鄭州市首例人感染H7N9禽流感病例的實驗室檢驗分析

牛衛(wèi)東　戴蕾　史軍

【摘要】 目的：對鄭州市首例人感染H7N9禽流感病例進行實驗室診斷和分析，以提高實驗室應急檢測能力。方法：采集鄭州市管城區(qū)1例疑似病例的鼻、咽拭子樣本，提取病毒RNA，采用甲、乙型流感通用引物和探針、季節(jié)性流感（包括H1N1、H3N2）特異性引物和探針、甲型H1N1流感特異性引物和探針以及H5N1和H7N9特異性引物和探針，以Real-time RT-PCR方法檢測流感病毒核酸。結果：乙型流感、季節(jié)性流感（包括H1N1、H3N2）、甲型H1N1流感和H5N1高致病性禽流感擴增結果均為陰性；甲型流感通用引物和H7N9亞型流感病毒擴增結果均為陽性。結論：樣本經河南省疾控中心與國家疾控中心復核檢測，證實該患者為鄭州市首例人感染H7N9禽流感病例。

【關鍵詞】 禽流感； H7N9； Real-time RT-PCR

自2013年2月起，我國上海和安徽等地先后出現(xiàn)不明原因重癥肺炎病例，之后被確診為人感染H7N9禽流感。此前報道的可感染人的禽流感病毒亞型為H5N1、H9N2、H7N7、H7N2、H7N3[1-3]。H7N9亞型主要在野生鳥類中間傳播，在此之前無人感染病例。甲型流感病毒可以通過基因重組而改變其抗原性，人類歷史上幾次流感大流行的病毒株都是通過人類季節(jié)性流感病毒和動物流感病毒的基因重組而來[4-5]。人感染H7N9禽流感病毒為新型重配病毒，其內部基因來自于H9N2禽流感病毒[2]。人感染H7N9禽流感是由H7N9亞型禽流感病毒引起的急性呼吸道傳染病，是一種新型呼吸道傳染病。本文對鄭州市首例人感染H7N9禽流感病例的實驗室檢驗方法和過程進行了總結和分析，旨在進一步提高實驗室對該類病例的應急檢測能力，這對相關病例的早發(fā)現(xiàn)、早診斷、早隔離、早治療，防止疫情擴散，降低病死率具有十分重要意義。

1 材料與方法

1.1 臨床樣本 患者王某，男，38歲，漢族，農民，從事活禽宰殺銷售工作?；颊咦允?月8日出現(xiàn)畏寒、咽痛，自行服藥治療，病情未見好轉，于4月11日上午前往鄉(xiāng)衛(wèi)生院就診，初步診斷為“左下葉肺炎”。下午患者自行到鄭州市某市級醫(yī)院急診科就診，CT診斷報告為：左肺下葉炎癥?；颊咭浴胺窝住鞭D至省傳染病醫(yī)院隔離排查。當晚，鄭州市疾控中心實驗室采集患者的鼻咽拭子樣本進行Real-time RT-PCR檢測，檢驗結果顯示患者H7N9禽流感病毒核酸陰性，鑒于患者為禽類接觸的高危人群，疾控機構持續(xù)關注患者病情變化。4月16日，省傳染病醫(yī)院報告該患者病情出現(xiàn)進行性加重，故市疾控中心再次采集患者鼻咽拭子和下呼吸道分泌物標本進行檢測，4月17日初步檢測結果為H7N9禽流感病毒核酸陽性。4月18日，省疾控中心復核檢測陽性。經省級專家組會診，判定為人感染H7N9禽流感病例。

1.2 檢測試劑與儀器 病毒核酸提取試劑盒購自天根生化科技有限公司；甲乙型流感、季節(jié)性流感（包括H1N1、H3N2）、甲型H1N1流感和H5N1高致病性禽流感病毒RNA檢測試劑盒（熒光PCR法）均購自北京金豪制藥股份有限公司；人感染H7N9禽流感病毒RNA檢測使用的AM1005試劑盒（熒光PCR法）購自ABI公司；人感染H7N9禽流感特異性引物和探針由國家疾控中心下發(fā)；采用Real-time RT-PCR方法，運用Bio-Rad CFX96和Bio-Rad IQ5實時熒光定量PCR儀進行流感病毒核酸檢測[6]。

