侯彬彬 張振穎 劉曉明
(1.大連醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院皮膚科,大連116023;2.香港大學(xué)深圳醫(yī)院皮膚科,深圳518053)
雙相真菌形態(tài)轉(zhuǎn)換與致病性關(guān)系的研究進(jìn)展
侯彬彬1張振穎2劉曉明2
(1.大連醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院皮膚科,大連116023;2.香港大學(xué)深圳醫(yī)院皮膚科,深圳518053)
雙相真菌;形態(tài)轉(zhuǎn)換;致病性
皮炎芽生菌(Blastomyces dermatitidis)、莢膜組織胞漿菌(Histoplasma capsulatum)、粗球孢子菌(Coccidioides immitis)和巴西副球孢子菌(Paracoc?cidioides immitis)、馬爾尼菲青霉菌 (Penecillium marneffei)、申克孢子絲菌 (Sporothrix schenckii)均屬于雙相型真菌,在溫度的誘導(dǎo)下其菌絲相、酵母相可相互轉(zhuǎn)化,致病相為酵母相,主要通過(guò)吸入途徑或皮膚黏膜的破損而感染人類(lèi)[1],在免疫受損和免疫正常者均可引起真菌病。其形態(tài)轉(zhuǎn)換的機(jī)制目前尚不清楚,該機(jī)制受到國(guó)內(nèi)、外學(xué)者的廣泛關(guān)注,被認(rèn)為與致病性密切相關(guān)[2?3]。
目前有學(xué)者發(fā)現(xiàn)雙相真菌由菌絲相向酵母相轉(zhuǎn)換的同時(shí)除了真菌的形態(tài)發(fā)生改變,其細(xì)胞壁的組成成分、抗原分子及其毒力因子的表達(dá)也發(fā)生了改變。早期的研究發(fā)現(xiàn)被P?氯汞苯磺酸 (PCSM)處理過(guò)的莢膜組織胞漿菌失去了向酵母相轉(zhuǎn)化的能力,同時(shí)也失去了致病性,證實(shí)了雙相真菌的致病能力與形態(tài)轉(zhuǎn)換密切相關(guān)[2]。隨著許多新的基因工具和手段廣泛應(yīng)用,一個(gè)個(gè)與雙相轉(zhuǎn)化相關(guān)的基因接連被發(fā)現(xiàn)和證實(shí),并建立了相應(yīng)的基因譜。如約有500個(gè)莢膜組織胞漿菌的基因和328個(gè)巴西副球菌ESTs的基因被發(fā)現(xiàn)在菌絲相和酵母相時(shí)表達(dá)有顯著差異[2]。本文將綜述幾種常見(jiàn)雙相真菌在雙相形態(tài)轉(zhuǎn)換過(guò)程中致病性形成的相關(guān)研究。
美國(guó)中部及東南部、俄亥俄州、密西西比河谷以及加拿大部分區(qū)域是芽生菌病流行區(qū),主要由熱帶雙相真菌皮炎芽生菌引起。該病小范圍暴發(fā)流行無(wú)年齡和性別的特殊性,地方流行病例通常發(fā)生在青年到中年,男性多于女性。艾滋病患者發(fā)生芽生菌病雖不常見(jiàn),但趨向于暴發(fā)性、系統(tǒng)性和急性進(jìn)行性[4]。
芽生菌的雙相轉(zhuǎn)換不僅使細(xì)胞的形態(tài)發(fā)生變化,也使細(xì)胞壁的組成成分發(fā)生改變,如α?(1,3)?葡聚糖增加,而β?(1,3)?葡聚糖減少?;駼AD1和bys1(Blastomyces yeast?specific)被發(fā)現(xiàn)在芽生菌酵母相中特異性表達(dá)[5]。BAD1作為免疫顯性抗原介導(dǎo)與巨噬細(xì)胞CD11b/CD18(CR3)受體的結(jié)合。BAD1敲除菌株其結(jié)合巨噬細(xì)胞的能力下降。BAD1不僅可以增強(qiáng)黏附能力,還可使宿主的炎癥細(xì)胞TNF的表達(dá)減少,從而降低宿主免疫系統(tǒng)的抵抗力。bys1基因?qū)?yīng)蛋白的功能未知。Brandhorst等[6]發(fā)現(xiàn)皮炎芽生菌酵母相的芽生孢子因體積太大,不能被中性粒細(xì)胞吞噬,而中性粒細(xì)胞和外周血單核細(xì)胞均可更有效的消滅菌絲相中的分生孢子,上述的種種研究結(jié)果都可能與芽生菌的致病性相關(guān)。
