球囊導(dǎo)管建立兔急性可控性氣管狹窄模型研究

劉 金，魏 寧，徐 浩，王文亮

·實(shí)驗(yàn)研究 Experimental research·

球囊導(dǎo)管建立兔急性可控性氣管狹窄模型研究

劉 金，魏 寧，徐 浩，王文亮

目的應(yīng)用球囊導(dǎo)管建立實(shí)驗(yàn)兔急性可控性氣管狹窄模型，研究氣管狹窄程度與血氧飽和度及呼吸頻率間關(guān)系。方法將34只新西蘭大白兔隨機(jī)分為對照組（n=4）和實(shí)驗(yàn)組（n=30，設(shè)A、B、C、D、E 5個亞組，nA~E=6）。對照組兔全身麻醉后行氣管切開及氣管插管，DSA三維重建測量氣管插管下方氣管橫徑和縱徑，并記錄麻醉前、麻醉-氣管切開后及切開后30min血氧飽和度及呼吸頻率；實(shí)驗(yàn)組兔氣管切開后在氣管插管下方管腔置入球囊或球囊+單彎導(dǎo)管：A組球囊直徑3mm，B組球囊直徑3.5 mm，C組球囊直徑4.0mm，D組球囊直徑4mm（+4 F單彎導(dǎo)管），E組2個球囊直徑分別為4mm和2mm，球囊置入前后分別行DSA三維氣管重建，測量氣管切開處下方氣管橫徑和縱徑及擴(kuò)充球囊最大半徑，計算氣管狹窄率并記錄麻醉前、麻醉-氣管切開后及球囊擴(kuò)充后最終血氧飽和度及呼吸頻率。結(jié)果對照組和實(shí)驗(yàn)組間及實(shí)驗(yàn)組各亞組間兔體重、氣管橫截面積差異無統(tǒng)計學(xué)意義（P＞0.05）；3％戊巴比妥鈉（1m l/kg）全身麻醉對兔血氧飽和度及呼吸頻率無明顯影響（P＞0.05）；2.8～3.5 kg兔體重與氣管橫截面積間無明顯線性相關(guān)性（r=0.41，P=0.23）；實(shí)驗(yàn)組A、B、C、D、E組氣管狹窄率分別為（39.87±1.43）％、（52.16±2.46）％、（68.77±2.48）、（76.82±2.75）％、（86.49±2.42）％，各組間差異均有統(tǒng)計學(xué)意義（P＜0.05），E組狹窄率最大；A、B組氣管狹窄率與狹窄后最終血氧飽和度及呼吸頻率無明顯相關(guān)性（r=0.054，P=0.86；r=0.11，P=0.72），C、D、E組中氣管狹窄率與狹窄后最終血氧飽和度呈顯著負(fù)相關(guān)性（r=-0.85，P＜0.01），與狹窄后呼吸頻率呈顯著正相關(guān)（r=0.92，P＜0.01）。結(jié)論氣管狹窄達(dá)到一定程度時，隨狹窄程度增加，呼吸功能障礙加重。采用擴(kuò)張球囊制作兔氣管狹窄模型是一種快速、可控性強(qiáng)、操作簡單、穩(wěn)定、重復(fù)性好的方法，可為氣管狹窄基礎(chǔ)研究和臨床治療提供有效可靠的實(shí)驗(yàn)載體。

新西蘭大白兔；球囊導(dǎo)管；氣管狹窄；動物模型

良惡性因素所致氣管狹窄近年來越來越受到臨床重視。氣管狹窄多因氣管內(nèi)占位引起氣道通氣功能下降，狹窄程度嚴(yán)重時可出現(xiàn)急性呼吸功能衰竭，危急患者生命。為進(jìn)一步加強(qiáng)氣管狹窄基礎(chǔ)和臨床治療研究，建立可控性強(qiáng)、操作簡單、穩(wěn)定、重復(fù)性好的氣管狹窄動物模型尤為重要。本研究旨在分析傳統(tǒng)創(chuàng)傷性氣管狹窄動物模型［1］的優(yōu)缺點(diǎn)，采用球囊導(dǎo)管建立一種新型有效的兔氣管狹窄模型并探討氣管狹窄程度與呼吸及血氧飽和度的關(guān)系，一定程度上彌補(bǔ)了傳統(tǒng)氣管狹窄動物模型的不足，擴(kuò)大了氣管狹窄動物模型應(yīng)用范圍。

