言君凱靳桂英李豪男楊青△
(1復(fù)旦大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院生物化學(xué)系 上海 200433;2金日成綜合大學(xué)生命科學(xué)系 平壤)
促紅細(xì)胞生成素(Ep O)對葉酸在Caco-2細(xì)胞中跨膜轉(zhuǎn)運的影響
言君凱1靳桂英1李豪男2楊青1△
(1復(fù)旦大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院生物化學(xué)系 上海 200433;2金日成綜合大學(xué)生命科學(xué)系 平壤)
目的采用人結(jié)腸腺癌細(xì)胞系(human colon adenocarcinoma cell line)Caco-2單細(xì)胞層模型觀察促紅細(xì)胞生成素(erythropoietin,EPO)對葉酸跨膜轉(zhuǎn)運的影響。方法采用Caco-2單層細(xì)胞模型,觀察不同劑量EPO(0.3、1、3 U/m L)處理對葉酸在攝取與外排雙向轉(zhuǎn)運方面的影響。通過real time-PCR與Western blot觀察EPO處理對質(zhì)子偶聯(lián)的葉酸轉(zhuǎn)運體(proton coupled folate transporter,PCFT)、還原葉酸載體(reduced folate carrier,RFC)以及多藥耐藥相關(guān)蛋白2(multidrug resistance-associated protein 2,MRP2)表達(dá)的影響。結(jié)果EPO在劑量0.3~3 U/m L范圍內(nèi)可劑量依賴地增加葉酸在攝取方向的轉(zhuǎn)運,增幅分別為31.6%、61.5%和120.5%。高劑量EPO(3 U/mL)對葉酸在外排方向的轉(zhuǎn)運也具有促進(jìn)作用,增幅為56.9%,而中低劑量EPO (1、0.3 U/m L)對葉酸外排無明顯作用。葉酸轉(zhuǎn)運體PCFT、RFC及MRP2均受EPO影響而表達(dá)上調(diào),并呈劑量依賴和時間依賴關(guān)系。結(jié)論EPO可上調(diào)葉酸的攝取并呈劑量依賴關(guān)系,高劑量EPO對葉酸的攝取與外排具有雙向促進(jìn)作用。
葉酸; 促紅細(xì)胞生成素(EPO); Caco-2細(xì)胞; 葉酸轉(zhuǎn)運體
促紅細(xì)胞生成素(erythropoietinm,EPO)是臨床上治療腎性貧血的經(jīng)典藥物,其發(fā)揮作用的主要機制是在骨髓內(nèi)刺激造血細(xì)胞的分化成熟[1]。自20世紀(jì)90年代初EPO開始用于治療腎性貧血以來,其極大地改善了患者的預(yù)后情況和生存質(zhì)量。隨著時間的推移,EPO治療的個體差異性越發(fā)受到關(guān)注。有文獻(xiàn)指出,在某些患者體內(nèi)鐵、葉酸等造血營養(yǎng)素的代謝水平是影響EPO療效的重要因素之一[2-3]。鑒于這些造血營養(yǎng)素不能為人體自身合成且只能由外源性食物供給,口服吸收便成為整個代謝過程中的關(guān)鍵[4]。近年的研究發(fā)現(xiàn),EPO具有調(diào)控體內(nèi)鐵代謝的功能[5-6],它可直接促進(jìn)鐵的口服吸收[7],但是葉酸的口服吸收是否也受到EPO調(diào)控仍不得而知。