組織胞漿菌病在北美和拉丁美洲的一些特定區(qū)域流行。莢膜組織胞漿菌在土壤中為菌絲相,在感染動(dòng)物和人體時(shí)為酵母相。莢膜組織胞漿菌有2種變種:莢膜組織胞漿菌莢膜變種和莢膜組織胞漿菌杜波變種。盡管認(rèn)為莢膜組織胞漿菌的生存環(huán)境與蝙蝠和鳥(niǎo)類(lèi)排泄物有關(guān),但對(duì)地理分布的特殊類(lèi)型和土壤中有關(guān)的生態(tài)因素仍不清楚[4]。
根據(jù)當(dāng)前文獻(xiàn)的相關(guān)報(bào)道,有關(guān)其雙相轉(zhuǎn)換致病性的研究已發(fā)現(xiàn):CHO1、LYP1、TIF3、TRI11、SIP1和ABC3顯著表達(dá)于其酵母相中,而在菌絲相不表達(dá)[7]。此外,研究發(fā)現(xiàn)rDNA在莢膜組織包漿菌酵母相中的表達(dá)遠(yuǎn)高于菌絲相,可能與其兩相的代謝活性有關(guān),研究還發(fā)現(xiàn)一系列的DNA同源染色體、逆轉(zhuǎn)錄子也在酵母相中高表達(dá),而在菌絲相中低表達(dá),但其是否致病,目前尚不明確[7]。新近有報(bào)道,AGS1葡聚糖合成酶[α?(1,3)?glucan synthase]的基因編碼細(xì)胞壁的合成,干擾RNA的合成,對(duì)其致病性有重要的作用,但其具體致病機(jī)制目前還不明確,然而有研究表明由于α?(1,3)?葡聚糖的存在使促炎因子TNF在酵母相中受抑制,使β?(1,3)?葡聚糖減少,導(dǎo)致宿主細(xì)胞的RNA合成受阻,這些均成為宿主免疫系統(tǒng)受到干擾的理論依據(jù)[8]。CBP1、yps?3、yps?21:E?9在酵母相中也有顯著的表達(dá)[5]。
馬爾尼菲青霉是一高致病性的條件性真菌病的病原菌,多在東南亞及中國(guó)南部等地散發(fā),感染免疫力低下的人群。馬爾尼菲青霉菌是絲孢目青霉屬中唯一的雙相真菌,腐生,有親土壤性。其菌體在不同培養(yǎng)溫度下呈雙相形態(tài)轉(zhuǎn)換改變,即菌絲相(25℃)和酵母相(37℃)兩種生長(zhǎng)形態(tài)。菌絲相是多細(xì)胞的菌絲體,有一定的生物形態(tài)結(jié)構(gòu),如帚狀枝、分生孢子梗,鏈狀分生孢子和孢間鏈;而酵母相為單細(xì)胞或雙細(xì)胞的形態(tài)[4]。有資料顯示:雙相形態(tài)轉(zhuǎn)換過(guò)程也伴有不同細(xì)胞分泌蛋白的產(chǎn)生,它們大多與熱休克蛋白、相關(guān)糖分解酶和Krebs細(xì)胞分裂相的酶蛋白同源。其中,一種與核分裂有關(guān)的類(lèi)G?蛋白質(zhì)?RanA蛋白是酵母相形態(tài)轉(zhuǎn)換的特殊分泌蛋白,其是一種GTP酶,能觸發(fā)一系列的氧化酶活化反應(yīng),發(fā)生組織的侵襲和致?。?]。CPEA、HSP90、結(jié)合蛋白、HSC70、細(xì)胞色素P?450和其他的一些cDNA預(yù)測(cè)蛋白均在酵母相中有顯著的表達(dá)。而Poly(A),Poly?merase和Snf22則顯著低表達(dá)[1],過(guò)氧化氫酶作為馬爾尼菲青霉酵母相的特異蛋白也已經(jīng)被發(fā)現(xiàn),但其具體的致病機(jī)理尚未見(jiàn)報(bào)道。