1.3 引物和探針 由國家疾控中心下發(fā)的人感染H7N9禽流感特異性引物和探針序列見表1。

表1 人感染H7N9禽流感特異性引物和探針序列

引物和探針名稱 序列（5-3）

CNIC-H7F AGAAATGAAATGGCTCCTGTCAA

CNIC-H7R GGTTTTTTCTTGTATTTTTATATGACTTAG

CNIC-H7Probe1 FAM-AGATAATGCTGCATTCCCGCAGATG-BHQ1

CNIC-N9F TGGCAATGACACACACTAGTCAGT

CNIC-N9R ATTACCTGGATAAGGGTCGTTACACT

CNIC-N9Probe1 FAM-AGACAATCCCCGACCGAATGACCC-BHQ1

1.4 檢驗方法與步驟

1.4.1 核酸提取 吸取5.6 ?L Carrier RNA至含560 ?L AVL的Eppendorf離心管中，吹打混勻。加200 ?L標本到上述離心管中，吹打混勻，安全柜內孵育10 min。加560 ?L無水乙醇（96%～100%）到離心管中，吹打混勻。吸取660 ?L溶液至Rnase-free吸附柱CR2中，蓋上離心管帽，7000 rpm離心1 min棄掉套管。重復一次。加500 ?L緩沖液GD，蓋上離心管帽，7000 rpm離心1 min，棄掉套管。加500 ?L漂洗液RW，蓋上離心管帽，11 000 rpm離心3 min，棄掉套管。將吸附柱放入一個新的1.5 mL無RNA酶離心管中，打開吸附柱蓋子，放置3 min，使吸附膜完全變干，加入70 ?L Rnase-free ddH2O，蓋上蓋子，孵育5 min，7000 rpm離心1 min，收集病毒RNA模板。

1.4.2 Real-time RT-PCR 人感染H7N9禽流感檢測使用ABI公司的AM1005試劑盒進行體系配制，反應總體積為25 μL，組分構成見表2。

表2 人感染H7N9禽流感擴增體系組分構成

組分 體積（μL）

2×RT-PCR Buffer 12.5

25×RT-PCR Enzyme Mix 1.0

H7上游引物 0.5

H7下游引物 0.5

H7探針 0.5

N9上游引物 0.5

N9下游引物 0.5

N9探針 0.5

RNase Free Water 3.5

將上述反應液混勻，分裝每管20 μL，將5 μL模板加入分裝好的PCR小管，分別做好標記。同時分別以DEPCH2O和RNA陽性模板作為陰性和陽性對照。使用Bio-Rad CFX96實時熒光定量PCR儀進行病毒核酸檢測，反應程序為：45 ℃ 10 min，1個循環(huán)；95 ℃ 10 min，1個循環(huán)；95 ℃ 15 s，60 ℃ 45 s，40個循環(huán)。

甲乙型流感、季節(jié)性流感（包括H1N1、H3N2）、甲型H1N1流感和H5N1高致病性禽流感檢測分別使用北京金豪公司的系列試劑盒進行體系配制，反應總體積均為25 μL，組分構成見表3。

表3 甲乙型流感、季節(jié)性流感（包括H1N1、H3N2）、甲型H1N1流感和H5N1高致病性禽流感擴增體系組分構成

組分 體積（μL）

Mix 20

Tag聚合酶 1

逆轉錄酶 0.35

將上述反應液混勻，分裝每管20 μL，加入5 μL模板，分別做好標記。同時分別以DEPCH2O和RNA陽性模板作為陰性和陽性對照。使用Bio-Rad IQ5實時熒光定量PCR儀進行病毒核酸檢測，反應程序為：50 ℃ 30 min，95 ℃ 3 min，1個循環(huán)；95 ℃ 15 s，50 ℃ 30 s，72 ℃ 1 min，5個循環(huán)；95 ℃ 10 s，55 ℃ 40 s，40個循環(huán)。

2 結果

2.1 本疾控中心檢測結果 檢驗結果顯示，甲型流感通用引物、H7和N9特異性引物的擴增結果均為陽性，其中H7和N9特異性引物的擴增結果結果見圖1。

2.2 省疾控中心和國家疾控中心復核檢測結果 按照《人感染H7N9禽流感疫情防控方案》要求，鄭州市疾控中心將初步檢測呈陽性的樣本送至河南省疾控中心和國家疾控中心進行復核檢測，結果與本實驗室檢測結果一致，證實該病例樣本人感染H7N9禽流感病毒核酸陽性。

