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    限制性內(nèi)切酶KpnⅠ和EcoRⅠ雙酶切條件的優(yōu)化

    2014-08-17 08:42:30朱杭飛姜曉明藏雨軒張雲(yún)喬向國艷張中新吉林醫(yī)藥學(xué)院生物化學(xué)檢驗(yàn)教研室免疫教研室吉林吉林303
    關(guān)鍵詞:雙酶凝膠電泳瓊脂糖

    朱杭飛,姜曉明,藏雨軒,張雲(yún)喬,向國艷,張中新,郝 峰* (吉林醫(yī)藥學(xué)院:.生物化學(xué)檢驗(yàn)教研室,.免疫教研室,吉林 吉林 303)

    限制性核酸內(nèi)切酶是一種可以識(shí)別DNA的特異序列,并在識(shí)別位點(diǎn)或其周圍切割雙鏈DNA的一類內(nèi)切酶[1]。約翰霍普金斯大學(xué)的丹尼爾·那森斯、漢彌爾頓·史密斯與伯克利加州大學(xué)的沃納·亞伯因?yàn)橄拗菩詢?nèi)切酶的發(fā)現(xiàn)與研究而獲1978年度的諾貝爾生理學(xué)獎(jiǎng),開創(chuàng)了分子遺傳學(xué)的新篇章[2]。目前,限制性內(nèi)切酶的酶切技術(shù)因其操作簡單和快速等優(yōu)點(diǎn)廣泛應(yīng)用分子生物學(xué)等領(lǐng)域。雙酶切更為廣泛應(yīng)用于載體構(gòu)建等分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn),因?yàn)閱蚊盖泻筮B接目的基因理論上會(huì)出現(xiàn)50%可能的錯(cuò)誤性,而雙酶切后的不同黏性末端在一定程度上避免單酶切的不足[3]。KpnⅠ和EcoRⅠ是目前常用的限制性內(nèi)切酶,屬第Ⅱ型限制性內(nèi)切酶,來源方便、價(jià)格便宜,廣泛應(yīng)用于分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)[4]。試劑公司會(huì)給出這兩種酶的適合緩沖液,但這兩種限制性內(nèi)切酶的最適緩沖液離子濃度相差較大,給這兩種酶的應(yīng)用帶來一定不便。本研究選取KpnⅠ和EcoRⅠ不同的酶切體系,探討KpnⅠ和EcoRⅠ雙酶切的適宜實(shí)驗(yàn)條件,為今后應(yīng)用KpnⅠ和EcoRⅠ雙酶切實(shí)驗(yàn)提供科學(xué)的參考依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材 料

    KpnⅠ、EcoRⅠ、緩沖液H、緩沖液L、Bovine Serum Albumin (BSA)、Loading Buffer和Ethidiμm Bromide(Takara公司);pEGFP-Ano2質(zhì)粒(本實(shí)驗(yàn)室前期構(gòu)建);TAE、瓊脂糖(Agar)和DL5000 DNA marker(Promega公司);Nanodrop 2000分光光度計(jì)(Thermo公司);質(zhì)粒提取試劑盒(Axygen公司);DNA瓊脂糖凝膠電泳儀(Biorad公司);凝膠成像系統(tǒng)(德國alpha FluorChem HD2)。

    1.2 重組質(zhì)粒的轉(zhuǎn)化、提取和測(cè)序

    將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入大腸桿菌感受態(tài)DH5α中,在含卡那抗性的固體培養(yǎng)基中培養(yǎng)過夜,次日挑取單個(gè)陽性克隆于5 mL卡那抗性的液體LB中,放于37 ℃ 180 r/min的搖床中過夜后,質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒,Nanodrop 2000分光光度計(jì)測(cè)其濃度和純度,并于上海生工測(cè)序。

    1.3 KpnⅠ和EcoRⅠ分別單酶切pEGFP-Ano2

    取0.5 mL離心管,配制50 μLKpnⅠ單酶切體系,加入1 μLKpnⅠ、5 μL 10×Buffer L和1 μg質(zhì)粒,其余體積用超純水補(bǔ)齊,置于37 ℃恒溫水浴鍋中1 h,瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)酶切結(jié)果。

