陸敏佳,蔣玉蓉,陳國林,毛 前,陸國權(quán)
(1.浙江農(nóng)林大學(xué) 農(nóng)業(yè)與食品科學(xué)學(xué)院,浙江 臨安 311300;2.浙江水利水電學(xué)院 水利工程系,浙江杭州 310018)
藜麥Chenopodium quinoa又稱南美藜、藜谷、奎奴亞藜等,是1年生的藜科Chenopodiaceae草本作物,在安第斯山脈種植已有5 000多年的歷史,被印加人稱為 “谷物之母”和 “安第斯山的真金”[1-2]。藜麥蛋白質(zhì)含量高,具有近乎完美的氨基酸組成,富含不飽和脂肪酸、類黃酮、維生素E等多種有益化合物,是聯(lián)合國糧農(nóng)組織認(rèn)定的唯一的完美營養(yǎng)食品,被譽(yù)為 “未來的超級谷物” “營養(yǎng)黃金”“有機(jī)谷類之王”等[3-4]。長期食用藜麥,對心臟病、高血壓、高血糖、高血脂等有很好防治作用。藜麥喜熱帶、亞熱帶干濕氣候,生長溫度為2.0~35.0℃,生長適溫14.0~18.0℃,在營養(yǎng)生長階段可耐輕度霜凍(-1.0~0℃),在種子結(jié)實之后可耐-6.0℃低溫,對鹽堿、干旱、霜凍、病蟲害等的抗性能力都很強(qiáng),植株在自然肥力低的情況下仍能生長良好[5]。由于藜麥的營養(yǎng)價值在提供糧食和營養(yǎng)安全等方面的突出作用,聯(lián)合國大會宣布2013為 “國際藜麥年”[6]。黃酮類化合物是一種生理活性活潑的物質(zhì),具有降低血管脆性及異常的通透性、降血壓、降血脂及膽固醇、抗病毒、抗炎、抗癌防癌、抗氧化等藥理作用,尤以對心腦血管疾病的治療作用而備受重視[7-8]。研究者已用不同方法在銀杏Ginkgo biloba[9],甘薯Ipomoea batatas[8],花 生 Arachis hypogaea[10],大 蒜 Allium sativum[11],蕎 麥 Fagopyrum esculentum[12],小白菜 Brassica rapa chinensis[13],金銀花 Lonicera japonica[14]以及豆科 Leguminosae 植物[15-16]中等進(jìn)行了黃酮提取和含量測定。藜麥谷粒中比較豐富的類黃酮物質(zhì)異黃酮和維生素E組合可明顯促進(jìn)糖、脂代謝和胰島素分泌,對糖尿病的治療作用明顯[17-19]。然而,有關(guān)藜麥黃酮類化合物的研究國內(nèi)外報道甚少[20]。本研究著重討論藜麥葉片黃酮類物質(zhì)的提取和測定方法,進(jìn)而分析基因型間的差異,為藜麥葉片黃酮類物質(zhì)的開發(fā)利用和高黃酮高氧化性資源的篩選提供依據(jù)。
藜麥盆栽40 d后,摘取新鮮葉片,于陰涼通風(fēng)處晾干后,置于80℃鼓風(fēng)烘箱中干燥12 h,取出后用粉碎機(jī)充分粉碎,過0.5 mm孔篩篩選,裝入干燥器皿中備用。
主要試劑:蘆丁對照品購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;亞硝酸鈉、硝酸鋁、氫氧化鈉、乙醇等試劑均為國產(chǎn)分析純。
主要儀器:DHG 9123A電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱(上海精宏實驗設(shè)備有限公司)、TP-214電子天平(丹佛儀器有限公司)、XMTD-6000恒溫水浴鍋(上海申勝生物技術(shù)有限公司)、TDL-40B臺式離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠)、752PC紫外可見分光光度計(上海光譜儀器有限公司)。
以藜麥品種PI814932為材料,精確稱取其全粉1.00 g,置于圓底燒瓶中。采用水浴回流加熱法進(jìn)行提取試驗。選擇影響藜麥葉片黃酮得率的主要因素如乙醇體積分?jǐn)?shù)、料液比、浸提時間等3個因素為考察因子,按照L9(33)正交表安排不同提取條件試驗(表1),以確定最佳提取條件。