副球孢子菌病由雙相真菌巴西副球孢子菌引起,在南美洲和拉丁美洲流行。人與人之間不傳播,潛伏期可長(zhǎng)達(dá)40 a[4]。巴西副球孢子菌菌絲相向酵母相轉(zhuǎn)化的轉(zhuǎn)錄子基因指引我們尋找到更多的涉及這一過(guò)程的未標(biāo)記的基因。在ESTs(Ex?pressed Sequence tags)的基礎(chǔ)上完成的2 880個(gè)克隆,其中2 666給予了可讀的序列[10]。1 107個(gè)仍表達(dá),但是量少于原來(lái),其中166個(gè)單克隆和473個(gè)序列與EST一致,Bastos獲得的447 761 bp的組裝序列與一般的404 bp也相符合。目前1 107個(gè)序列已被注解,828個(gè)序列(74.8%)和BLAST檢索的已知蛋白序列(E value≤10?4)顯著相似,433個(gè)ESTs(39.1%)作為假想蛋白已被知道功能,并被分類(lèi)。992個(gè)序列(89.6%)與巴西副球孢子菌轉(zhuǎn)錄子數(shù)據(jù)庫(kù)中的EST和GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)有顯著的類(lèi)似性,另外,115個(gè)序列(10.4%)代表巴西副球孢子菌中的新基因[11?12],其中部分基因在雙相轉(zhuǎn)換中,對(duì)細(xì)胞壁細(xì)胞膜的重塑中起作用,部分參與硫代謝、細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),這些對(duì)于病原菌的研究均有幫助。
球孢子菌病又稱San Joaquin山谷熱、沙漠熱、沙漠風(fēng)濕病,由雙相真菌粗球孢子菌引起,在美國(guó)西南部、墨西哥北部、中美洲及南美洲流行。病原體在土壤表層下10~30 cm中以菌絲形態(tài)生長(zhǎng),斷裂成有傳染性的關(guān)節(jié)孢子。球孢子菌病的易患因素包括:高齡、在流行區(qū)居住或旅行、免疫抑制狀態(tài)(包括艾滋?。⑷焉锖湍芙佑|到球孢子菌污染物的職業(yè),通常情況下人與人之間不傳染[4]。有關(guān)粗球孢子菌的雙相轉(zhuǎn)換與致病性的研究中,有學(xué)者發(fā)現(xiàn)了雜合型組氨酸激酶(DRK1),并發(fā)現(xiàn)該酶基因的功能保守區(qū),有文獻(xiàn)報(bào)道其處于組氨酸激酶信號(hào)傳導(dǎo)系統(tǒng)的上游位置,它接受宿主傳遞的信號(hào)并啟動(dòng)雙相轉(zhuǎn)換,同時(shí)也啟動(dòng)毒力基因的表達(dá)及致病性形成的過(guò)程。
申克孢子絲菌病是雙相型真菌申克孢子絲菌所致的皮膚、皮下組織及其附近的淋巴管的亞急性和慢性感染,表現(xiàn)為肉芽組織損害。人類(lèi)常因外傷如被樹(shù)枝、生銹的鐵釘或其他的金屬刺傷、與泥土有關(guān)的挫傷、動(dòng)物的搔抓或昆蟲(chóng)刺傷等直接接種致?。?]。本病的流行主要是職業(yè)性或地方性小范圍流行,注射穿刺消毒不嚴(yán)格可以引起本病的暴發(fā)流行[4]。但是,目前有關(guān)孢子絲菌的雙相致病性的研究報(bào)道并不多,與其他5種雙相真菌相比,孢子絲菌病的發(fā)病率高,特別是在中國(guó)東北可呈小范圍內(nèi)的暴發(fā)流行,對(duì)人類(lèi)的健康危害頗大。有學(xué)者曾應(yīng)用比較蛋白質(zhì)組學(xué)的研究方法比較了孢子絲菌菌絲相及酵母相的蛋白表達(dá)圖譜,鑒定了24個(gè)酵母相特異或上調(diào)表達(dá)的蛋白質(zhì),目前有關(guān)孢子絲菌在雙相轉(zhuǎn)換過(guò)程中可能的致病基因及調(diào)節(jié)因子已被初步鑒定出來(lái)[13?16](ste20、sir2等),其中也包括DRK1組氨酸激酶,這為進(jìn)一步研究孢子絲菌在雙相轉(zhuǎn)換過(guò)程中各致病基因及調(diào)節(jié)因子的變化奠定了基礎(chǔ)。