    另取0.5 mL離心管,配制50 μLEcoRⅠ單酶切體系,加入1 μLEcoRⅠ、5 μL 10×Buffer H和1 μg質(zhì)粒,其余體積用超純水補(bǔ)齊,置于37 ℃恒溫水浴鍋中1 h,瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)酶切結(jié)果。

    瓊脂糖凝膠電泳具體步驟如下:稱取0.3 g Agar放入一錐形瓶中,加入30 mL 1×TAE電泳緩沖液,置微波爐加熱至完全溶化,呈透明狀,倒入制膠板上,加5 μL EB,混勻,在一端插入梳子,冷卻凝固后,拔起梳子。把上述的各個(gè)樣品從37 ℃恒溫水浴鍋中移出,吸一半入另一離心管中,各加入3 μL Loading Buffer,混勻。取一離心管加入1 μL質(zhì)粒、2 μL Loading Buffer作為對(duì)照。用移液槍把各個(gè)樣品和已知分子量的DL 5000 DNA marker按一定順序加至凝膠的加樣孔中,在電泳槽中加入適量1×TAE。最后接通DNA瓊脂糖凝膠電泳儀,調(diào)節(jié)電壓和電流,開始電泳。觀察溴酚藍(lán)的位置,當(dāng)其移動(dòng)至瓊脂糖凝膠一半時(shí),結(jié)束電泳,在凝膠成像系統(tǒng)中觀察酶切條帶。

    1.4 不同的單酶切體系KpnⅠ和EcoRⅠ單酶切pEGFP-Ano2

    第一組取0.5 mL離心管,配制50 μLKpnⅠ單酶切體系,加入1 μLKpnⅠ、5 μL 10×Buffer L和1 μg質(zhì)粒,其余體積用超純水補(bǔ)齊,放入37 ℃恒溫水浴鍋中1 h后,加入5 μL 10×Buffer H水浴1 h,瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)酶切結(jié)果。

    第二組取0.5 mL離心管,配制50 μLEcoRⅠ單酶切體系,加入1 μLEcoRⅠ、5 μL 10×Buffer H、5 μL 10×Buffer L和1 μg質(zhì)粒,其余體積用超純水補(bǔ)齊,放入37 ℃恒溫水浴鍋中0.5 h,瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)酶切結(jié)果。

    第三組取0.5 mL離心管,配制50 μLEcoRⅠ單酶切體系,加入1 μLEcoRⅠ、5 μL 10×Buffer H、5 μL 10×Buffer L和1 μg質(zhì)粒,其余體積用超純水補(bǔ)齊,放入37 ℃恒溫水浴鍋中1 h,瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)酶切結(jié)果。

    第四組取0.5 mL離心管,配制50 μLEcoRⅠ單酶切體系,加入1 μLEcoRⅠ、5 μL 10×Buffer H、5 μL 10×Buffer L、5 μL BSA和1 μg質(zhì)粒,其余體積用超純水補(bǔ)齊,置37 ℃恒溫水浴鍋中1 h,瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)酶切結(jié)果。

    瓊脂糖凝膠電泳具體見以上步驟,并每個(gè)實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次。

    1.5 KpnⅠ和EcoRⅠ雙酶切質(zhì)粒pEGFP-Ano2

    取0.5 mL離心管,配制50 μLKpnⅠ和EcoRⅠ雙酶切體系,加入1 μLKpnⅠ、5 μL 10×Buffer L和1 μg質(zhì)粒,其余體積用超純水補(bǔ)齊,置37 ℃恒溫水浴鍋中1 h后,加入1 μLEcoRⅠ、5 μL BSA和5 μL 10×Buffer H水浴1 h,瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)酶切結(jié)果。瓊脂糖凝膠電泳具體見以上步驟,并每個(gè)實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次。

    2 結(jié) 果

    2.1 重組質(zhì)粒質(zhì)量測(cè)定結(jié)果

    應(yīng)用Nanodrop 2000分光光度計(jì)檢測(cè)重組質(zhì)粒的濃度和純度,結(jié)果顯示在260 nm處有最大吸收峰,濃度為349.5 mg/L,260/280為1.78,260/230為2.13,結(jié)果表明獲得質(zhì)量良好的重組質(zhì)粒。結(jié)果見圖1。

