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    不同鹽度對斑節(jié)對蝦幼蝦人工感染W(wǎng)SSV及TSV的影響

    2015-03-19 06:44:36李曉筠史黎黎李根福陳兆明孫成波
    安徽農(nóng)業(yè)科學 2015年33期
    關(guān)鍵詞:斑節(jié)幼蝦白斑

    李曉筠,史黎黎,李根福,陳兆明,孫成波,2*

    (1.廣東海洋大學水產(chǎn)學院,廣東湛江524088;

    2.廣東高校熱帶海產(chǎn)無脊椎動物養(yǎng)殖工程技術(shù)研究中心,廣東湛江524025)

    我國對蝦產(chǎn)業(yè)自20世紀80年代開始快速發(fā)展,與此同時養(yǎng)殖環(huán)境受到不同程度污染,各類病害更是層出不窮。白斑綜合癥(White spot syndrome,WSS)和桃拉綜合癥(Taura syndrome,TS)是對蝦養(yǎng)殖業(yè)危害最為嚴重的病毒性疾病,均具有傳播快、死亡率高的特點。白斑綜合癥病毒(White spot syndromevirus,WSSV),隸屬線性病毒科 (Nimaviridae)、白斑綜合癥白斑病毒屬(Whispovirus),最早發(fā)生于20世紀90年代初期臺灣的對蝦養(yǎng)殖地區(qū)[1],隨后迅速蔓延至世界各養(yǎng)殖區(qū)域,給對蝦養(yǎng)殖業(yè)造成重創(chuàng)[2-3]。WSSV宿主廣泛,致死率高,可使發(fā)病對蝦3~10 d死亡率可達100%[4]。桃拉綜合癥病毒(Taura syndrome virus,TSV),隸屬雙順反子病毒科(Dicistroviridae)、蜜蜂麻痹病毒屬(Aparavirus),最早在厄瓜多爾地區(qū)出現(xiàn),可導致仔蝦、稚蝦和幼蝦的累計死亡率高達40% ~90%[5],給對蝦的生產(chǎn)帶來嚴重威脅。國際獸疫局(OIE)將二者列為需要報告的水生動物病毒性疫病[6]。

    斑節(jié)對蝦在我國東南沿海地區(qū)有較長的養(yǎng)殖歷史,有良好的養(yǎng)殖基礎(chǔ),但長期受到病害的困擾,危害較為嚴重的主要是病毒病。病毒病的暴發(fā)不是單純病毒的作用,而是蝦、環(huán)境以及病毒相互作用的結(jié)果。溫度、鹽度、pH、氨氮含量等環(huán)境因素變化往往使對蝦產(chǎn)生應激反應、抵抗力下降,誘使?jié)摲腥镜膶ξr發(fā)?。?-8]。其中,鹽度直接影響斑節(jié)對蝦的蛻殼、成活和生長等生理活動,是斑節(jié)對蝦的生長環(huán)境中較為重要的影響因子[9-10]。為了檢測斑節(jié)對蝦幼蝦在不同鹽度下對WSSV和TSV敏感性差異,探索在實際生產(chǎn)過程中如何有效地控制環(huán)境因子,筆者采用投喂感染的方法使斑節(jié)對蝦幼蝦人工感染W(wǎng)SSV和TSV,研究不同鹽度對斑節(jié)對蝦的抗病力的影響,提高斑節(jié)對蝦抗病毒力,達到對蝦養(yǎng)殖高產(chǎn)、穩(wěn)產(chǎn)的目的。

    1 材料與方法

    1.1 材料 試驗在廣東海洋大學南三海水試驗基地進行,試驗所用斑節(jié)對蝦幼蝦來自湛江市浩海蝦苗場,于基地培育暫養(yǎng)10 d。試驗器材有150 L白色塑料桶、16 L塑料桶、空氣壓縮機、JA5003型電子天平(精確到0.001 g)、直尺。投喂人工配合飼料。病原為惠州愛試靈生物科技有限公司病蝦,經(jīng)PCR檢測結(jié)果均為陽性。試驗用水為海區(qū)抽取經(jīng)沙濾、沉淀,再用有效氯濃度為20 g/m3的強氯精充氣暴曬處理,確保水體無病源生物。