鑒于目前以蘆丁為標(biāo)樣的比色法是測定黃酮得率最常用的方法[21],本研究仍沿用該法來測定藜麥總黃酮得率。準(zhǔn)確稱取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)試劑5.000 mg,用體積分?jǐn)?shù)為60%乙醇完全溶解后定容至50.0 mL,搖勻的質(zhì)量濃度為0.1 g°L-1的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別吸取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液0.0,1.0,2.0,3.0,4.0,5.0 mL于6只10.0 mL刻度試管中,用體積分?jǐn)?shù)為60%乙醇補(bǔ)至5.0 mL,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%的亞硝酸鈉溶液0.3 mL,搖勻,放置6 min后加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的硝酸鋁溶液0.3 mL,放置6 min,再加入1.0 mol°L-1氫氧化鈉溶液4.0 mL,混勻,再加體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇0.4 mL,室溫放置15 min后于波長501 nm處測定其吸光度,以體積分?jǐn)?shù)為60%乙醇溶液為空白對照,建立測定標(biāo)準(zhǔn)曲線和線性回歸方程。測定時,以不同的樣品液代替蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液,其他步驟與制作蘆丁標(biāo)準(zhǔn)方程相同。計算公式如下:總黃酮得率(%)= (C×V1×V2×10-3)/(W/V0)×100。其中: C 為測定樣液的質(zhì)量濃度(g°L-1);V0為測定吸光度所用樣液的體積(mL); V1為測定時稀釋體積(mL); V2為樣液定容后體積(mL); W 為樣品質(zhì)量(g)。
表1 L9(33)正交表和實驗結(jié)果Table1 Orthogonal table L9(33) and experimental results
精確稱取藜麥品種 ‘TEMUCO Quinoa TRADITIONAL’ 共6份相同樣品,按上述最佳提取和測定方法進(jìn)行重復(fù)性試驗,驗證可靠性。選上述藜麥品種 ‘TEMUCO Quinoa TRADITIONAL’,設(shè)定不同加入量,6次重復(fù),加入已知量蘆丁樣液,計算回收率,黃酮提取和測定方法同上。
選擇 ‘TEMUCO Quinoa TRADITIONAL’‘QuinoaB.Rain Sow’‘Temuco’‘1591 Quinoa Cherry’‘Tomico Quinoa’‘CQ-TEMVCC’‘PI814932’‘PI596293’‘Tumuco(7)hybrids’‘PsI596498’10 個不同基因型藜麥品種,統(tǒng)一播種和管理,采用上述同樣方法進(jìn)行制樣。然后采用確定的最優(yōu)提取工藝,對所選藜麥品種進(jìn)行提取,分析藜麥葉片黃酮得率的基因型差異。
蘆丁在0~50.0 mg°L-1質(zhì)量濃度范圍內(nèi),以吸光值(y)為縱坐標(biāo),蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)量濃度(x)為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到回歸方程:y=13.771x-0.013 6(R2=0.998 0)。該結(jié)果表明:蘆丁在該質(zhì)量濃度范圍內(nèi)吸光度值與質(zhì)量濃度之間存在良好的線性關(guān)系。
選用30%,70%和95%3個有代表性的乙醇體積分?jǐn)?shù)作為提取液。因乙醇沸點在80℃左右,采用水浴熱回流法(80~90℃)提取對它影響很小,因此,溫度因素可不考慮在內(nèi)。其他提取條件為提取時間和料液比。利用3因子3水平正交試驗研究各因素對工藝的影響,同時為明確影響提取得率的顯著性因子,對正交表中的黃酮得率作方差分析。結(jié)果分別見表1和表2。
由表2可知:FB>F0.1,因素B對黃酮提取量的影響顯著,F(xiàn)0.2<FA<F0.1,因素A對黃酮提取量有一定的影響,但不顯著。由表1可知,RB>RA>RC,據(jù)此,可確定各因素對黃酮提取量影響主次順序為B>A>C。
2.2.1 浸提時間的選擇 由表1可知:提取時間為0.5 h時黃酮得率最高,其后逐漸降低。因此,提取時間以0.5 h為佳。延長浸提時間,可能由于黃酮降解,從而降低了提取量[8]。
