王鶴鳴等
摘 要 為明確抗氧化系統(tǒng)在植物抵御鹽脅迫中的作用,采用RT-PCR的方法分離角果木抗氧化酶相關(guān)基因Mn-SOD,采用酶切連接法構(gòu)建酵母表達(dá)載體pYES2/MnSOD,獲得含有重組質(zhì)粒的酵母菌INVScⅠ(pYES2/MnSOD)能有效表達(dá)MnSOD特異蛋白帶。高濃度鹽脅迫篩選結(jié)果表明,Mn-SOD基因在酵母中的表達(dá)能明顯提高酵母菌INVSCⅠ的耐鹽性。
關(guān)鍵詞 角果木;耐鹽性;Mn-SOD基因;酵母菌
中圖分類號(hào) Q943 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A
Abstract To study the function of antioxidant system against salt stress, the MnSOD gene from Ceriops tagal was cloned by RT-PCR. The Mn-SOD gene was inserted into pYES2 and transformed into yeast cells. The MnSOD protein was successfully expressed in yeast by SDS-PAGE analysis. High concentration of salt stress tests indicated that expression of Mn-SOD gene in yeast could significantly improve the salt tolerance of yeast strain INVScⅠ.
Key words Ceriops tagal; Salt tolerance; Mn-SOD; Yeast
doi 10.3969/j.issn.1000-2561.2014.10.014
正常生長(zhǎng)條件下,植物體內(nèi)活性氧產(chǎn)量較低,并且處于一種相對(duì)平衡狀態(tài),當(dāng)環(huán)境條件發(fā)生改變時(shí),這種動(dòng)態(tài)平衡被打破,活性氧大量生成[1]?;钚匝醯拇罅勘l(fā)會(huì)導(dǎo)致核酸的損傷、蛋白質(zhì)氧化、脂質(zhì)過氧化,從而引起許多細(xì)胞喪失功能[2]。在長(zhǎng)期進(jìn)化過程中,植物細(xì)胞往往會(huì)進(jìn)化出先進(jìn)的防御系統(tǒng)對(duì)抗活性氧,包括酶促和非酶促系統(tǒng)[3]。超氧化物歧化酶(SODs)是細(xì)胞對(duì)活性氧防御體系的第一道防線;這些酶迅速將超氧陰離子(O2·- )和水(H2O)轉(zhuǎn)換為過氧化氫(H2O2)和分子氧(O2)[4-5]。
大多數(shù)植物含有一系列的超氧化物歧化酶同功酶。根據(jù)金屬輔因子的不同,超氧化物歧化酶分為3種類型:鐵離子超氧化物歧化酶(Fe-SOD),錳離子超氧化物歧化酶(Mn-SOD),以及銅-鋅超氧化物歧化酶(Cu/ ZnSOD),分別位于細(xì)胞不同組分中。有研究結(jié)果表明,細(xì)胞受到有害輻射、氧化還原試劑、病毒感染、逆境脅迫等傷害時(shí),Mn-SOD含量及酶活性會(huì)明顯增高,起到保護(hù)DNA、降低細(xì)胞癌變機(jī)率的作用;過量表達(dá)Mn-SOD可以使植株在受到氧化脅迫時(shí)提高其抗逆性[6]。
角果木屬于紅樹科角果木屬典型的非泌鹽性紅樹植物,具有很強(qiáng)的耐鹽性[7]。在長(zhǎng)期的進(jìn)化中形成了自己獨(dú)特的耐鹽機(jī)制,當(dāng)受到鹽脅迫時(shí),其體內(nèi)超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、過氧化物酶(POD)等抗氧化酶類活性大大增加,且這些酶類的活性與受到鹽脅迫的程度呈正相關(guān)性[7]。目前已經(jīng)有相關(guān)研究結(jié)果表明,將檉柳Mn-SOD轉(zhuǎn)入酵母INVSc I中可以提高酵母的抗鹽、抗干旱、抗高溫能力[8-9]。