    2.2 重組質(zhì)粒測(cè)序結(jié)果

    測(cè)序結(jié)果顯示在目的基因上游的限制性內(nèi)切酶位點(diǎn)為EcoRⅠ,下游限制性內(nèi)切酶切位點(diǎn)為KpnⅠ。結(jié)果見圖2。

    2.3 KpnⅠ和EcoRⅠ分別單酶切pEGFP-Ano2

    KpnⅠ和EcoRⅠ分別單酶切質(zhì)粒,結(jié)果顯示將質(zhì)粒pEGFP-Ano2酶切為一條7 400 bp的條帶,結(jié)果表明,本實(shí)驗(yàn)所用KpnⅠ和EcoRⅠ質(zhì)量良好,KpnⅠ在1×Buffer L條件下可發(fā)揮較好活力,EcoRⅠ在1×Buffer H條件下可發(fā)揮較好活力。結(jié)果見圖3。

    圖 1 重組質(zhì)粒pEGFP-Ano2濃度和純度檢測(cè)

    圖 2 重組質(zhì)粒pEGFP-Ano2測(cè)序結(jié)果

    圖 3 重組質(zhì)粒pEGFP-Ano2單酶切電泳圖

    2.4 不同的單酶切體系KpnⅠ和EcoRⅠ單酶切pEGFP-Ano2

    KpnⅠ在1×Buffer L酶切1 h,再加入1× Buffer H酶切1 h的條件下,結(jié)果顯示KpnⅠ將質(zhì)粒pEGFP-Ano2酶切為大小7 400 bp的條帶,則證實(shí)在此條件下KpnⅠ可將質(zhì)粒pEGFP-Ano2酶切徹底,見圖4-A。EcoRⅠ在含1×Buffer H和1×Buffer L的共同條件下,單酶切0.5 h,結(jié)果顯示出現(xiàn)兩條清晰的條帶,一條為7 400 bp,另一條與Ano2酶切結(jié)果中的最后一條條帶對(duì)齊,則表明此條件下EcoRⅠ酶切不徹底,見圖4-B。延長EcoRⅠ酶切時(shí)間,結(jié)果顯示EcoRⅠ的條帶出現(xiàn)彌散現(xiàn)象,則表明在此條件下EcoRⅠ酶切時(shí)間過長而發(fā)生星活性,見圖4-C。EcoRⅠ單酶切體系中加入BSA后,結(jié)果顯示EcoRⅠ將質(zhì)粒pEGFP-Ano2酶切為大小7 400 bp的條帶,則證實(shí)在此條件下EcoRⅠ可將1 μg含有EcoRⅠ酶切位點(diǎn)的載體pEGFP-Ano2徹底酶切,見圖4-D。

    圖 4 重組質(zhì)粒pEGFP-Ano2單酶切電泳圖

    2.5 KpnⅠ和EcoRⅠ雙酶切質(zhì)粒結(jié)果

    根據(jù)KpnⅠ和EcoRⅠ單酶切質(zhì)粒pEGFP-Ano2的適宜條件,將其應(yīng)用于KpnⅠ和EcoRⅠ雙酶切實(shí)驗(yàn)中,結(jié)果顯示KpnⅠ和EcoRⅠ將質(zhì)粒pEGFP-Ano2雙酶切為兩條清晰條帶,分別為4 700 bp和2 700 bp。結(jié)果見圖5。