2 藜麥總黃酮得率的方差分析Table 2 Variation analysis of extraction rate of flavonoids in quinoa
2.2.2 乙醇體積分?jǐn)?shù)的選擇 由表2可知:乙醇休積分?jǐn)?shù)對指標(biāo)具有一定的影響。根據(jù)表1和因素A的數(shù)據(jù),乙醇體積分?jǐn)?shù)為30%~70%時,黃酮得率劇增;而乙醇體積分?jǐn)?shù)為70%~95%時,黃酮得率明顯下降,顯現(xiàn)一個拋物線變化的趨勢。因此,確定乙醇最佳體積分?jǐn)?shù)為70%。
2.2.3 料液比的選擇 由表2可知:料液比對指標(biāo)影響不顯著。當(dāng)對不同料液比進(jìn)行試驗時,發(fā)現(xiàn)料液比在1:40時,黃酮-得率略高于料液比為1∶60,其后隨著料液比的增加黃酮-得率逐漸降低。因此,從節(jié)約材料與藥品綜合比較后,確定最適料液比為1∶40。
綜上所述,藜麥總黃酮得率的最優(yōu)提取條件為:乙醇體積分?jǐn)?shù)70%,浸泡時間0.5 h,料液比1∶40。
根據(jù)已獲得的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線與線性回歸方程,計算出每毫升提取液中的總黃酮含量,再根據(jù)公式計算總黃酮得率。為驗證比色法測定黃酮得率的可靠性,進(jìn)行了6次重復(fù)性試驗和回收率試驗。實驗結(jié)果顯示:在波長510 nm條件下,各重復(fù)實驗組的吸光度值分別為0.638,0.637,0.635,0.637,0.634,0.639。結(jié)果證明了比色法測定的可靠性;從回收率結(jié)果(表3)可以看出,本測定方法各處理的回收率均接近100%,重現(xiàn)性也較高。綜合上述,本法適用于測定藜麥黃酮類化合物的得率。
表3 藜麥黃酮分析的回收率實驗結(jié)果Table 3 Experimental results of recovery in extraction rate of flavonoids in quinoa
表4列出了10個藜麥品種的黃酮得率。由表4可知:藜麥黃酮得率在基因型間存在很大差異,變幅為0.215%~0.933%,平均為0.619%,變異系數(shù)達(dá)34.44%。其中,以品種 ‘PI814932’的總黃酮得率最高,達(dá)0.933%。其次為 ‘QuinoaB.Rain Sow’和 ‘Temuco’,分別列第2位和3位,但兩者基因型黃酮得率差異不大。緊隨其后的分別是品種 ‘1591 Quinoa Cherry’和 ‘TEMUCO Quinoa TRADITIONAL’。品種 ‘Tomico Quinoa’和 ‘CQ-TEMVCC’的基因型黃酮得率相近,分別排列第8位和第9位。而葉片表面覆有紫色粉層的 ‘PI596498’品種的總黃酮得率最低,為0.215%,藜麥總黃酮得率可能與其葉片表面的紫色粉層有關(guān)。
黃酮類化合物因其獨特的保健功能而越來越得到人們的重視[8]。藜麥被認(rèn)為是最適宜人類的完美“全營養(yǎng)食品”,是最具潛力的農(nóng)作物之一。藜麥種子及新芽中的花青素、總多酚有較高的抗氧化性,可以作為傳統(tǒng)食物的替代品,具有很高的營養(yǎng)價值[22]。藜麥的葉子可當(dāng)蔬菜吃,與菠菜Spinacia oleracea葉子相似,既可用來涼拌生食,又是新鮮蔬菜的色拉的理想原料。本研究首次對藜麥的不同基因型品種的葉片黃酮得率進(jìn)行了測定比較。參照國內(nèi)外提取黃酮的多種方法[23-24],紫外可見分光光度法操作簡單方便,標(biāo)準(zhǔn)對照品易得,結(jié)果可靠,是黃酮類化合物的定量分子最常用的方法之一[25]。本著溶劑無毒性、易回收、對黃酮溶解力強(qiáng)和工藝簡單的原則,確定乙醇為最佳提取劑。本研究表明,藜麥黃酮類化合物的提取率與乙醇體積分?jǐn)?shù)、提取時間和料液比有關(guān)。經(jīng)采用3因素3水平正交試驗,其最佳提取工藝是乙醇體積分?jǐn)?shù)70%,提取時間0.5 h,料液比1∶40,且一次提取即可使得率達(dá)85%以上,這為藜麥黃酮類化合物的開發(fā)利用提供了理論依據(jù)和工藝參數(shù)。