1 材料與方法

1．1 實(shí)驗(yàn)材料

本實(shí)驗(yàn)取成年新西蘭大白兔34只（徐州醫(yī)學(xué)院動物實(shí)驗(yàn)中心提供），體重2．8～3．5 kg，雌雄不拘。實(shí)驗(yàn)儀器設(shè)備包括PM-7000型多參數(shù)心電監(jiān)護(hù)儀（深圳邁瑞生物醫(yī)療電子股份有限公司）、大型數(shù)字減影血管造影機(jī)（美國通用公司）、Sapphire球囊導(dǎo)管（直徑分別為2、3、3．5、4 mm，北京樂普醫(yī)療器械有限公司）、冠狀動脈球囊擴(kuò)張支架套裝釋放支架后再次消毒的球囊導(dǎo)管（本院心內(nèi)科和導(dǎo)管室提供）、4 F單彎導(dǎo)管（美國Cordis公司）、氣管切開手術(shù)器械、3％戊巴比妥鈉（上海試劑二廠）、碘海醇（揚(yáng)子江藥業(yè)集團(tuán)有限公司）和8％硫化鈉乙醇溶液。

1．2 實(shí)驗(yàn)方法

1．2．1 實(shí)驗(yàn)分組 34只兔隨機(jī)分為2組。對照組（n=4）兔全身麻醉后僅行氣管切開，不使用球囊；實(shí)驗(yàn)組（n=30）兔氣管切開后置入球囊——依據(jù)兔氣管直徑計算所需狹窄程度之球囊和（或）單彎導(dǎo)管直徑制作對應(yīng)狹窄率之氣管狹窄模型，分為5個亞組：A組（n=6）置入直徑3 mm球囊，B組（n=6）置入3．5mm球囊，C組（n=6）置入4mm球囊，D組（n=6）置入4mm球囊＋4 F單彎導(dǎo)管，E組（n=6）置入4mm球囊＋2mm球囊。

1．2．2 實(shí)驗(yàn)過程 術(shù)前禁食12 h，兔稱重后用3％戊巴比妥鈉（1 ml/kg）經(jīng)耳緣靜脈注射麻醉，待角膜反射消失后仰臥固定于DSA手術(shù)臺上，剃光頸前區(qū)、胸腹部毛發(fā)，左趾跖部用8％硫化鈉乙醇溶液作脫毛處理，聚維酮碘消毒頸前區(qū)，胸腹部連接心電監(jiān)護(hù)儀（參照嬰幼兒心電監(jiān)護(hù)儀導(dǎo)聯(lián)位置標(biāo)準(zhǔn)），將血氧探頭夾于左趾跖部監(jiān)測血氧飽和度，頸前正中線皮下注射2％鹽酸利多卡因2m l，在頸部自甲狀軟骨下緣正中線向下作長3～5 cm縱行切口；用止血鉗或刀柄鈍性分離筋膜和左、右胸骨舌骨肌（避免損傷血管和氣管），充分顯露氣管后用血管鉗在其下穿一根7號縫線備用；在第3或第4軟骨環(huán)上切開氣管管徑1/3，用剪刀向頭端作一縱向倒T型切口，用棉球或干紗布擦凈氣管內(nèi)血液或分泌物，以保證呼吸道通暢，再用鑷子夾T型切口的一角，將12 F氣管導(dǎo)管由切口向胸部方向插入氣管管腔內(nèi)，用7號縫線在軟骨環(huán)之間結(jié)扎并固定于氣管導(dǎo)管外壁，防止滑脫。操作過程中記錄麻醉前、麻醉-氣管切開后血氧飽和度及呼吸頻率。

所有實(shí)驗(yàn)兔均予以DSA三維氣管重建，測量氣管切開處下方氣管橫徑和縱徑（圖1）。實(shí)驗(yàn)組依據(jù)置入球囊直徑從小到大順序，在DSA透視和超滑導(dǎo)絲導(dǎo)引下通過氣管導(dǎo)管送入不同直徑球囊導(dǎo)管至氣管插管下方管腔，注入碘海醇至球囊充滿后再次行DSA三維氣管重建（圖2），記錄血氧飽和度和呼吸頻率，持續(xù)觀察10min，若血氧飽和度＞95％且無變化后抽空球囊并撤出。隨著置入球囊直徑增大，實(shí)驗(yàn)兔若出現(xiàn)血氧飽和度＜95％，記錄平穩(wěn)的最終血氧飽和度及呼吸頻率后抽空球囊并撤出。