    1.2 方法

    1.2.1 試驗設(shè)計。試驗鹽度梯度設(shè)置為5、10、15、20、25、30、35 和40,分別標記為 A、B、C、D、E、F、G、H 共 8 個組,每個鹽度梯度設(shè)3個平行組,每個平行放幼蝦100尾,飼養(yǎng)于150 L的白色塑料桶中,養(yǎng)殖水體為120 L。投喂人工配合飼料,1.5 h后吸污換水,換水量約為水體體積的30%,暫養(yǎng)時間10 d。從對應的平行中取大小均勻的蝦30尾放于16 L的養(yǎng)殖桶,分別作為對照組、WSSV攻毒組和TSV攻毒組,每組設(shè)置3個平行。攻毒前,蝦饑餓空胃24 h。試驗組投喂的飼料中混有攜帶相應病毒的對蝦碎屑,對照組按試驗前投喂,試驗期10 d。

    1.2.2 存活率統(tǒng)計。攻毒組每天統(tǒng)計各平行的死亡數(shù)和試驗后的存活率。

    1.2.3 病毒檢測。采用半定量IQ2000TMPCR檢測WSSV和TSV[11-12],檢測方法參照試劑盒說明書進行。

    試劑配制:第1次擴增反應(First PCR):8μl/reaction、First PCR PreMix 7.5 μl、IQzyme DNA Polymerase 2 U/μl 0.5 μl;第2 次擴增反應(Nested PCR):15 μl、Nested PCR Polymerase 2 U/μl。

    反應條件:第1次擴增反應(First PCR):94℃ 2 min;然后再運行94℃ 20 s;72℃ 30 s,15個循環(huán);最后72℃,再延伸30 s,20℃30 s。第2次擴增反應(Nested PCR):94℃ 20 s;62℃ 20 s;72℃30 s,30個循環(huán);最后再延伸72℃ 30 s,20℃30 s。通過瓊脂凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,通過紫外凝膠成像系統(tǒng)拍照,判斷結(jié)果后保存。

    1.2.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析。數(shù)據(jù)分析采用單因素方差分析(ANOVA)和樣本均值多重分析方法進行統(tǒng)計,并對試驗數(shù)據(jù)進行差異顯著性檢驗。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同鹽度下斑節(jié)對蝦對WSSV的敏感性 從圖1~2可以看出,感染后第3天開始出現(xiàn)死亡,死亡率隨著時間的推移而上升,到第8天基本趨于穩(wěn)定。當鹽度為25時的存活率最高(41.11%),達到極顯著水平(P<0.01);當鹽度為20和30時存活率差異不明顯。各組存活率依次為:鹽度20(33.33%)>鹽度30(28.89%)>鹽度15(17.78%)>鹽度35(14.44%)>鹽度40(6.67%);當鹽度為5和10時,存活率均為0。

    2.2 不同鹽度下斑節(jié)對蝦對TSV的敏感性 從圖3~4可以看出不同鹽度下斑節(jié)對蝦幼體的存活率都很高,其中鹽度25時斑節(jié)對蝦幼體的存活率最高,為64.44%(P<0.01),鹽度為5、10、35及40的試驗組之間差異不顯著。各試驗組斑節(jié)對蝦幼體的存活率依次為:鹽度20(53.33%)>鹽度15(47.78%)>鹽度30(44.44%)>鹽度40(35.56%)>鹽度35(35.56%)>鹽度10(34.44%)>鹽度5(30%),沒有出現(xiàn)死亡率100%。

    2.3 PCR病毒檢測結(jié)果 攻毒試驗前隨機抽取30尾幼蝦作為初始樣本,通過半定量PCR檢測是否攜帶WSSV和TSV,結(jié)果全部為陰性(陰性率100%)。試驗后WSSV和TSV組中死蝦和存活蝦經(jīng)檢測全部為陽性,陽性率為100%。投喂的病蝦經(jīng)PCR檢測全部為WSSV陽性和TSV陽性(圖5)。

    3 討論

    從20世紀90年代開始,對蝦的養(yǎng)殖區(qū)域暴發(fā)過多次病毒性疫病,環(huán)境受到污染。養(yǎng)殖區(qū)域存在大量的難以清除的病原體,對蝦被病毒感染的比率很高。從感染到發(fā)病有一定的潛伏期,處于感染潛伏期的對蝦在安全的環(huán)境中仍可正生長。近年來很多研究發(fā)現(xiàn)引起WSS暴發(fā)的原因不僅與蝦體的免疫水平、病毒數(shù)量、感染方式有關(guān),還與環(huán)境因子密切相關(guān)[13]。何建國等[14]認為WSSV的潛伏期感染具有很大的危害性,一旦氣候和水環(huán)境因子發(fā)生變化極容易導致潛伏期感染轉(zhuǎn)為急性感染。

