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    上調(diào)miRNA145對肝癌細胞的作用及其機制研究*

    2015-03-30 12:20:06王寰昱王亞峰張昆松張朝暉張梓健黃陜州彭寶崗中山大學附屬第一醫(yī)院肝膽外科廣東廣州50080河南省人民醫(yī)院肝膽外科河南鄭州450000
    中國病理生理雜志 2015年6期
    關(guān)鍵詞:肝細胞癌細胞增殖細胞凋亡

    王寰昱,王亞峰,張昆松,張朝暉,張梓健,黃陜州,吳 健,彭寶崗,陳 東△,周 奇△(中山大學附屬第一醫(yī)院肝膽外科,廣東廣州50080;河南省人民醫(yī)院肝膽外科,河南鄭州450000)

    ?

    上調(diào)miRNA145對肝癌細胞的作用及其機制研究*

    王寰昱1▲,王亞峰2▲,張昆松1,張朝暉1,張梓健1,
    黃陜州1,吳健1,彭寶崗1,陳東1△,周奇1△
    (1中山大學附屬第一醫(yī)院肝膽外科,廣東廣州510080;2河南省人民醫(yī)院肝膽外科,河南鄭州450000)

    [摘要]目的:探討微小RNA145 (miRNA145)對肝癌細胞生長、凋亡及侵襲轉(zhuǎn)移的影響。方法:實驗將HepG2細胞隨機設置為3組:空白對照組、空質(zhì)粒組及轉(zhuǎn)染組,轉(zhuǎn)染后real-time PCR法檢測驗證各組細胞miRNA145及N-鈣黏蛋白(N-cadherin) mRNA的表達,并用Western blot檢測miRNA145目標蛋白N-鈣黏蛋白的表達,MTS增殖實驗檢測各組細胞的生長情況,流式細胞術(shù)檢測細胞周期及細胞凋亡率,Transwell法檢測各組細胞的侵襲轉(zhuǎn)移能力。結(jié)果: Real-time PCR結(jié)果證實轉(zhuǎn)染組細胞miRNA145表達比空質(zhì)粒組和空白對照組細胞明顯增多(P<0.05),同時N-鈣黏蛋白的表達在轉(zhuǎn)染組細胞中顯著減少(P<0.05) ;經(jīng)Western blot結(jié)果證實,轉(zhuǎn)染組細胞中N-鈣黏蛋白表達比空質(zhì)粒組和空白對照組細胞明顯減少(P<0.05) ;轉(zhuǎn)染組細胞活性在轉(zhuǎn)染后第2天、第3天均明顯下降,70.04%的細胞周期停止在G1期,轉(zhuǎn)染后HepG2細胞凋亡率明顯增高,細胞的侵襲轉(zhuǎn)移能力下降,差異均有統(tǒng)計學意義。結(jié)論:上調(diào)miRNA145表達能有效抑制肝癌細胞的細胞周期進展和侵襲轉(zhuǎn)移,促進細胞凋亡。

    [關(guān)鍵詞]微小RNA145;肝細胞癌;細胞增殖;細胞凋亡;細胞侵襲

    [修回日期]2015-05-04

    ▲并列第1作者

    Role of up-regulated microRNA145 in viability,apoptosis,invasion and metastasis of hepatoma cells

    WANG Huan-yu1,WANG Ya-feng2,ZHANG Kun-song1,ZHANG Chao-hui1,ZHANG Zijian1,HUANG Shan-zhou1,WU Jian1,PENG Bao-gang1,CHEN Dong1,ZHOU Qi1
    (1Department of Hepatobiliary Surgery,The First Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University,Guangzhou 510080,China;2Department of Hepatobiliary Surgery,Henan Provincial People’s Hospital,Zhengzhou 450000,China.E-mail: hnzhouqi @163.com; gzbobsums@ gmail.com)