表4 藜麥黃酮得率的基因型差異Table 4 Genotype variation of extraction yields of flavonoids in quinoa
黃酮得率的比色法測定比較簡單可靠,但易受脂類物質(zhì)的干擾[8]。從重復(fù)性試驗和回收率試驗中可看出,比色法適于測定藜麥總黃酮得率,且具有良好的重現(xiàn)性和穩(wěn)定性。說明藜麥葉片中含脂量不足以影響藜麥黃酮的提取和測定。研究表明: ‘PI814932’品種的黃酮提取量最高,達(dá)0.933%,該含量高于赪桐 Clerodendrum japonicum 根[24], 鮮 青 蒿 Artemisia carvifolia[26], 甜 菜 Beta vulgaris[27]等 的 黃 酮 含 量 。不同品種間藜麥葉片黃酮得率差異系數(shù)達(dá)34.44%,說明通過適當(dāng)?shù)挠N改良途徑和方法,可以篩選到高黃酮高抗氧化性藜麥品種。藜麥黃酮提取量還可能受葉片粉質(zhì)層的成分、葉片中葉綠素、花青苷、類胡蘿卜素含量[28]以及內(nèi)酯含量大小的遺傳和環(huán)境因子[29]等因素影響。本項目將對不同生長發(fā)育時期的藜麥葉片黃酮含量變化,以及葉片和種子黃酮含量的相關(guān)性作進(jìn)一步研究,更好地促進(jìn)藜麥作為一種保健的多功能多方面可利用的食物源的大力開發(fā)。
[1]朱劍宏.南美藜的化學(xué)組成和營養(yǎng)價值[J].成都大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2002,21(2):24-28.ZHU Jianhong.The chemical composition and nutrition of quinoa [J].J Chengdu Univ Nat Sci,2002,21(2): 24-28.
[2]VEGA-GáLVEZ A,MIRANDA M,VERGARA J,et al.Nutrition facts and functional potential of quinoa(ChenopodiumquinoaWilld.),anancientAndeangrain: areview [J].J SciFoodAgric,2010,90(15): 2541-2547.
[3]OSHODI A A,OGUNGBENLE H N,OLADIMEJI M O.Chemical composition,nutritionally valuable minerals and functional properties of benniseed (Sesamun radiatum),pearl millet (Pennisetum typhoides) and quinoa(Chenopodium quinoa) flours [J].Int J Food Sci Nutr,1999,50(5): 325-331.
[4]COMAI S,BERTAZZO A,BAILONI L,et al.The content of proteic and nonproteic (free and protein-bound) tryptophan in quinoa and cereal flours [J].Food Chem,2007,100(4): 1350-1355.
[5]JACOBSEN S E,MUJICA A,JENSEN C R.The resistance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) to adverse abiotic factors [J].Food Rev Int,2003,19(1/2): 99-109.
[6]王晨靜,趙習(xí)武,陸國權(quán),等.多功能藜麥的研究進(jìn)展[J].浙江農(nóng)林大學(xué)學(xué)報,2014,31(2):296-301.WANG Chenjing,ZHAO Xiwu,LU Guoquan,et al.A review of characteristics and utilization of Chenopodium quinoa [J].J Zhejiang A & F Univ,2014,31(2): 296-301.