基于葉酸的吸收主要在腸道進(jìn)行,涉及的轉(zhuǎn)運體包括還原葉酸載體(reduced folate carrier, RFC)[8-9]、質(zhì)子偶聯(lián)的葉酸轉(zhuǎn)運體(proton coupled folate transporter,PCFT)[10-11]及多藥耐藥相關(guān)蛋白2(multidrug resistance-associated protein 2, MRP2)[12]。RFC與PCFT負(fù)責(zé)將葉酸從腸腔攝取轉(zhuǎn)運至血漿,而MRP2則將葉酸從血漿外排回腸腔[4]。動物實驗顯示體內(nèi)EPO水平與葉酸吸收之間存在聯(lián)系。在先天葉酸吸收不良(hereditary folate malabsorption,HFM)的小鼠模型中,其血清EPO水平相對較高,提示EPO增高可能與機體對葉酸吸收不良的代償有關(guān)[13]。內(nèi)源性EPO多由腎臟分泌,在5/6腎臟切除的小鼠模型中,動物腸道內(nèi)葉酸轉(zhuǎn)運體PCFT與RFC均有下調(diào),考慮可能因EPO分泌不足所致[14]。因此,我們提出假設(shè),EPO對葉酸的腸道吸收具有一定調(diào)控作用,且可能與葉酸轉(zhuǎn)運體蛋白表達(dá)的變化有關(guān)。
人結(jié)腸腺癌細(xì)胞系(human colon adenocarcinoma cell line)Caco-2來源于人類結(jié)腸和直腸癌細(xì)胞,其在形態(tài)學(xué)、標(biāo)志酶的功能表達(dá)及滲透性等方面與小腸上皮細(xì)胞相似。藥物透過Caco-2細(xì)胞單層的體外過程與藥物口服后在腸中的吸收和代謝有良好的相關(guān)性,因此Caco-2細(xì)胞成為研究藥物吸收、轉(zhuǎn)運和代謝最經(jīng)典的體外細(xì)胞模型之一[15]。該細(xì)胞模型在涉及葉酸吸收與EPO作用的研究中均有應(yīng)用[7,16-17],是體外研究EPO影響葉酸吸收的理想工具。
綜上所述,本實驗擬采用Caco-2單層細(xì)胞模型觀察EPO對葉酸腸道吸收的影響,以期對拓寬EPO作用機制的認(rèn)識、深化了解腎性貧血患者體內(nèi)的病理生理改變有所幫助。
藥品與試劑葉酸標(biāo)準(zhǔn)品(98%HPLC,美國Sigma公司);促紅細(xì)胞生成素(3 000 U,上海市第九人民醫(yī)院);DMEM培養(yǎng)基、非必需氨基酸、青-鏈霉素和0.25%胰蛋白酶-0.02%EDTA(美國Gibco公司);胎牛血清(杭州四季青生物技術(shù)有限公司)。HPLC所用的乙腈及甲醇均為色譜純級別。
設(shè)備和儀器安捷倫1260高效液相色譜儀(美國Agilent公司);伯樂IQ5實時定量PCR(美國Bio-Rad公司);Typhoon FLA9000(美國GE Healthcare公司);24孔Transwell(底面積0.6 cm2,孔徑0.45μm)、跨膜電阻儀(美國Millipore公司)。
細(xì)胞培養(yǎng)Caco-2細(xì)胞株來源于ATCC(HTB-37),采用DMEM高糖培養(yǎng)基(含10%胎牛血清、1%非必需氨基酸、0.1%青-鏈霉素)于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)(相對濕度90%)。待細(xì)胞生長至80%~90%匯合時,用PBS沖洗2~3次,用0.25%胰蛋白酶-0.02%EDTA消化,按1∶5傳代。用于轉(zhuǎn)運實驗的細(xì)胞按5×104/孔的密度接種至Transwell,隔天換液,連續(xù)培養(yǎng)21~23天,滿足跨膜電阻大于300Ω·cm2的膜用于葉酸轉(zhuǎn)運實驗。