本課題組前期采用數(shù)字表達(dá)譜技術(shù)對(duì)鹽脅迫下角果木根系差異表達(dá)基因進(jìn)行了篩選,發(fā)現(xiàn)Mn-SOD受到鹽脅迫時(shí)表達(dá)量顯著增加(待發(fā)表數(shù)據(jù))。為進(jìn)一步研究該基因的耐鹽功能,本研究分離了Mn-SOD的全長(zhǎng)cDNA序列,并轉(zhuǎn)入酵母中過表達(dá)后進(jìn)行酵母耐鹽性功能驗(yàn)證,酵母作為最常用的的真核表達(dá)載體,相對(duì)于原核表達(dá)載體大腸桿菌,具有對(duì)表達(dá)的目的蛋白進(jìn)行翻譯后修飾的功能,比如信號(hào)肽的剪切、糖基化等,對(duì)于基因的功能研究更有意義。本研究在酵母中探索了Mn-SOD的耐鹽性,為進(jìn)一步闡明抗氧化系統(tǒng)在鹽生植物耐鹽中所發(fā)揮的作用及機(jī)理奠定理論基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 材料
角果木成熟胎生苗采自海南省東寨港紅樹林保護(hù)區(qū)。選擇無病蟲害,發(fā)育良好,形態(tài)大小且成熟度相似的胎生苗,在Hoagland營(yíng)養(yǎng)液[10]中培育至幼苗長(zhǎng)出第二對(duì)葉,在500 mmol/L NaCl溶液中分別處理1、3、6、9、12、24 h,取根,加液氮充分研磨成粉末,-80 ℃保存,用于RNA提取。
1.2 方法
1.2.3 酵母表達(dá)載體構(gòu)建 根據(jù)引物末端添加的酶切位點(diǎn),Xba I和Kpn I雙酶切TA克隆,回收Mn-SOD基因片段;同樣的酶組合酶切酵母表達(dá)載體pYES2,回收載體大片段,按外源片段分子末端:載體片段分子末端=3 : 1的比例進(jìn)行連接;連接產(chǎn)物熱激法轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,重組菌落經(jīng)PCR和酶切檢測(cè),陽性克隆命名為pYES2/MnSOD。
重組質(zhì)粒pYES2/MnSOD采用PEG介導(dǎo)的轉(zhuǎn)化法導(dǎo)入缺陷型酵母表達(dá)菌株INVSc I,在尿嘧啶缺失的固體合成培養(yǎng)基(SC-Ura)上,30 ℃倒置培養(yǎng)至長(zhǎng)出單克隆菌落,進(jìn)行菌落PCR,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。
1.2.4 目的蛋白誘導(dǎo)表達(dá)檢測(cè) 取鑒定后的重組酵母菌單克隆于SC-Ura液體培養(yǎng)基中,200 r/min,30 ℃過夜培養(yǎng)至菌液濃度為OD600=0.5,按照1 ∶ 500比例稀釋于SC-Ura液體誘導(dǎo)培養(yǎng)基中(用2%半乳糖替代碳源葡萄糖),誘導(dǎo)培養(yǎng)20 h,取1.5 mL濃度為OD600=2.5的菌液于離心管中,8 000 r/min 離心5 min,收集菌體,100 μL ddH2O重懸菌體,再加入100 μL 0.2 mol/L NaOH溶液裂解細(xì)胞5 min,收集上清即為蛋白抽提液。經(jīng)SDS-PAGE膠分離后考馬斯亮藍(lán)染色,拍照分析。
1.2.5 重組酵母菌的鹽脅迫處理 酵母菌INVSc I(pYES2)和酵母菌INVSc I(pYES2/MnSOD)分別用SC-Ura液體培養(yǎng)基+1 mol/L NaCl溶液和SC-Ura液體培養(yǎng)基+3 mol/L NaCl溶液30 ℃培養(yǎng)72 h,以SC-Ura液體培養(yǎng)基+ddH2O作為對(duì)照。取等體積菌液稀釋105倍后接種在SC-U固體培養(yǎng)基上,30 ℃培養(yǎng),對(duì)平板上酵母菌INVSc I(pYES2)和INVSc I(pYES2/MnSOD)的鹽脅迫后生長(zhǎng)情況進(jìn)行計(jì)數(shù)。
2 結(jié)果與分析
2.1 根部總RNA提取結(jié)果