[7]劉步東,李登昌,丁寧.勿忘我花中總黃酮含量測定[J].中獸醫(yī)醫(yī)藥雜志,2013(1):41-42.LIU Budong,LI Dengchang,DING Ning.Content determination of total flavonoid in Myosotis sylvatica flower [J].J Trad Chin Vet Med,2013(1): 41-42.
[8]陸國權(quán),任韻,唐忠厚,等.甘薯黃酮類物質(zhì)的提取及其基因型差異研究[J].浙江大學(xué)學(xué)報:農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版,2005,31(5): 541-544.LU Guoquan,REN Yun,TANG Zhonghou,et al.Flavonoid extraction and flavonoid content genotypic variation in sweetpotato storage roots [J].J Zhejiang Univ Agric & Life Sci,2005,31(5): 541-544.
[9]林建原,季麗紅.響應(yīng)面優(yōu)化銀杏葉中黃酮的提取工藝[J].中國食品學(xué)報,2013,13(2):83-90.LIN Jianyuan,JI Lihong.Optimization of flavonoids from Ginkgo biloba using response surface analysis [J].J Chin Inst Food Sci Technol,2013,13(2): 83-90.
[10]張斌,孫蘭萍,馬龍,等.大孔樹脂分離純化花生殼總黃酮的研究[J].中國糧油學(xué)報,2010,25(2):126-130.ZHANG Bin,SUN Lanping,MA Long,et al.Separation and purification of flavonids from peanut hull by macroporous resins [J].J Chin Cerea Oils Assoc,2010,25(2): 126-130.
[11]高淑云,徐婷婷.響應(yīng)面優(yōu)選大蒜中黃酮提取工藝研究[J].中國調(diào)味品,2013,38(3):44-49.GAO Shuyun,XU Tingting.Optimization of extraction technique of flavonoids from garlic by response surface methodology [J].China Condiment,2013,38(3): 44-49.
[12]王靜霞,黃艷菲,趙小燕,等.蕎麥和商品苦蕎茶中總黃酮的含量測定[J].食品工業(yè)科技,2013,34(2):58-60.WANG Jingxia,HUANG Yanfei,ZHAO Xiaoyan,et al.Determination of total flavonoids in buckwheat and buckwheat goods [J].Sci Technol Food Ind,2013,34(2): 58-60.
[13]李長新,張魯剛,孫希祿,等.紫色小白菜花青素的提取工藝優(yōu)化[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2011,39(9): 200-206.LI Changxin,ZHANG Lugang,SUN Xilu,et al.Optimization of extracting process of anthocyanidin in purple pakchoi[J].J Northwest A & F Univ Nat Sci Ed,2011,39(9): 200-206.
[14]賈霖,黃國清,肖軍霞.金銀花中黃酮類化合物的提取工藝[J].食品研究與開發(fā),2013,34(9):41-43.JIA Lin,HUANG Guoqing,XIAO Junxia.Study on extraction of flavonoids from honeysuckle [J].Food Res Develop,2013,34(9): 41-43.
[15]李瓊.超聲波輔助法提取蕓豆種子黃酮類化合物研究[J].食品研究與開發(fā),2012,33(2):40-42.LI Qiong.Study on the extraction of bioflavonoid compound from seeds of kidney beans by the super-sonic wave auxiliary method [J].Food Res Develop,2012,33(2): 40-42.
[16]任順成,王鵬,王國良,等.常用食用豆類中黃酮類化合物含量的測定[J].中國糧油學(xué)報,2009,24(7):132-137.REN Shuncheng,WANG Peng,WANG Guoliang,et al.Determination of flavonoid contents in common edible legumes [J].J Chin Oils Assoc,2009,24(7): 132-137.
[17]de SIMONE F,DINI A,PIZZA C,et al.Two flavonol glycosides from Chenopodium quinoa [J].Phytochemistry,1990,29(11): 3690-3692.