EpO處理轉(zhuǎn)運實驗前48 h,移去Transwell小室內(nèi)培養(yǎng)基,用PBS沖洗2~3次,在EPO處理組細(xì)胞的頂端側(cè)(apical side,AP)加入400μL空白無血清培養(yǎng)基,在細(xì)胞的基底側(cè)(basolateral side, BL)加入600μL含EPO(0.3、1、3 U/m L)的無血清培養(yǎng)基,對照組細(xì)胞AP側(cè)與BL側(cè)均替換成空白無血清培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)48 h后用于后續(xù)實驗。
葉酸轉(zhuǎn)運試驗用PBS配制濃度為10μmol/L的葉酸標(biāo)準(zhǔn)品溶液并調(diào)節(jié)p H至6.0或7.4,分別用于AP→BL的吸收方向和BL→AP的外排方向的轉(zhuǎn)運實驗。AP→BL轉(zhuǎn)運:AP側(cè)加入400μL葉酸標(biāo)品(p H 6.0),BL側(cè)加入600μL空白PBS(p H 7.4);BL→AP轉(zhuǎn)運:BL側(cè)加入600μL葉酸標(biāo)品(p H 7.4),AP側(cè)加入400μL空白PBS(p H 6.0)。Transwell培養(yǎng)板置于37℃、60 r/min的水浴恒溫振蕩器中,在30、60、90、120 min時分別取樣100 μL待檢,并補加相應(yīng)空白PBS。
HpLC法檢測樣品中葉酸含量于相應(yīng)時間點取100μL待測樣品,9391×g離心10 min,取上清過濾后用高效液相色譜儀測定葉酸含量。色譜條件:Agilent C18柱(4.6 mm×250 mm,5μm),柱溫25℃;檢測波長280 nm,流動相50 mmol/L磷酸二氫鉀溶液(p H 6.3)∶乙腈(95∶5),流速1.0 mL/min,進(jìn)樣量80μL。
數(shù)據(jù)處理根據(jù)文獻(xiàn)計算葉酸透過Caco-2細(xì)胞單層的表觀滲透系數(shù)(apparent permeability coefficients,Papp)[18],線性條件下參考公式1,非線性條件下參考公式2。
公式1:Papp=(d Q/d t)/(A×C0)。其中,d Q/ d t為藥物滲透速率;A為膜面積(0.6 cm2);C0是葉酸在供給側(cè)的初濃度(10μmol/L)。
公式2:CR(t)=[M/(VD+VR)]+[CR(0)-(M/ (VD+VR)]e-Papp A(1/VD+1/VR)t。其中,VD是供給側(cè)溶液體積(AP側(cè)=400μL;BL側(cè)=600μL),VR為接收側(cè)溶液體積(AP側(cè)=400μL;BL側(cè)=600μL),A為膜面積(0.6 cm2),M為葉酸在轉(zhuǎn)運體系中的總量,CR(0)為葉酸在初始時刻(t=0)接收側(cè)的濃度, CR(t)為葉酸在t時刻接收側(cè)的濃度。
realtime-pCR檢測葉酸轉(zhuǎn)運體mRNA表達(dá)將Caco-2細(xì)胞培養(yǎng)于12孔板內(nèi),待80%~90%匯合后進(jìn)行EPO處理。EPO處理方式分3種:(1)觀察EPO作用的劑量依賴關(guān)系:EPO處理劑量分低(0.3 U/m L)、中(1 U/m L)、高(3 U/m L)3組,處理時間48 h;(2)觀察EPO作用的時間依賴關(guān)系:EPO處理劑量為1 U/m L,處理時間為4、24、48 h;(3)觀察生理劑量下EPO的長期作用:EPO劑量為10 m U/m L,連續(xù)培養(yǎng)15天。采用Trizol法提取Caco-2細(xì)胞內(nèi)總RNA。取1μg總RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,并使用SYBER Green法對目的基因進(jìn)行相對定量,β-actin作為內(nèi)參。PCR反應(yīng)條件為:96℃預(yù)變性5 min,96℃變性1 min,56℃退火1 min, 72℃延伸1 min,反應(yīng)循環(huán)35次。數(shù)據(jù)通過MyIQ軟件分析,引物信息如表1所示。