角果木根部總RNA 甲醛變性瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果見圖1所示。提取0~24 h內(nèi)7個(gè)時(shí)間點(diǎn)的RNA,其均有明顯的18 S和28 S RNA條帶,且?guī)瓮暾?,無明顯的擴(kuò)散現(xiàn)象,表明所分離的RNA無污染,質(zhì)量符合后續(xù)研究要求。
2.2 Mn-SOD基因的分離及分析
以反轉(zhuǎn)錄獲得的第一鏈cDNA為模板,含有Xba I和Kpn I酶切位點(diǎn)的引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果表明,擴(kuò)增條帶位于750 bp左右,與預(yù)期大小一致(圖2)。
陽性重組克隆測(cè)序(圖3)結(jié)果表明,所擴(kuò)增條帶大小為799 bp,其中CDs序列全長(zhǎng)717 bp,與角果木轉(zhuǎn)錄組測(cè)序結(jié)果100%一致。GeneScan軟件分析表明,該基因編碼238個(gè)氨基酸殘基,其中35~115位氨基酸為Fe/Mn-SOD家族的α發(fā)卡結(jié)構(gòu)域,125~230位氨基酸殘基為Fe/Mn-SOD家族的C端保守結(jié)構(gòu)域,該蛋白等電點(diǎn)為 6.79,蛋白質(zhì)分子量為26.4 ku。
利用推測(cè)的氨基酸序列進(jìn)行同源性分析顯示,所搜索到的100條序列均為Mn-SOD基因的氨基酸序列,同源性位于68%~77%之間,其中同源性最高(77%)的為橡膠Mn-SOD基因(登錄號(hào):P35017)編碼的氨基酸序列。應(yīng)用ClustalW2軟件對(duì)同源性較高的前10個(gè)序列進(jìn)行多重比較和進(jìn)化分析,結(jié)果表明,本研究分離的Mn-SOD單獨(dú)成一個(gè)分枝,與同源性最高的橡膠Mn-SOD距離較遠(yuǎn),卻與同源性較低的PRUPE較近(圖4)。
2.3 酵母表達(dá)載體構(gòu)建
Mn-SOD基因片段和酵母菌載體pYES2雙酶切后相連得到重組質(zhì)粒,該重組子經(jīng)過PCR鑒定后進(jìn)行雙酶切鑒定,1%的瓊脂糖凝膠結(jié)果表明,酶切獲得729 bp的條帶,與預(yù)期大小一致(圖5)。證明Mn-SOD基因已經(jīng)成功連入pYES2載體,該重組質(zhì)粒命名為pYES2/MnSOD(圖6)。
2.4 重組質(zhì)粒酵母轉(zhuǎn)化的鑒定
PEG介導(dǎo)的轉(zhuǎn)化法將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)入酵母菌INVScⅠ中,在SC-Ura培養(yǎng)基上直至長(zhǎng)出單克隆菌落。菌落PCR檢測(cè),產(chǎn)物1%瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果見圖7。從圖7可以看出,pYES2/MnSOD轉(zhuǎn)化后長(zhǎng)出的酵母均能擴(kuò)增出預(yù)期大小的條帶,編號(hào)為4的酵母擴(kuò)增條帶最亮,因而挑選4號(hào)酵母作為下一步研究的試驗(yàn)材料。
2.5 目的蛋白誘導(dǎo)表達(dá)檢測(cè)
為檢測(cè)Mn-SOD基因在酵母菌INVScⅠ中的表達(dá)情況,本研究提取了轉(zhuǎn)入重組質(zhì)粒和空載體的酵母菌INVSc I蛋白抽提液,SDS-PAGE電泳結(jié)果顯示,含有重組質(zhì)粒的酵母菌落蛋白提取液中有一條明顯的蛋白帶,而攜帶空載體的酵母菌INVScⅠ中缺乏該條帶,該條帶位于25~35 ku之間,表明Mn-SOD在酵母細(xì)胞中能有效表達(dá)特征條帶(圖8)。
2.6 重組酵母菌的耐鹽性分析
菌落計(jì)數(shù)結(jié)果表明,這兩種酵母都能夠生長(zhǎng),但重組酵母菌的生長(zhǎng)情況明顯好于轉(zhuǎn)入空載體的酵母菌,鹽脅迫濃度越高,兩者差異越明顯(圖9)。