圖1 DSA三維顯像測量氣管橫徑和縱徑

圖2 DSA三維氣管重建影像圖

1.2.3 觀察指標(biāo) 測量球囊最大橫截面積處正常軟骨環(huán)最大直徑，因?yàn)闅夤苘浌黔h(huán)近似橢圓型，可用該直徑與其垂徑所得橢圓面積簡略計算氣管橫截面積（圖3），并以球囊最大橫截面積（球囊橫斷面為圓形）與該處氣管管腔面積比計算氣管狹窄率［2］、血氧飽和度及呼吸頻率。

圖3 球囊與氣管橫斷面之間關(guān)系

1.3 統(tǒng)計學(xué)方法

采用SPSS 16.0統(tǒng)計學(xué)軟件分析所有數(shù)據(jù)。定量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差（±s）表示，兩組間比較用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)，各組間氣管狹窄率、最終血氧飽和度及呼吸頻率比較用方差分析及均數(shù)兩兩比較。P＜0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 麻醉與血氧飽和度及呼吸頻率關(guān)系

本實(shí)驗(yàn)34只實(shí)驗(yàn)兔在麻醉及球囊和（或）單彎導(dǎo)管置入過程中無死亡。對照組（n=4）和實(shí)驗(yàn)組（n= 30）間及實(shí)驗(yàn)組各亞組間兔體重、氣管橫截面積差異無統(tǒng)計學(xué)意義（P＞0.05）；實(shí)驗(yàn)組各亞組間氣管狹窄率差異均有統(tǒng)計學(xué)意義（P＜0.05），E組氣管狹窄率最大，其次分別為D、C、B、A組；氣管狹窄后最終血氧飽和度及呼吸頻率在A組和B組間無統(tǒng)計學(xué)意義（P＞0.05），C、D、E各組間差異均有統(tǒng)計學(xué)意義（P＜0.05），A、B與C、D、E組間亦有統(tǒng)計學(xué)差異（P＜0.05），最終血氧飽和度最低及呼吸頻率最高均在E組（表1）。

3％戊巴比妥鈉全身麻醉前、麻醉-氣管切開后及切開后30min3個時段血氧飽和度及呼吸頻率差異，在對照組無統(tǒng)計學(xué)意義（P＞0.05），在對照組與實(shí)驗(yàn)組間無統(tǒng)計學(xué)意義（P＞0.05），而對照組切開30min后血氧飽和度及呼吸頻率與實(shí)驗(yàn)組麻醉-氣管切開后比較，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P＜0.05）（表2）。

2.2 氣管狹窄率與狹窄后最終血氧飽和度及呼吸頻率關(guān)系

DSA三維顯像檢測實(shí)驗(yàn)組兔氣管狹窄率（圖4），結(jié)果顯示A組、B組、C組、D組、E組分別為（39.87± 1.43）％、（52.16±2.46）％、（68.77±2.48）％、（76.82± 2.75）％、（86.49±2.42）％。

Pearson直線回歸分析發(fā)現(xiàn)，實(shí)驗(yàn)組兔氣管狹窄率與狹窄后最終血氧飽和度間呈顯著負(fù)相關(guān)性（r=-0.87，P＜0.01），氣管狹窄率與狹窄后呼吸頻率間呈顯著正相關(guān)性（r=0.94，P＜0.01）；A組與B組間狹窄后最終血氧飽和度及呼吸頻率差異無統(tǒng)計學(xué)意義，狹窄率與狹窄后最終血氧飽和度間無相關(guān)性（r=0.054，P=0.86），狹窄率與狹窄后呼吸頻率間無相關(guān)性（r=0.11，P=0.72）；C、D、E3組狹窄率與狹窄后最終血氧飽和度間呈顯著負(fù)相關(guān)性（r=-0.85，P＜0.01），狹窄率與狹窄后呼吸頻率間呈顯著正相關(guān)性（r=0.92，P＜0.01）（圖5）。

2.3 體重與氣管橫截面積關(guān)系

Pearson相關(guān)性分析發(fā)現(xiàn)，實(shí)驗(yàn)兔體重與氣管橫截面積間無明顯線性相關(guān)性（r=0.41，P=0.23）。