    [ABSTRACT]AIM: To investigate the effects of microRNA145 (miRNA145) on the viability,apoptosis,invasion and metastasis of hepatoma HepG2 cells.METHODS: HepG2 cells were randomly allocated into 3 groups: blank control group,empty mimic transfected group and miRNA145 mimic transfected group.Under the induction of LipofectamineTM2000,the recombinant was transfected into HepG2 cells.After transfection,the expression level of miRNA145 was detected by real-time PCR.The protein level of N-cadherin and the mRNA expression levels of miRNA145 and N-cadherin were detected by Western blot and real-time PCR.The cell viability was detected by MTS assay.The cell cycle and apoptosis were analyzed by flow cytometry.Invasion and metastasis were detected by Transwell assay.RESULTS: Compared with negative control,miRNA145 expression was up-regulated significantly,while the expression of N-cadherin was down-regulated significantly.Meanwhile,the cell viability,cell cycle,apoptosis,invasion and metastasis of hepatoma HepG2 cells were all significantly inhibited (P<0.05).CONCLUSION: miRNA145 dramatically inhibits viability,apoptosis,invasion and metastasis of hepatoma cells.

    [KEY WORDS]MicroRNA145; Hepatocellular carcinoma; Cell proliferation; Apoptosis; Cell invasion

    肝細胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是癌癥中致死率較高的一種,盡管在過去的幾十年中,肝癌的各治療手段取得了顯著的進步,但患者的5年生存率仍然較低[1],這與HCC具有較高的增殖侵襲遷移能力有關(guān)。微小RNA (mircroRNA,miRNA)是近年來新發(fā)現(xiàn)的、廣泛存在于真核生物體內(nèi)的一類保守的非編碼單鏈小分子RNA,長度約22個核苷酸,主要通過與靶mRNA的3’UTR完全或不完全堿基配對,引起靶mRNA降解或者抑制其翻譯,從而調(diào)控靶基因的表達,調(diào)控個體發(fā)育、細胞凋亡、增殖及分化[2]。嚴斌等[3]研究發(fā)現(xiàn),miRNA145在肝癌細胞及肝癌組織中的低表達,可能與HCC的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)。近年來隨著研究的不斷深入,miRNA145在多種惡性腫瘤中,如直腸癌、膀胱癌[4-6]等,通過對各目標蛋白的控制來調(diào)節(jié)腫瘤的生長、增殖、凋亡和侵襲能力。本實驗就miRNA145對人肝癌HepG2細胞增殖、凋亡、侵襲和轉(zhuǎn)移的影響做初步探討。

    材料和方法

    1主要材料

    人肝癌細胞株HepG2由中山大學附屬第一醫(yī)院外科實驗室提供。

    細胞培養(yǎng)基DMEM和胎牛血清購自HyClone; miR145模擬物購自廣州銳博生物科技有限公司; LipofectamineTMRNAiMAX轉(zhuǎn)染試劑購于Invitrogen; Opti-MEM培養(yǎng)基購于Gibco;單溶液細胞增殖檢測試劑購于Promega;細胞凋亡檢測試劑盒和細胞周期檢測試劑盒購于KeyGEN; N-鈣黏蛋白(N-cadherin)兔抗人多克隆抗體購于CST; II抗用武漢博士德生物工程有限公司的過氧化物酶標記羊抗兔IgG。

    2主要方法

    2.1細胞培養(yǎng)和轉(zhuǎn)染HepG2細胞在含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中,37℃、5% CO2、飽和濕度條件下培養(yǎng),1~2 d換液1次。取對數(shù)生長期細胞接種于6孔板,設置空白對照組(control)、空模擬物轉(zhuǎn)染組即陰性對照組(negative control-miRNA145,NC-miRNA145)和miRNA145模擬物(miRNA145-mimic)轉(zhuǎn)染組。基因轉(zhuǎn)染步驟按LipofectamineTMRNAiMAX轉(zhuǎn)染試劑盒說明書進行,轉(zhuǎn)染后24 h熒光顯微鏡下根據(jù)熒光蛋白的表達觀察轉(zhuǎn)染效率。