    3 討 論

    KpnⅠ和EcoRⅠ是兩種常用的限制性內(nèi)切酶,廣泛應(yīng)用于載體構(gòu)建、DNA探針制備以及DNA序列分析等多種分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)[5]。KpnⅠ的專一識(shí)別順序是5′…GGTAC↓C…3′,推薦的緩沖液是1×Buffer L,組分為100 mol/L Tris-HCl、100 mmol/L MgCl2和10 mmol/L Dithiothreitol,pH 7.5;EcoRⅠ的專一識(shí)別順序是5′…G↓AATTC3′,推薦緩沖液為1×Buffer H,內(nèi)含500 mmol/L Tris-HCl、100 mmol/L MgCl2、10 mmol/L Dithiothreitol和1.000 mmol/L NaCl,pH 7.5。Buffer H和Buffer L的離子濃度不同,會(huì)影響限制性內(nèi)切酶酶切效果,并且酶的種類、質(zhì)粒的濃度、純度和酶切時(shí)間等因素都可能對(duì)酶切效果產(chǎn)生重要影響。例如質(zhì)粒中含有過多的酚、酒精、氯仿、EDTA、變性劑或過多鹽離子的污染都會(huì)影響質(zhì)粒質(zhì)量,引起酶切不完全或者星活性的產(chǎn)生,而質(zhì)粒濃度過高、酶濃度量過低或者不適當(dāng)?shù)南拗菩悦傅谋4婧蛻?yīng)用都可能造成酶切不徹底。BSA是一種牛血清白蛋白,可以通過提高溶液中蛋白質(zhì)的濃度,防止酶的分解和非特異性吸附,減輕某些酶的變性,從而對(duì)酶起保護(hù)作用,廣泛應(yīng)用于限制性內(nèi)切酶酶切反應(yīng)實(shí)驗(yàn)中[6]。酶切時(shí)間過長,會(huì)出現(xiàn)星活性現(xiàn)象。星活性是反應(yīng)條件不同而產(chǎn)生的切斷與原來認(rèn)識(shí)序列不同的位點(diǎn)的現(xiàn)象,多由于酶切時(shí)間延長等因素[7]。

    圖 5 重組質(zhì)粒pEGFP-Ano2雙酶切電泳圖

    在本實(shí)驗(yàn)選取上下游含有KpnⅠ和EcoRⅠ的pEGFP-Ano2質(zhì)粒,應(yīng)用質(zhì)粒提取試劑盒提取該質(zhì)粒和Nanodrop 2000分光光度計(jì)檢測(cè)其濃度和純度,并應(yīng)用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)質(zhì)粒完整性,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明濃度和純度都符合要求。KpnⅠ和EcoRⅠ分別在1×Buffer L和1×Buffer H的條件下酶切1 h,結(jié)果顯示均為只有一條明顯的7 400 bp的條帶,證實(shí)本研究所用的限制性內(nèi)切酶KpnⅠ和EcoRⅠ質(zhì)量良好,KpnⅠ在1×Buffer L條件下可發(fā)揮較好活力,EcoRⅠ在1Buffer H條件下可發(fā)揮較好活力。為獲取KpnⅠ和EcoRⅠ雙酶切質(zhì)粒pEGFP-Ano2的適宜條件,進(jìn)行KpnⅠ和EcoRⅠ單酶切體系的探索。KpnⅠ在1×Buffer L酶切1 h,再在含1×Buffer H酶切1 h時(shí),實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示只有一條明顯的7 400 bp的條帶,表明在上述條件下KpnⅠ可將質(zhì)粒pEGFP-Ano2酶切徹底。EcoRⅠ在1×Buffer H和1×Buffer L酶切0.5 h的條件下,顯示酶切不完全,可能是鹽濃度降低的因素,從而延長EcoRⅠ的酶切時(shí)間,但產(chǎn)生星活性而發(fā)生彌散現(xiàn)象。加入具有保護(hù)酶特性的BSA,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明此為EcoRⅠ單酶切質(zhì)粒的適宜條件。因此,KpnⅠ和EcoRⅠ單酶切質(zhì)粒的適宜條件應(yīng)用于雙酶切中,實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示為兩條正確的條帶,分別為4 700 bp和2 700 bp,則成功獲取KpnⅠ和EcoRⅠ雙酶切質(zhì)粒的適宜條件:首先在1×L緩沖液的情況下,應(yīng)用1 μLKpnⅠ酶切1 μg質(zhì)粒1 h,再加入1×H緩沖液和0.01% BSA,應(yīng)用1 μLEcoRⅠ繼續(xù)酶切1 h。

    總之,本實(shí)驗(yàn)獲取KpnⅠ和EcoRⅠ雙酶切質(zhì)粒的適宜條件,為今后實(shí)驗(yàn)提供科學(xué)的參考依據(jù)。

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