3 討論

近年來，為滿足氣管狹窄基礎(chǔ)研究及臨床研究需要，國內(nèi)外學(xué)者采用多種方法建立氣管狹窄動物模型，其理論依據(jù)基本是通過各種方法引起氣管損傷，致使肉芽組織增生及瘢痕組織形成。制模方法包括：①機(jī)械損傷法如外科手術(shù)、刮擦、支架置入等。Nakagishi等［3］報道使用毛刷損傷氣道黏膜方法制作兔氣管狹窄模型，林愛軍等［4］報道采用金屬支架置入及軟骨切除方法制作犬氣管狹窄模型。②化學(xué)損傷法。Saueressig等［5］采用NaOH注射及黏膜下軟骨環(huán)切開方法制作氣管狹窄動物模型。③熱或冷損傷法。李慧等［6］采用氬氣刀結(jié)合支架置入成功制作犬氣管狹窄模型。模型實(shí)際制作操作過程中一種或一次損傷通常難以達(dá)到所需氣管狹窄程度，需要多種方法結(jié)合，必要時予以多次損傷［7］。

圖4 DSA三維顯像檢測實(shí)驗(yàn)組兔氣管狹窄率掃描圖像

表1 實(shí)驗(yàn)組兔基本檢測參數(shù)比較（±s）

表1 實(shí)驗(yàn)組兔基本檢測參數(shù)比較（±s）

注：*均數(shù)兩兩比較，P＜0.05

氣管橫截面積/mm2狹窄率/％ 最終血氧飽和度/％ 狹窄后呼吸頻率/（次/min）22.59±0.18 39.87±1.43* 99.50±0.84 34.17±2.79 23.53±1.11 52.16±2.46* 99.97±0.82 34.33±2.66 23.29±0.85 68.77±2.48* 90.83±0.75* 54.00±2.68*23.29±0.85 76.82±2.75* 83.50±1.87* 63.83±4.87*23.14±0.65 86.49±2.42* 66.67±7.84* 78.83±2.32*實(shí)驗(yàn)組別 體重/kg A組（n=6） 3.08±0.18 B組（n=6） 3.25±0.22 C組（n=6） 3.30±0.14 D組（n=6） 3.27±0.12 E組（n=6） 3.27±0.16

表2 對照組與實(shí)驗(yàn)組血氧飽和度及呼吸頻率比較 （±s）

表2 對照組與實(shí)驗(yàn)組血氧飽和度及呼吸頻率比較 （±s）

注：*對照組切開30min后與實(shí)驗(yàn)組麻醉-氣管切開后比較，P＜0.05

組別 血氧飽和度/％呼吸頻率/（次/分）麻醉前 麻醉-氣管切開后 切開30min后 麻醉前 麻醉-氣管切開后 切開30min后對照組（n=4） 99.75±0.50 99.50±0.58 99.50±0.58 33.75±3.10 34.74±2.50 34.75±1.89實(shí)驗(yàn)組（n=30） 99.97±3.40 99.60±0.56 99.60±0.56* 36.17±3.40 36.10±2.72 36.10±2.72*

圖5 氣管狹窄率與最終血氧飽和度及呼吸頻率的Pearson直線回歸分析

創(chuàng)傷性氣管狹窄動物模型與氣管插管、外科手術(shù)及其它因素?fù)p傷人體氣管所致狹窄，具有相似的病理基礎(chǔ)，對于預(yù)防和治療肉芽組織增生及瘢痕組織所致狹窄研究有重要意義［8-10］。然而傳統(tǒng)創(chuàng)傷性氣管狹窄動物模型仍存在不足：①氣管狹窄程度不易得到嚴(yán)格控制。文獻(xiàn)報道只要損傷深達(dá)氣管軟骨膜、損傷范圍足夠大就可致氣管瘢痕性狹窄，但損傷程度及范圍與氣管狹窄程度之比例很難明確，氣管狹窄程度無法得到嚴(yán)格控制［11-13］。分析其原因：一是制作創(chuàng)傷性氣管狹窄模型過程中人為主觀因素占主導(dǎo)地位，無法精確量化損傷程度及范圍；二是不同生物物種和同種生物個體之間均存在差異，相同損傷程度很難得到一致的狹窄程度。②可用性動物模型制作耗時長。氣管受損傷后愈合如肉芽組織生長和瘢痕形成時間需要數(shù)天至數(shù)周，創(chuàng)傷性氣管狹窄動物模型制作過程一般為2周至2個月［7］；時間過短難以達(dá)到所需狹窄程度，時間過長則并發(fā)癥過多。③實(shí)驗(yàn)制作過程復(fù)雜，步驟繁瑣，耗資大，推廣難。制作中為達(dá)到預(yù)定狹窄程度，通常需要聯(lián)合2種或2種以上技術(shù)。林愛軍等［4］報道，采用手術(shù)及支架置入方法建立的氣管狹窄模型氣管狹窄程度僅為20％～30％，因較難滿足要求有時還需多次對氣管進(jìn)行損傷，頻繁的實(shí)驗(yàn)操作會增加并發(fā)癥發(fā)生率，實(shí)驗(yàn)動物死亡率增高，實(shí)驗(yàn)耗材量增加。