    2.2 Real-time PCR檢測細胞miRNA145及N-鈣黏蛋白的表達轉(zhuǎn)染后36 h收集各組細胞,按TRIzol法提取細胞總RNA,用分光光度計和瓊脂糖凝膠檢測總RNA純度和完整性??俁NA用逆轉(zhuǎn)錄反應合成cDNA后,用SYBR Green qPCR Super Mix和SYBR Green microRNA Assay Kit檢測樣本中的miR NA145含量。采用的miRNA145正向引物為5’-AC ACTCCAGCTGGGGTCCAGTTTTCCCAGGAA-3’,反向引物為5’-CTCAACTGGTGTCGTGGA-3’; N-cadherin的正向引物為5’-TCAGGCGTCTGTAGAGGCTT-3’,反向引物為5’-ATGCACATCCTTCGATAAGACTG-3’;內(nèi)參照U6的正向引物為5’- CTCGCTTCG GCAGCACA-3’,反向引物為5’-AACGCTTCA-CGAA TTTGCGT-3’。反應條件50℃2 min;95℃2 min;95 ℃15 s,60℃32 s,40循環(huán)。反應結(jié)束后得到各個標本和內(nèi)參照U6的基本循環(huán)數(shù)(Ct值)。根據(jù)公式計算目的基因相對含量(RQ值),即為RNA相對含量,實驗重復3次。

    2.3 Western blot驗證N-鈣黏蛋白的表達各組細胞用PBS洗滌后低速離心后棄去上清,加入細胞裂解液及蛋白酶抑制劑,冰上充分裂解細胞30 min離心后,取上清到新的EP管中。用BCA蛋白定量試劑盒分別測定各組細胞提取的總蛋白濃度后行SDSPAGE,180 mA恒流轉(zhuǎn)移蛋白至醋酸纖維素膜上,5%脫脂奶粉封閉后,加入I抗,4℃搖床孵育過夜,封閉液洗滌3次分別加入HRP標記II抗,室溫下溫育1 h,發(fā)光試劑作用后,暗室曝光,經(jīng)顯影、定影處理后,以GAPDH作為內(nèi)參照。用ImageJ軟件分析各蛋白區(qū)帶的灰度值,并用各組細胞所得的灰度值與GAPDH蛋白對應區(qū)帶的灰度值比較分析蛋白的表達量。

    2.4 MTS實驗檢測細胞活力以每孔1×104個接種于96孔板,轉(zhuǎn)染后收集各組細胞,每組分為0、12、24、48和72 h 5個時點,每個時點設置3個復孔。細胞貼壁后,每孔加入10 μL MTS孵育4 h,酶標儀讀板,MTS檢測讀取490 nm波長處吸光度(A)值,檢測3組細胞不同時間存活情況,繪制細胞存活曲線。

    2.5流式細胞儀檢測細胞周期及細胞凋亡率轉(zhuǎn)染后收集各組細胞,制成單細胞懸液,PBS洗滌2次,70%的乙醇固定過夜。按試劑盒操作說明書指導加相應試劑,4℃避光放置30 min,流式細胞儀檢測各組細胞周期;同樣方法收集、洗滌細胞,無須乙醇固定,按操作說明采用Annexin V/PI雙染,避光放置10 min,流式細胞儀檢測各組細胞凋亡率。實驗重復3次。

    2.6 Transwell法檢測細胞的侵襲轉(zhuǎn)移能力轉(zhuǎn)染后收集各組細胞,無血清DMEM培養(yǎng)基制成單細胞懸液(1×105)加入Transwell小室上室,在下室加入600 μL完全培養(yǎng)基。37℃、5% CO2孵育24、48 h分別取出小室,4%多聚甲醛固定15 min,結(jié)晶紫染色10 min,檢測細胞是否穿過小孔,若細胞穿過,則立即終止所有實驗組,拍照并統(tǒng)計。同樣方法收集單細胞懸液,加入到預先用Matrigel凝固過的Transwell小室中,37℃、5% CO2孵育48 h后取出小室,多聚甲醛固定染色,拍照統(tǒng)計。