    在對蝦的生長環(huán)境中,鹽度是重要的環(huán)境因子之一,它直接作用于對蝦滲透調(diào)節(jié)、代謝酶活性和免疫等功能,影響了對蝦的存活、生長。研究表明,鹽度改變會引起對蝦體內(nèi)相關(guān)免疫指標變化[15]。葉建生等[16]報道指出鹽度突變在短時間內(nèi)引起血液滲透壓變化如對蝦體內(nèi)的超氧陰離子產(chǎn)量隨著鹽度突變值增加而增加,血清中酚氧化酶活性隨著鹽度突變值增加活性升高越快,血清中SOD活性隨著鹽度突變值增加而降低,血清蛋白含量隨著降低特別是鹽度降低能引起對蝦血細胞數(shù)量明顯降低,導致酚氧化酶活性升高。許多甲殼動物都具有一定程度的廣鹽適應性[17-18],最佳生長、存活和生產(chǎn)效率的鹽度水平常常因種類而異[19-23]。斑節(jié)對蝦幼蝦對低鹽度的適應能力較強。緩慢降低鹽度至1‰,斑節(jié)對蝦幼蝦沒有死亡;在純淡水中可存活5 d左右。當水體鹽度從25突然降至10時,斑節(jié)對蝦成活率為93.3%;當水體鹽度突然下降至2時,斑節(jié)對蝦成活率只有43.3%,可見鹽度突變對斑節(jié)對蝦成活率有很大影響。一般認為,25左右的鹽度是斑節(jié)對蝦養(yǎng)殖最理想的鹽度[9],在生長效率最佳的鹽度條件下斑節(jié)對蝦的免疫能力也是最強的[24]。該試驗結(jié)果基本與上述觀點符合,鹽度為25時斑節(jié)對蝦對WSSV與TSV的存活率最高。當鹽度為5時斑節(jié)對蝦對WSSV和TSV的存活率最低,各組間差異不明顯。在合適的鹽度條件下,蝦的免疫功能沒有受到損害,對病害有較強抵抗能力。

    該試驗采用投喂的方式進行攻毒,感染斑節(jié)幼蝦。WSSV攻毒的最有效方法是投喂法和注射法[25-26],但是人工注射方法對蝦體的物理傷害作用較大,幼蝦不宜采用。感染3 d后,斑節(jié)對蝦的頭胸甲上出現(xiàn)白斑,行動遲緩所表現(xiàn)的發(fā)病過程符合WSSV的發(fā)病特征。PCR檢測結(jié)果表明斑節(jié)對蝦全部感染W(wǎng)SSV。不同鹽度組下斑節(jié)對蝦對WSSV的存活率也表現(xiàn)出顯著差異。這可能是因為不同的鹽度影響了斑節(jié)對蝦幼體的抗病力,進而造成蝦體對病害的免疫力不同。斑節(jié)對蝦幼體從第3天開始出現(xiàn)死亡,第8天基本趨于穩(wěn)定,死亡速度極快,且大量死亡,說明斑節(jié)對蝦幼體對WSSV的敏感性很強。

    TSV同樣通過人工感染的方法感染斑節(jié)對蝦。研究發(fā)現(xiàn),通過人工感染中國對蝦、日本對蝦、斑節(jié)對蝦以及桃紅對蝦均能發(fā)病。但是,在自然狀態(tài)下尚未見到對這幾種蝦類被TSV感染導致較大損失的報道[27]。在實驗室條件下,注射感染TSV的病蝦的組織勻漿和投喂感染TSV的病蝦均可引起發(fā)?。?8]。不同鹽度下斑節(jié)對蝦對TSV的存活率差異不顯著。在實際養(yǎng)殖過程中,感染TSV后,若能及時控制好環(huán)境,改良底質(zhì)、改善水質(zhì)、增加溶氧等,可以控制病情,依然獲得很好的收成。試驗過程中,放養(yǎng)密度小、連續(xù)充氧、水質(zhì)良好。試驗中蝦體都攜帶TSV,但其死亡率很低,可能與試驗中的環(huán)境條件有關(guān)。通常感染后的對蝦在環(huán)境惡化時,其死亡速度更快,死亡量也加劇。也有部分經(jīng)過發(fā)炎、再生或修復過程可轉(zhuǎn)危為安,修復期蝦對TSV的再感染具有抵抗力,感染后的幸存者一旦表皮脫落,甲殼角質(zhì)層出現(xiàn)黑斑化現(xiàn)象,變成無癥狀的TSV攜帶者[24]。這些是對蝦被感染后可存活的原因。

    綜上所述,鹽度變化會提高斑節(jié)對蝦幼蝦對WSSV的易感性,而其對TSV的易感性則低于WSSV。鹽度是引起白斑綜合癥暴發(fā)的關(guān)鍵影響因子,在對蝦養(yǎng)殖過程中必須謹慎控制。

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