針對以上不足，為更多更廣泛實(shí)驗(yàn)研究提供快速、可控性強(qiáng)的氣管狹窄動物模型，我們試以球囊擴(kuò)張治療狹窄管腔理論為基礎(chǔ)，借鑒Snapper等［14］球囊擴(kuò)張阻斷心房血液回流成功建立羊心源性肺水腫模型的方法，采用球囊導(dǎo)管建立了急性可控性兔氣管狹窄模型。

Loewen等［15］研究提示2.3～5.1 kg體重兔的氣管直徑無明顯差異，我們因而推論在2.3～5.1 kg體重兔氣管中置入不同直徑球囊后能夠制作出所需氣管狹窄程度固定的動物模型，操作過程中僅需將兔氣管切開后放置所需直徑球囊便可。本研究表明，實(shí)驗(yàn)兔各組間體重、氣管橫截面積無統(tǒng)計學(xué)差異，實(shí)驗(yàn)同質(zhì)性強(qiáng)；2.8～3.5 kg兔體重與氣管橫截面積間無明顯相關(guān)性，與研究一致；3％戊巴比妥鈉1 ml/kg耳緣靜脈注射具有良好的全身麻醉效果，同時無明顯呼吸抑制。

不同橫截面積球囊單獨(dú)或聯(lián)合置入兔氣管后可產(chǎn)生相對應(yīng)的氣管狹窄程度，球囊橫截面積越大狹窄程度越大。本研究顯示，氣管狹窄程度＜（52.16± 2.46）％時對兔呼吸系統(tǒng)未產(chǎn)生明顯影響，狹窄程度＞（68.77±2.48）％時兔血氧飽和度及呼吸頻率均出現(xiàn)異常，且隨著狹窄程度增加，血氧飽和度逐漸下降、呼吸頻率逐漸加快，嚴(yán)重時可出現(xiàn)窒息。與魏寧等［16］報道的臨床上氣管狹窄率達(dá)50％～75％后患者會出現(xiàn)呼吸系統(tǒng)障礙癥狀，基本一致。

本研究成功利用球囊制作兔氣管狹窄動物模型，與傳統(tǒng)氣管狹窄模型相比，除具有模型制作簡便、重復(fù)性好等特點(diǎn)外，還有如下優(yōu)點(diǎn)：①動物模型制作快速。本研究實(shí)驗(yàn)組C、D、E組兔置入占?xì)夤軝M截面積約65％的球囊后約1min，其血氧飽和度逐漸下降，呼吸頻率逐漸增加，表明通過置入氣管橫截面積＞65％的球囊快速建立兔急性癥狀性氣管狹窄模型是可行的。臨床上患者出現(xiàn)急性氣管狹窄所致呼吸困難時，為搶救生命，往往無充足時間展開臨床及基礎(chǔ)研究，而傳統(tǒng)創(chuàng)傷性氣管狹窄動物模型多為慢性損傷，亦無法為急性氣管狹窄研究提供相應(yīng)動物模型。本研究所采用方法則可快速建立急性氣管狹窄動物模型，對臨床及基礎(chǔ)研究具有重要意義。②氣管狹窄程度可控性強(qiáng)。本研究以不同直徑球囊單獨(dú)或聯(lián)合使用制作兔氣管狹窄模型，球囊內(nèi)注入對比劑后可通過DSA三維掃描精確測量球囊所占?xì)夤軝M截面積比例（圖2），從而獲得不同程度氣管狹窄，為臨床進(jìn)一步研究特定氣管狹窄狀態(tài)下心肺功能變化及制定恰當(dāng)?shù)闹委煼桨柑峁┎煌瑒游锬Ｐ汀Ｍㄟ^置入3 mm、3.5 mm、4 mm、4 mm＋4 F單彎導(dǎo)管和4 mm＋2 mm不同直徑球囊導(dǎo)管精準(zhǔn)制作氣管狹窄模型，保證了實(shí)驗(yàn)精確性和可控性。本研究所用球囊來源于心內(nèi)科冠狀動脈球囊擴(kuò)張支架使用后再消毒球囊，收集方便且無額外費(fèi)用。