    3統(tǒng)計學處理

    數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件進行t檢驗及單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

    結(jié)果

    1熒光顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)染率

    miRNA145-mimic組、NC-miRNA145組經(jīng)轉(zhuǎn)染24 h后,于倒置熒光顯微鏡下觀測各組細胞熒光表達,轉(zhuǎn)染效率均在70%以上,而control組未見熒光表達,見圖1。

    Figure 1.Observation of transfection efficiency under the fluorescence microscope (×200).圖1熒光顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)染效率

    2 Real-time PCR轉(zhuǎn)染后miRNA145的表達情況

    分別提取miRNA145-mimic、NC-miRNA145和control組的HepG2細胞的總RNA,檢測總RNA純度和完整性,可見5S rRNA、18S rRNA和28S rRNA的條帶明亮、清晰、邊緣銳利,且28S的亮度大約是18S的2倍以上,說明所提取的總RNA有較好的完整性,見圖2。對RNA樣品進行紫外分光光度分析(A260/A280=1.9),表明RNA具有較高的純度。后通過逆轉(zhuǎn)錄得到相應cDNA,以其作為模板對miRNA145和N-鈣黏蛋白進行擴增,在mRNA水平分別檢測各組miRNA145和N-鈣黏蛋白表達情況的差異。結(jié)果發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)染miRNA145模擬物的HepG2細胞的miRNA145表達比轉(zhuǎn)染NC-miRNA145和未轉(zhuǎn)染的HepG2細胞明顯增多,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。N-鈣黏蛋白基因在轉(zhuǎn)染miRNA145模擬物的HepG2細胞的表達比轉(zhuǎn)染NC-miRNA145和未轉(zhuǎn)染的HepG2細胞明顯減少,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖3。

    3 Western blot法驗證轉(zhuǎn)染后N-鈣黏蛋白的表達情況

    分別提取3組HepG2細胞的總蛋白,用Western blot比較3組miRNA145蛋白表達水平的差異,結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染miRNA145模擬物的HepG2細胞,其N-鈣黏蛋白表達水平比轉(zhuǎn)染空模擬物組和未轉(zhuǎn)染組的HepG2細胞明顯減少(P<0.05),結(jié)果與PCR結(jié)果一致,見圖4。

    4轉(zhuǎn)染miRNA145對肝癌細胞活力的抑制作用

    細胞在490 nm處吸光度越高,表明其細胞活性越高。如表1所示,在第2、3天時轉(zhuǎn)染組A值顯著低于對照組(P<0.05)。通過MTS實驗,將各組A值的均值繪制成曲線,反映各個時點細胞的活性情況,發(fā)現(xiàn)在第2、3天時,轉(zhuǎn)染組細胞活性顯著低于空白對照組和空載體轉(zhuǎn)染組(P<0.05),見圖5。

    Figure 2.Result of the total RNA electrophoresis.圖2各組細胞的總RNA瓊脂糖凝膠電泳圖

    Figure 3.Real-time PCR analysis of miRNA145 and N-cadherin expression 36 h after transfection.Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control.圖3 Real-time PCR定量分析miRNA145及N-cadherin在各組細胞中的表達

    Figure 4.Western blot analysis of N-cadherin expression 36 h after transfection.Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control.圖4 Western blot分析各組N-鈣黏蛋白的表達情況

    5轉(zhuǎn)染后各組細胞的細胞周期及凋亡率的變化

    空白對照組、空載體轉(zhuǎn)染組和miRNA145質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組G1期峰細胞比例分別為64.75%、65.93%和 70.04%,miRNA145質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組G1期的細胞數(shù)目明顯增加(P<0.05),見圖6;3組細胞的總凋亡率分別為3.22%、3.31%和4.78%,miRNA145質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組與空白對照組和空載體轉(zhuǎn)染組相比較細胞凋亡率增加(P<0.05),見圖7。