[18]OGUNGBENLE H N.Nutrional evaluation and functional properties of quinoa (Chenopodium quinoa) flour [J].Int J Food Sci Nutr,2003,54(2): 153-158.
[19]HILAL M,PARRADO M F,ROSA M,et al.Epidermal lignin deposition in quinoa cotyledons in response to UVB radiations [J].Photochem Photobiol,2004,79(2): 205-210.
[20]JAMES A,LILIAN E.Quinoa (Chenopodium quinoa Willd.): composition,chemistry,nutritional and functional properties [J].Adv Food Nutr Res,2009,58: 1-31.
[21]楊美華,盧兗偉,匡巖巍,等.柱色譜-紫外分光光度法測定廣金錢草中總黃酮的含量[J].中草藥,2004,35(6): 688-690.YANG Meihua,LU Yanwei,KUANG Yanwei,et al.Quantitative determination of total flavonoids in Desmodium styracifolium by Column chromatogram-UV spectrophotometry [J].Chin Trad Herb Drug,2004,35(6): 688-690.
[22]PAéSKO P,BARTOéNH,ZAGRODZKI P,et al.Antnocyanins,total polyphenols and antioxidant activity in amaranth and quinoa seeds and sprouts during their growth [J].Food Chem,2009,115(3): 994-998.
[23]陳君,周光明,楊遠(yuǎn)高,等.離子液體-超聲輔助萃取/高效液相色譜法測定白花杜鵑葉中的黃酮[J].分析測試學(xué)報,2013,32(3): 341-345.CHEN Jun,ZHOU Guangming,YANG Yuangao,et al.Simultaneous determination of flavonoids in Rhododendron mucronatum leaves by lonic liquid-based ultrasonic-assisted extraction combined with high performance liquid chromatography [J].J Instrum Anal,2013,32(3): 341-345.
[24]秦祖杰,梁潔,孫正伊.赪桐根中總黃酮的提取工藝優(yōu)選[J].中國實驗方劑學(xué)雜志,2013,19(5):60-62.QIN Zujie,LIANG Jie,SUN Zhengyi.Optimization of extraction technology of total flavones from roots of Clerodendrum japonicum [J].Chin J Exp Trad Med Form,2013,19(5): 60-62.
[25]劉璐,付明哲,王俠,等.5種棘豆總黃酮含量的測定比較[J].草葉科學(xué),2011,28(4):683-686.LIU Lu,F(xiàn)U Mingzhe,WANG Xia,et al.Determination of total flavonoids on 5 species of Oxytropis [J].Pratacul Sci,2011,28(4): 683-686.
[26]陳金娥,趙金玲,張海容.青蒿中黃酮、多酚和VC含量測定及抗氧化性研究[J].食品研究與開發(fā),2013,34(4): 1-3.CHEN Jin’e,ZHAO Jinling,ZHANG Hairong.Determination of flavonoids,polyphenol and vitamin C and its antioxidant properties of Atemisia annual L.[J].Food Res Dev,2013,34(4): 1-3.
[27]陳全斌,譚冬明,李佳,等.甜菜植株不同部位總黃酮含量的測定[J].林業(yè)科技,2007,32(4):68-70.CHEN Quanbin,TANG Dongming,LI Jia,et al.Determination of total flavonoids in the different parts of Rubus suavissimus[J].For Sci & Technol,2007,32(4): 68-70.
[28]程水源,王燕,李俊凱,等.銀杏葉片色素含量與黃酮含量關(guān)系的研究[J].林業(yè)科學(xué),2001,37(5):31-34.CHEN Shuiyuan,WANG Yan,LI Junkai,et al.Study on the realationship between the flavonoids and pigments in Ginkgo biloba leaf[J].Sci Silv Sin,2001,37(5): 31-34.
[29]謝寶東,王華田.銀杏不同家系和無性系葉片黃酮與內(nèi)酯含量變異[J].林業(yè)科技開發(fā),2008,22(2):33-37.XIE Baodong,WANG Huatian.Genetic variation of flavonoid and terpene content in Ginkgo biloba leaves and growth among various families and clones [J].China For Sci Technol,2002,22(2): 33-37.