綜上所述，采用擴(kuò)張球囊制作兔氣管狹窄模型是一種快速、可控性強(qiáng)、操作簡單、穩(wěn)定、重復(fù)性好的方法，為氣管狹窄基礎(chǔ)和臨床研究提供了有效可靠的實(shí)驗(yàn)載體，具有廣泛推廣價值。本研究實(shí)驗(yàn)載體僅為兔，應(yīng)用于其它動物實(shí)驗(yàn)載體如犬、豬、猴等的研究尚需進(jìn)一步完善。

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The establishment of acute controllable tracheal stenosis model by using balloon catheter in experimental rabbits

LIU Jin，WEINing，XU Hao，WANG Wen-liang. Department of Interventional Radiology，Affiliated Hospital of Xuzhou Medical College，Xuzhou，Jiangsu Province 221006，China

ObjectiveTo establish a rabbit model of acute controllable tracheal stenosis by using balloon catheter，and to explore the relationship between blood oxygen saturation，respiratory frequency and the degree of tracheal stenosis.M ethodsThirty-four New Zealand white rabbits were random ly divided into the control group（n=4）and experiment group（n=30），which was equally subdivided into subgroup A，B，C，D and E with 6 rabbits in each subgroup.Under general anesthesia，tracheal incision and tracheal intubation were performed in the rabbits of the control group；DSA 3D reformation was conducted tomeasure the tracheal transverse diameter and longitudinal diameter below the tracheal intubation level，and the oxygen saturation and breathing frequency were respectively recorded before anesthesia，immediate after tracheal incision and 30 min after tracheal incision.For the rabbits of the experimental group，after tracheal incision and tracheal intubation，a balloon catheter or balloon+single curved catheter was inserted into the air lumenbelow the tracheal intubation level；the diameter of balloon used in the rabbitswas 3mm for the subgroup A，3．5mm for the subgroup B，4．0mm for the subgroup C，4mm（+4 F single curved catheter）for the subgroup D，and 4mm and 2mm for the subgroup E．3D reformation of the trachea was performed before and after the balloon was inserted；the transverse diameter and longitudinal length aswell as themaximum diameter of the dilated balloon below the tracheal incision levelwere recorded，the tracheal stenosis ratio was calculated，and the final oxygen saturation and breathing frequency were respectively recorded before anesthesia，immediate after tracheal incision and after balloon expansion．ResultsNo significant differences in the body weight，tracheal cross-sectional area existed between the control group and the experimental group，as well as between the subgroups of the experimental group （P＞0．05）．General anesthesia （1m l/kg of 3％pentobarbital sodium）had no obvious effect on oxygen saturation and breathing frequency of the rabbits（P＞0．05）．Body weight of 2．8－3．5 kg had no significant linear correlation with the trachea cross-sectional area（r=0．41，P= 0．23）．The tracheal stenosis ratios of the subgroup A，B，C，D and Ewere（39．87±1．43）％，（52．16±2．46）％，（68．77±2．48）％，（76．82±2．75）％and（86．49±2．42）％respectively；statistically significant differences existed between each other among the five subgroups（P＜0．05），with the tracheal stenosis ratio of subgroup E being the biggest．In subgroup A and B，the tracheal stenosis ratio showed no obvious correlation with the final oxygen saturation and breathing frequency（r=0．054，P=0．86；r=0．11，P=0．72）；in subgroup C，D and E，the tracheal stenosis ratio bore a significant negative correlation with the final oxygen saturation（r=－0．85，P＜0．01），while a significantpositive correlationwith the breathing frequency（r=0．92，P＜0．01）．ConclusionWhen the degree of tracheal stenosis reaches a certain level，the respiratory dysfunction become worse with the increase of the degree of stenosis．The use of balloon dilatation to establish the rabbit model of tracheal stenosis is fast，strong controllable，simple-manipulated，stable and repeatable；the models can provide reliable experimental carrier for basic research and clinical treatment of tracheal stenosis．（J Intervent Radiol，2015，24：707-712）

New Zealand white rabbit；balloon catheter；tracheal stenosis；animalmodel

R734

A

1008-794X（2015）-08-0707-06

2014-10-24）

（本文編輯：邊 佶）

10．3969／j．issn．1008－794X．2015．08．014

徐州市醫(yī)學(xué)科研課題（XW J2011017）、徐州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院醫(yī)學(xué)科技項(xiàng)目（2013104035）、徐州醫(yī)學(xué)院“振興計劃”項(xiàng)目（XZMC20122015）

221006 江蘇徐州 徐州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院介入放射科

魏 寧 E-mail：weiningjieru2006@163.com