損傷的效果。
本研究中采用的劑量 MPSS 為 10μmol/L[1],EPO 為 10U /L[2],結(jié)果顯示,MPSS與EPO聯(lián)用及兩者單用對缺營養(yǎng)損傷后星形膠質(zhì)細胞活性有顯著性影響,單用MPSS、單用EPO對缺營養(yǎng)損傷后細胞活性也有顯著性影響,但單用MPSS與單用EPO組間細胞活性則無顯著性差異;MPSS與EPO聯(lián)用及兩者單用對正常的星形膠質(zhì)細胞活性無顯著性影響,單用MPSS與單用EPO組間細胞活性也無顯著性差異。星形膠質(zhì)細胞表達或不表達或低表達MPSS受體與EPO受體,給予外源性MPSS或EPO時沒有相應(yīng)的受體可結(jié)合,不能激活相應(yīng)的信號通道。而損傷后的星形膠質(zhì)細胞MPSS受體及EPO受體大量表達,外源性MPSS或EPO可分別與相應(yīng)的受體結(jié)合,其作用途徑需進一步探討。MPSS與EPO聯(lián)用對缺營養(yǎng)損傷后的星形膠質(zhì)細胞活性改善比兩者單用效果更好,進一步推想,如要得到同樣療效,聯(lián)用時兩者的劑量是否會大大減少,從而可避免兩者的嚴(yán)重不良反應(yīng),如高劑量MPSS引起的傷口感染、肺炎、敗血癥乃至死亡等呼吸系統(tǒng)并發(fā)癥,MPSS的抗炎作用可能對神經(jīng)再生和軸突萌芽有不良反應(yīng),從而加重損傷后神經(jīng)系統(tǒng)的缺血性壞死。
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