進(jìn)一步對(duì)培養(yǎng)基上生長(zhǎng)的酵母菌落進(jìn)行計(jì)數(shù)分析,結(jié)果表明,鹽脅迫抑制了酵母菌的生長(zhǎng),隨著鹽濃度的增加,抑制作用逐漸增強(qiáng),未處理時(shí),空載體和轉(zhuǎn)入Mn-SOD基因的酵母菌落數(shù)差異不顯著,處理6 h和24 h后,INVScⅠ(pYES2/MnSOD)菌落數(shù)量均極顯著高于轉(zhuǎn)入空載體的酵母菌INVScⅠ(pYES2)(p<0.1)(圖10),這表明在相同鹽脅迫條件下,外源Mn-SOD基因的表達(dá)提高了酵母菌INVScⅠ(pYES2/MnSOD)的耐鹽性。
3 討論與結(jié)論
植物對(duì)鹽脅迫的耐受反應(yīng)是近年來植物領(lǐng)域研究的一個(gè)重點(diǎn),隨著各種研究手段的不斷發(fā)展,積累了越來越多的鹽脅迫應(yīng)答資料,目前公認(rèn)的植物應(yīng)答鹽脅迫的生理機(jī)制包括形態(tài)適應(yīng)性、離子平衡、滲透調(diào)節(jié)和活性氧的清除,其中活性氧清除機(jī)制更是普遍存在于鹽生植物和非鹽生植物中。植物在高鹽環(huán)境下體內(nèi)活性氧爆發(fā)造成動(dòng)態(tài)失衡,進(jìn)而對(duì)細(xì)胞的生物膜系統(tǒng)造成傷害[12-13]。為減輕這種傷害,植物在長(zhǎng)期的進(jìn)化過程中,形成了活性氧清除機(jī)制,包括非酶類抗氧化保護(hù)系統(tǒng)和酶類抗氧化保護(hù)系統(tǒng)兩大類。而酶類抗氧化保護(hù)系統(tǒng)又包括超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽還原酶(GR)等[14],其中超氧化物歧化酶(SOD)是第一個(gè)參與的酶類,能將超氧陰離子歧化為H2O2和O2,在酶類抗氧化保護(hù)系統(tǒng)占主要位置[15]。目前SOD基因的功能驗(yàn)證研究主要還是導(dǎo)入植物進(jìn)行遺傳轉(zhuǎn)化,馬淑娟等將Cu/Zn-SOD轉(zhuǎn)入煙草使其耐衰老能力和抗氧化能力都增強(qiáng)[16]。覃鵬等[17]研究發(fā)現(xiàn),外源Mn-SOD基因的導(dǎo)入能提高煙草抗旱能力,而Fe-SOD基因的導(dǎo)入雖能提高煙草體內(nèi)的SOD活性水平,但不能提高煙草的抗旱性??梢?,SOD基因的研究具有廣闊的研究前景和研究?jī)r(jià)值。本文對(duì)紅樹角果木在高鹽逆境脅迫下的Mn-SOD進(jìn)行功能解析,表明SOD基因與植物的多種逆境相關(guān),不僅從一個(gè)側(cè)面闡述了角果木抗逆性極強(qiáng)的緣由,更清晰地表明,來自角果木的Mn-SOD與植物的耐鹽度成正相關(guān)。
生長(zhǎng)在海岸潮間帶的紅樹植物-角果木,作為一種典型的非泌鹽性真紅樹植物,在長(zhǎng)期的自然選擇下形成了一套有效的活性氧清除機(jī)制。本實(shí)驗(yàn)室前期對(duì)比了鹽脅迫下角果木離子平衡、抗氧化脅迫等相關(guān)生理指標(biāo)的差異[7],結(jié)果表明,脅迫早期抗氧化相關(guān)的SOD、POD等酶活性顯著上升,MDA的變化不明顯;并采用轉(zhuǎn)錄組和數(shù)字表達(dá)譜技術(shù)進(jìn)行差異基因的篩選,候選SOD等基因。為進(jìn)一步明確抗氧化保護(hù)系統(tǒng)在紅樹植物耐鹽中發(fā)揮的作用,本研究采用RT-PCR方法分離了Mn-SOD基因,并在酵母中進(jìn)行功能驗(yàn)證,結(jié)果表明,Mn-SOD基因的過表達(dá)能顯著提高酵母的耐鹽性,這與Takemura等的研究結(jié)果一致[18],意味著通過調(diào)控抗氧化酶的表達(dá)有可能獲得耐鹽性提高的轉(zhuǎn)基因植物,這為開展熱帶作物抗逆育種提供了試驗(yàn)依據(jù)。但在紅樹植物中耐鹽性的產(chǎn)生是抗氧化系統(tǒng)發(fā)揮主要作用還是其他生理機(jī)制發(fā)揮主要作用還有待進(jìn)一步研究。
參考文獻(xiàn)
[1] 丁義峰, 靳 萍, 劉 萍. 植物SOD的基因表達(dá)活性調(diào)節(jié)及抗逆作用研究進(jìn)展[J]. 生物學(xué)教學(xué), 2012, 37: 6-7.