皮炎芽生菌、莢膜組織胞漿菌、馬爾尼菲青霉菌等酵母相特異性表達(dá)的與真菌毒力可能相關(guān)的基因 (BAD1、bys1、CBP1、yps?3、yps21:E?9、CPEA)已經(jīng)被逐一鑒定出來(lái)。當(dāng)然,對(duì)于雙相轉(zhuǎn)換這一涉及多基因參與,多層次水平受累的復(fù)雜過(guò)程,僅對(duì)個(gè)別基因進(jìn)行鑒定還遠(yuǎn)遠(yuǎn)不夠[17?21]。近年來(lái)隨著比較基因組學(xué)和比較蛋白質(zhì)組學(xué)技術(shù)的飛速發(fā)展,巴西副球孢子菌、皮炎芽生菌、莢膜組織胞漿菌、馬爾尼菲青霉菌菌絲相和酵母相的差異基因表達(dá)圖譜和差異蛋白表達(dá)圖譜相繼被建立起來(lái),為我們更加深刻的理解雙相轉(zhuǎn)換過(guò)程中各基因及調(diào)節(jié)因子的變化奠定了堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。搞清楚這些致病因子之間的相互關(guān)系,找到在雙相轉(zhuǎn)化過(guò)程中起關(guān)鍵作用的啟動(dòng)因子是國(guó)內(nèi)、外學(xué)者期待的研究目標(biāo)。
Nemecek等在此基礎(chǔ)上研究了皮炎芽生菌和莢膜組織胞漿菌菌絲相向酵母相轉(zhuǎn)化時(shí)各基因及調(diào)節(jié)因子的網(wǎng)絡(luò)關(guān)系[22?25],發(fā)現(xiàn)了雜合型組氨酸激酶處于上游位置,接受宿主傳遞的信號(hào)并啟動(dòng)了雙相轉(zhuǎn)換,同時(shí)也啟動(dòng)了毒力基因的表達(dá)及致病性形成的過(guò)程[26]。發(fā)現(xiàn)雙相真菌在雙相轉(zhuǎn)化過(guò)程中的毒力因子及眾多因子的相關(guān)網(wǎng)絡(luò)是研究雙相真菌致病性的重要內(nèi)容,也是研發(fā)基因靶向藥物不可或缺的基礎(chǔ)。目前已有很多學(xué)者對(duì)上述幾種雙相真菌進(jìn)行深入的研究,希望能找到位于上游的啟動(dòng)雙相轉(zhuǎn)化致病性形成的共同基因。
[1] Xi L,Xu X,Liu W,et al.Differentially expressed proteins of pathogenic Penicillium marneffei in yeast and mycelial phases[J].J Med Microbiol,2007,56(Pt3):298?304.
[2] Klein BS,Tebbets B.Dimorphism and virulence in fungi[J].Curr Opin Microbiol,2007,10(4):314?319.
[3] Rooney PJ,Klein BS.Linking fungal morphogenesis with viru?lence[J].Cell Microbiol,2002,4(3):127?137.
[4] 柴寶,劉維達(dá).幾種地方性真菌病的臨床研究進(jìn)展[J].國(guó)外醫(yī)學(xué)皮膚性病學(xué)分冊(cè),2002,28(5):294?297.
[5] Rooney PJ,Klein BS.Linking fungal morphogenesis with viru?lence[J].Cell Microbiol,2002,4(3):127?137.
[6] Brandhorst TT,Rooney PJ,Sullivan TD,et al.Molecular genetic analysis of Blastomyces dermatitidis reveals new insights about pathogenic mechanisms[J].Int J Med Microbiol,2002,292(5?6):363?371.