3 討論

自2013年2月份以來，人感染H7N9禽流感疫情已波及我國多個省份，病例數(shù)持續(xù)增加，但截至目前病例分布仍呈現(xiàn)高度散發(fā)的特點，尚無人傳人的確切證據(jù)[7-9]。傳染源目前尚不明確，推測可能為攜帶H7N9禽流感病毒的禽類及其分泌物或排泄物。根據(jù)現(xiàn)已掌握的流行病學資料，患者多為從事禽類養(yǎng)殖、銷售、宰殺、加工業(yè)者，以及在發(fā)病前1周內接觸過禽類者[10-11]。鄭州市首例人感染H7N9禽流感患者王某正是從事活禽宰殺銷售工作的，發(fā)病前與禽類有明確的接觸史。

甲型流感病毒血清型較多，發(fā)病初期的臨床癥狀又較為相似，這為病例的臨床鑒別診斷帶來了較高的難度。人感染H7N9禽流感重癥患者預后差。重癥患者病情發(fā)展一般十分迅速，表現(xiàn)為重癥肺炎，體溫39 ℃以上，常發(fā)生呼吸困難；病情進一步惡化出現(xiàn)急性呼吸窘迫綜合征、休克及急性腎損傷等，病死率較高[2-3]。因此，實驗室準確、高效的診斷技術，對于疑似病例的早診斷、早治療，減輕患者的病痛，挽救患者的生命具有重要意義。目前最準確的診斷方法就是從患者呼吸道分泌物標本中分離出H7N9禽流感病毒或H7N9禽流感病毒核酸檢測陽性[12-14]。Real-time RT-PCR檢測流感病毒核酸，方法成熟、敏感度高、特異性強、重復性好，是目前實驗室首選的快速檢測方法[15]。

流感樣病例標本采集質量的好壞是實驗室能否得到客觀、準確診斷結論的前提和基礎，臨床上對此應該給予高度重視。在本次人感染H7N9禽流感病例的首次實驗室標本采集和檢驗中，檢測結果為陰性。在幾天之后的二次標本采集和檢驗中，檢測結果又為陽性。在兩次病例標本的采集和檢驗過程中，相同點是均是使用同批次的病毒采樣管和檢驗試劑、同樣的儀器設備和檢驗方法；不同點是兩次標本采集的采樣人員不同，所采集標本的種類亦不相同，同時患者的病情也在不斷地發(fā)展變化過程之中。筆者分析造成兩次實驗室檢測結果不一致的原因大概有兩種可能：一是第一次檢測的標本采集質量不過關。流感樣病例標本的采集首先應選用合格的病毒采樣管和聚丙烯纖維頭拭子進行采樣。其次，采樣部位要準確。咽拭子應采集患者的懸雍垂后咽后壁及雙側扁桃體，應盡量避免接觸舌頭、口腔內壁等含菌較高的部位。鼻拭子應深入鼻鄂部采集。最后應注意的是，采樣要有一定的力度，盡可能的多采集一些標本。在第一次標本采集過程中，有可能是在采樣部位上掌握的不夠準確，或是采樣力度不夠造成了標本采集質量不過關。二是第二次檢測的標本更具有典型性。第二次標本采集除了采集了患者的鼻、咽拭子外，醫(yī)院方面還使用專用設備采集了患者的下呼吸道分泌物，這更加符合人感染H7N9禽流感病例標本的要求，提高了病毒檢測的陽性率。

實驗室應做好相關檢驗技術和物資的貯備，建立健全應急檢驗工作預案，做到有條不紊地應對流感疫情等突發(fā)公共衛(wèi)生事件。本文詳細介紹了鄭州市首例人感染H7N9禽流感病例的實驗室檢測方法和過程，旨在進一步提高實驗室應急檢測能力，為流感疫情的防控提供及時可靠的診斷依據(jù)。

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（收稿日期：2014-04-16） （本文編輯：蔡元元）

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（收稿日期：2014-04-16） （本文編輯：蔡元元）