[2] Polle A. Dissecting the superoxide dismutase-ascorbate-glutathione pathway in chloroplasts by metabolic modeling. Computer simulations as a step towards flux analysis[J]. Plant Physiol, 2001, 126: 445-462.
[3] Alscher R G, Erturk N, Heath L S. Role of superoxide dismutases(SODs)in controlling oxidative stress in plants[J]. J Exp Bot, 2002, 53: 1 331-1 341.
[4] Bowler C, van Camp W, van Montagu M, et al. Superoxide dismutases in plants[J]. Crit. Rev. Plant Sci, 1994, 13: 199-218.
[5] Bowler C, van Montagu M, Inze′ D. Superoxide dismutase andstresstolerance[J]. Annu Rev PlantPhysiol PlantMol Biol, 1992, 43: 83-116.
[6] 魏宗波, 苗向陽, 楊鳴琦, 等. MnSOD基因表達(dá)調(diào)控的研究進(jìn)展[J]. 遺傳, 2008, 30(7): 831-837.
[7] 符秀梅. 鹽脅迫下紅樹植物-角果木耐鹽生理及分子基礎(chǔ)研究[D]. 海南大學(xué), 2011.
[8] 常萬霞. MnSOD基因的克隆及功能驗(yàn)證[D]. 哈爾曼東北林業(yè)大學(xué), 2006.
[9] 廖 巖, 陳桂珠. 鹽度對(duì)紅樹植物影響研究[J]. 濕地科學(xué), 2007, 5(3): 266-273.
[10] BenavidesM P, Marconi P L, Gallego S M, et al. Relationship between antioxidant defense systems and salt tolerance in Solanum tuberosum[J]. Aust Plant Physio, 2000, 27: 273-278.
[11] Hernandez J, Jimenez A, Mullineaux P, et al. Tolerance of pea plants(Pisum sativum)to long term salt stress is associated with induction of antioxidant defenses[J]. Plant Cell Environ, 2000(23): 853-862.
[12] Mittova V, Tal M, Volokita M, et al. Up-regulation of the leaf mitochondrial and peroxisomal antioxidative systems in response to salt induced oxidative stress in the wild salt-tolerant tomato species Lycopersicon pennellii[J]. Plant Cell Environ, 2003, 26: 845-856.
[13] Hoagland D R, Arnon D I. The water-culture method for growing plants without soil[J]. Circular California Agricultural Experiment Station(No. 2nd edit), 1950, 347: 32.
[14] 夏鐵騎.自由基、活性氧、 SOD及植物衰老機(jī)理研究的現(xiàn)狀與進(jìn)展[J]. 濮陽職業(yè)技術(shù)學(xué)院學(xué)報(bào), 2005, 5(2): 23-24.
[15] 馬旭俊, 朱大海. 植物超氧化物歧化酶(SOD)的研究進(jìn)展[J]. 遺傳, 2003, 25(2): 225-231.
[16] 馬淑娟, 喻樹迅, 范術(shù)麗, 等. 轉(zhuǎn)棉花葉綠體Cu/Zn.SOD基因煙草的獲得及其功能的初步驗(yàn)證[J]. 分子植物育種, 2007, 5(3): 319-323.
[17] 覃 鵬, 劉飛虎, 孔治有. 等.轉(zhuǎn)SOD基因?qū)煵菘购敌院拖嚓P(guān)生理指標(biāo)的影響[J]. 廣西植物, 2006, 26(6): 621-625.
[18] Takemura T, Hanagata N, Dubinsky Z, et al. Molecular characterization and response to salt stress of mRNAs encoding cytosolic Cu/Zn superoxide dismutase and catalase from Bruguiera gymnorrhiza[J]. Trees-Struct Funct , 2002, 16: 94-99.