[7] Hwang L,Hocking?Murray D,Bahrami AK,et al.Identifying phase?specific genes in the fungal pathogen Histoplasma capsula?tum using a genomic shotgun microarray[J].Mol Biol Cell,2003,14(6):2314?2326.
[8] Rappleye CA,Eissenberg LG,Goldman WE.Histoplasma capsula?tum alpha?(1,3)?glucan blocks innate immune recognition by the beta?glucan receptor[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2007,104(4):1366?1370.
[9] 侯幼紅.馬爾尼菲青霉的研究現(xiàn)狀[J].中國(guó)真菌學(xué)雜志,2007,2(1):49?51.
[10] dos Santos Feitosa L,de Almeida Soares CM,Dos Santos MR,et al.Cloning,characterization and expression of a calnexin homo?logue from the pathogenic fungus Paracoccidioides brasiliensis[J].Yeast,2007,24(2):79?87.
[11] Bastos KP,Bailao AM,Borges CL,et al.The transcriptome anal?ysis of early morphogenesis in Paracoccidioides brasiliensis myce?lium reveals novel and induced genes potentially associated to the dimorphic process[J].BMC Microbiol,2007,Apr 10;7:29.
[12] Paris S,Gonzalez D,Mariat F.Nutritional studies on Paracoccid?ioides brasiliensis.The role of organic sulfur in dimorphism[J].J Med Vet Mycol,1985,23(2):85?92.
[13] Zhang Z,Hou B,Xin Y,et al.Protein profiling of the dimorphic pathogenic fungus,Sporothrix schenckii[J].Mycopathologia,2012,173,(1):1?11.
[14] Hou B,Zhang Z,Zheng F,et al.Molecular cloning,characteriza?tion and differential expression of DRK1 in Sporothrix schenckii[J].Int J Mol Med,2013,31(1):99?104.
[15] Zhang Z,Hou B,Zheng F,et al.Molecular cloning,characteriza?tion and differential expression of a Sporothrix schenckii STE20?like protein kinase SsSte20[J].Int J Mol Med,2013,31(6):1343?1348.
[16] Hou B,Liu X,Zheng F,et al.Molecular cloning,modeling and differential expression of a gene encoding a silent information regulator?like protein from Sporothrix schenckii[J].Int J Mol Med,2014,33(6):1415?1422.
[17] Nemecek JC,Wuthrich M,Klein BS.Global control of dimor?phism and virulence in fungi[J].Science,2006,312(5773):583?588.
[18] Craig E,Kang PJ,Boorstein W.A review of the role of 70 kDa heat shock proteins in protein translocation across membranes[J].Antonie Leeuwenhoek,1990,58(3):137?146.
[19] Craig EA,Gambill BD,Nelson RJ.Heat shock proteins:molecu?lar chaperones of protein biogenesis[J].Microbiol Rev,1993,57(2):402?414.
[20] Georgopoulus C,Welch WJ.Roles of the major heat shock pro?teins as molecular chaperones[J].Annu Rev Cell Biol,1993,9:601?634.
[21] Gething MJ,Sambrook J.Protein folding in the cell[J].Nature,1992,355(6355):33?45.
[22] Boyce KJ,Hynes MJ,Andrianopoulos A.The Ras and Rho GT?Pases genetically interact to co?ordinately regulate cell polarity during development in Penicillium marneffei[J].Mol Microbiol,2005,55(5):1487?1501.
[23] Chandler JM,Treece ER,Trenary HR,et al.Protein profiling of the dimorphic,pathogenic fungus,Penicillium marneffei[J].Pro?teome SCI,2008,4;6:17.
[24] Cooper CR Jr,Haycocks NG:Penicillium marneffei:an insurgent species among the penicillia[J].J Eukaryot Microbiol,2000,47(1):24?28.
[25] Frye RA.Phylogenetic classification of prokaryotic and eukaryot?ic Sir2?like proteins[J].Biochem Biophys Res Commun,2000,273(2):793?798.
[26] Klein BS,Tebbets B.Dimorphism and virulence in fungi[J].Curr Opin Microbiol,2007,10(4):314?319.
R 379.2 R 379.9
B
1673?3827(2015)10?0062?03
2014?02?17 [本文編輯] 施 慧
侯彬彬,女(漢族),博士,住院醫(yī)師.E?mail:houbin?bin1001@163.com