    Figure 5.The effect of miRNA145 on the viability of hepatoma cells.Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control.圖5 MTS實驗分析miRNA145對人肝癌細胞活力的影響

    表1  miRNA145對肝癌細胞不同時點細胞活力的作用Table 1.The effect of miRNA145 on the viability of hepatoma cells at different time points (Mean±SD.n=3)

    6轉(zhuǎn)染后細胞的侵襲轉(zhuǎn)移能力

    Transwell體外遷移實驗結(jié)果,顯微鏡下計下室細胞個數(shù)并拍照,每種細胞每次隨機選取10個視野計數(shù)后取平均值繪制條形圖,轉(zhuǎn)染miRNA145的HepG2穿膜細胞數(shù)較轉(zhuǎn)染空模擬物的HepG2穿膜細胞數(shù)明顯減少(P<0.05),見圖8。

    Transwell體外侵襲實驗結(jié)果,顯微鏡下計穿出細胞個數(shù)并拍照,每種細胞每次隨機選取10個視野計數(shù)后取平均值繪制條形圖,轉(zhuǎn)染miRNA145的HepG2穿膜細胞數(shù)較轉(zhuǎn)染空模擬物的HepG2穿膜細胞數(shù)明顯減少(P<0.05),見圖9。

    討論

    Figure 6.The cell cycle of the HepG2 cells in each group after transfection.Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control.圖6流式細胞儀檢測轉(zhuǎn)染后3組細胞的G1期峰細胞比例情況

    Figure 7.The apoptotic rate of the HepG2 cells in each group after transfection.Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control.圖7流式細胞術(shù)檢測轉(zhuǎn)染后各組細胞凋亡率的變化

    HCC惡性程度高,預后差,即使采用手術(shù)聯(lián)合化療的治療方案,治療效果仍不佳,術(shù)后HCC高復發(fā)率和轉(zhuǎn)移是影響患者治療效果和預后的關(guān)鍵因素,迫切需要尋求新的有效的治療靶點。miRNA具有廣泛的基因調(diào)節(jié)功能,能對基因活動的各個環(huán)節(jié)進行調(diào)節(jié),參與一系列的生物學進程如胚胎的發(fā)育、細胞增殖、細胞凋亡和能量代謝等[7]。已有學者證實miRNA在肝癌的發(fā)生、發(fā)展過程中發(fā)揮癌基因或抑癌基因樣的作用(如miRNA-181b)[8];另肝癌的生物學行為和一些miRNA家族成員(如miRNA-155、miRNA-101)有密切的關(guān)系[9]。

    Figure 8.The results of Transwell metastatic test showed the metastatic ability of HepG2 cells (×200).Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control.圖8 Transwell體外遷移實驗

    Figure 9.The results of Transwell invasion test showed the invasive ability of HepG2 cells (×200).Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control.圖9 Transwell侵襲實驗結(jié)果

    miRNA145是近年來新發(fā)現(xiàn)的一類具有腫瘤抑制作用的microRNA,可在多種組織中廣泛表達。2003年Michael等[10]首先在人結(jié)腸腫瘤中發(fā)現(xiàn)miRNA145低表達,認為其可能與腫瘤發(fā)生密切相關(guān)。miRNA145定位于5號染色體(5q32-33),其附近的5q31是一個非常重要的脆性位點。脆性位點通常在體細胞中穩(wěn)定,但在許多腫瘤細胞中經(jīng)常發(fā)生缺失或重排。位于脆性位點附近的miRNA145已被證實在多種腫瘤組織中低表達。研究發(fā)現(xiàn)在膀胱癌及直腸癌中,miRNA145目標作用于N-鈣黏蛋白、波形蛋白(vimentin)等可抑制惡性腫瘤細胞的上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化[6,11]。Sachdeva等[12]研究發(fā)現(xiàn)miRNA145除具有腫瘤生長抑制作用外,而且對腫瘤細胞的侵襲轉(zhuǎn)移能力有明顯的抑制作用。目前越來越多研究結(jié)果顯示miRNA145具有調(diào)控多個靶基因,尤其是N-cadherin、vimentin等腫瘤細胞上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化基因,可以通過調(diào)節(jié)這些靶基因從而影響細胞的間質(zhì)轉(zhuǎn)化,抑制其侵襲轉(zhuǎn)移[11]。