Westernblot檢測葉酸轉(zhuǎn)運體蛋白表達(dá)將Caco-2細(xì)胞培養(yǎng)于6孔板內(nèi),待80%~90%匯合后進(jìn)行EPO處理。EPO處理方式同上。采用文獻(xiàn)報道方法提取膜蛋白[16],經(jīng)BCA法測定蛋白濃度后進(jìn)行Western blot反應(yīng)。SDS-PAGE(10%)電泳上樣量為40μg,轉(zhuǎn)膜,5%脫脂牛奶于室溫下封閉2 h,加入PCFT一抗(1∶1 000,美國Abcam公司)、RFC一抗(1∶1 000,美國Abcam公司)、MRP2一抗(1∶1 000,美國CST公司),4℃過夜,經(jīng)PBSTween(0.3%)洗膜后孵育,加入相應(yīng)二抗并使用ECL PLUS試劑盒顯色(美國GE Healthcare公司)。雜交信號由Typhoon FLA9000掃描,條帶密度由Image Quant軟件分析,以GAPDH作為內(nèi)參,數(shù)據(jù)以目的蛋白/GAPDH比值表示。
統(tǒng)計分析所有數(shù)據(jù)以x—±s表示,重復(fù)3次以上。兩組數(shù)據(jù)間用差異用t檢驗分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義,統(tǒng)計分析使用SPSS 11.0統(tǒng)計軟件。
EpO處理對葉酸轉(zhuǎn)運的影響低、中、高3個劑量EPO(0.3、1、3 U/m L)處理Caco-2細(xì)胞后,對該方向上雙向轉(zhuǎn)運的變化見圖1。在AP→BL攝取方向上,葉酸的轉(zhuǎn)運量隨時間呈非線性增長,90 min后逐漸趨于飽和,EPO處理上調(diào)了葉酸在該方向的轉(zhuǎn)運并呈劑量依賴關(guān)系(圖1 A)。對照組及EPO處理低、中、高3個劑量組在120 min時的累積轉(zhuǎn)運量分別為(117.9±15.8)、(154.7±8.4)、(189.9± 6.8)和(258.0±7.6)pmol,EPO處理后的增幅分別為31.6%、61.5%和120.5%,中、高劑量EPO處理所致的差異有統(tǒng)計學(xué)意義(圖1B)。在BL→AP外排方向上,葉酸的轉(zhuǎn)運量隨時間呈線性增長,低、中劑量EPO處理對該方向上的葉酸轉(zhuǎn)運無明顯影響,而高劑量EPO處理可上調(diào)葉酸轉(zhuǎn)運(圖1C)。對照組及EPO處理低、中、高3個劑量組在120 min時的累積轉(zhuǎn)運量分別為(86.4±4.2)、(96.2±18.2)、(104.3±27.9)和(135.6±20.5)pmol,EPO處理后的增幅分別為11.3%、20.7%和56.9%,僅高劑量EPO所致差異有統(tǒng)計學(xué)意義(圖1D)。在Papp方面,各時間點計算所得的結(jié)果如表2所示。在AP→BL吸收方向上,Papp值隨時間變化逐漸減小,說明葉酸轉(zhuǎn)運體在此過程中有逐漸飽和的趨勢,同時Papp值也隨EPO作用劑量的上升而逐漸增大,說明EPO處理對葉酸在該方向轉(zhuǎn)運具有促進(jìn)作用;在BL→AP外排方向上,Papp值隨EPO作用劑量的上升而逐漸增大,說明EPO處理對葉酸在該方向轉(zhuǎn)運同樣具有一定促進(jìn)作用。
表2 各時間點葉酸轉(zhuǎn)運的pappTab 2 papp of Ap→BL or BL→Ap at each designed time point(±s)
Papp:Apparent permeability coefficients.