    嚴斌等[3]研究發(fā)現(xiàn)通過對臨床標本的檢測發(fā)現(xiàn)miRNA145在肝癌中的表達顯著低于正常組織及癌周組織,這與Varnholt等[13]的研究結(jié)果一致,提示該小分子RNA在肝細胞癌的發(fā)生發(fā)展過程中起著負調(diào)控的作用。

    為了探索miRNA145在肝細胞癌中的作用機制,在本研究中,我們通過轉(zhuǎn)染技術(shù)在HepG2細胞中高表達miRNA145,首次發(fā)現(xiàn)在肝細胞癌中miRNA145作用于N-cadherin基因,并通過real-time PCR 及Western blot驗證其發(fā)揮抑制N-cadherin表達作用。隨后在Transwell侵襲轉(zhuǎn)移實驗中,我們發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染組細胞的侵襲遷移能力明顯減弱,穿膜細胞下降。這些結(jié)果提示miRNA145可以通過改變腫瘤細胞表面的黏附分子表達(如調(diào)控上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化過程)而抑制肝癌細胞的遷移侵襲。于此同時,在MTS實驗中,我們發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染組的存活細胞顯著少于空白對照組,隨后通過流式細胞儀對各組細胞的周期和凋亡率進行分析,發(fā)現(xiàn)miRNA145表達增高可以使細胞周期停止在G1期;且轉(zhuǎn)染組細胞的凋亡數(shù)目及凋亡率均顯著增高。由此,我們認為miRNA145能夠抑制肝細胞癌的細胞周期進展、遷移侵襲,最終導致腫瘤細胞凋亡的增加。那么miRNA145可以靶向作用于N-cadherin,是否也能作用于其它黏附分子基因呢? miRNA145是通過什么具體作用機制抑制肝細胞癌的周期進展呢?這些都尚待進一步的研究。目前對肝癌仍采取以手術(shù)切除為主的治療方法,而術(shù)后出現(xiàn)復發(fā)和轉(zhuǎn)移是患者治療失敗和死亡的主要原因。miRNA介導腫瘤分子治療將可能成為根治腫瘤的重要發(fā)展方向。鑒于miRNA145在腫瘤中的抑癌基因作用,可通過上調(diào)miRNA145表達,抑制腫瘤細胞上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化的能力,從而減少腫瘤耐藥,實現(xiàn)抑制腫瘤生長和侵襲轉(zhuǎn)移的治療目的。但這個設想離臨床應用尚遠,仍需進一步探索肝癌中miRNA145的生物學意義,miRNA145與靶基因相互作用機制miRNA安全性問題的研究。

    綜上所述,上調(diào)miRNA145能明顯降低人肝癌細胞的生長、侵襲轉(zhuǎn)移能力,促進細胞凋亡。隨著人們對靶向治療肝細胞癌的需求不斷提高,miRNA145調(diào)控肝細胞癌的臨床價值令人充滿期待。

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    通訊作者△Tel: 020-87755766;周奇E-mail: hnzhouqi@163.com;陳東E-mail: gzbobsums@ gmail.com

    *[基金項目]國家自然科學基金資助項目(No.81402504) ;廣東省科技計劃(No.2012B061700090) ;廣州市科技計劃(No.201300000187) ;大亞灣科技計劃(No.2013A01016; No.2014A01012)

    [收稿日期]2015-03-30

    [文章編號]1000-4718(2015)06-1019-07

    [中圖分類號]R730.23

    [文獻標志碼]A

    doi:10.3969/j.issn.1000-4718.2015.06.010

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