EpO處理對葉酸轉(zhuǎn)運體mRNA表達(dá)水平的影響觀察EPO處理Caco-2細(xì)胞后,內(nèi)葉酸轉(zhuǎn)運體PCFT、RFC和MRP2在m RNA水平的變化(圖2)。EPO處理上調(diào)了PCFT與RFC基因的表達(dá),呈現(xiàn)劑量依賴型(圖2A),但僅中、高劑量EPO所致差異有統(tǒng)計學(xué)意義。MRP2基因表達(dá)僅在高劑量EPO處理時上調(diào),低、中劑量EPO對MRP2 m RNA水平無明顯影響;在時間依賴性試驗中發(fā)現(xiàn),PCFT與RFC mRNA水平的變化均在48 h時出現(xiàn),且差異有統(tǒng)計學(xué)意義,24 h時出現(xiàn)的上調(diào)結(jié)果的差異未見統(tǒng)計學(xué)意義(圖2B)。
EpO處理對葉酸轉(zhuǎn)運體蛋白質(zhì)表達(dá)水平的影響觀察EPO處理Caco-2細(xì)胞后,葉酸轉(zhuǎn)運體PCFT、RFC、MRP2蛋白質(zhì)水平的變化(圖3)。EPO處理可劑量依賴性地上調(diào)PCFT、RFC和 MRP2蛋白質(zhì)水平(圖3A),但僅中、高劑量EPO所致差異有統(tǒng)計學(xué)意義;在時間依賴性試驗中發(fā)現(xiàn), PCFT、RFC和MRP2蛋白質(zhì)水平均在48 h時出現(xiàn)上調(diào),且差異有統(tǒng)計學(xué)意義(圖3B)。
生理劑量下EpO長期作用對葉酸轉(zhuǎn)運體表達(dá)的影響進(jìn)一步觀察生理劑量下EPO(10 mU/mL)長期作用對葉酸轉(zhuǎn)運體表達(dá)的影響(圖4)。在mRNA水平上(圖4A),96 h作用期間EPO處理組PCFT相對表達(dá)量(實線)及RFC相對表達(dá)量(虛線)與對照組的比值為80%~120%,差異無統(tǒng)計學(xué)意義;在蛋白質(zhì)水平上(圖4B),EPO處理組與對照組的PCFT、RFC表達(dá)在5、10及15天時差異均無統(tǒng)計學(xué)意義。
葉酸、鐵等微量營養(yǎng)素是造血過程中不可或缺的原料。近年來研究指出,EPO除了在骨髓內(nèi)直接刺激造血細(xì)胞分化外,還具有調(diào)節(jié)鐵吸收的作用,而葉酸的吸收是否也受EPO調(diào)控尚不明確。Caco-2細(xì)胞模型是體外研究營養(yǎng)素吸收的經(jīng)典模型,因此本實驗擬以Caco-2細(xì)胞為模型觀察EPO對葉酸吸收和轉(zhuǎn)運的影響。
在轉(zhuǎn)運實驗中,我們采用AP側(cè)p H 6.0、BL側(cè)p H 7.4的轉(zhuǎn)運環(huán)境,是考慮到人體中腸道p H≈6,而血液p H≈7.4的實際情況。參考文獻(xiàn)選擇EPO的使用劑量[7],低、中、高劑量分別為0.3、1和3 U/mL,與臨床上治療腎性貧血的實際用量相當(dāng)。從結(jié)果中我們發(fā)現(xiàn),葉酸在攝取方向和外排方向的轉(zhuǎn)運均受EPO影響。在攝取方向上(AP→BL),EPO處理對葉酸轉(zhuǎn)運具有促進(jìn)作用并呈劑量依賴關(guān)系;在外排方向上(BL→AP),中低劑量EPO對葉酸轉(zhuǎn)運雖無顯著影響,但高劑量EPO處理對葉酸外排同樣具有促進(jìn)作用。因此,我們推測EPO糾正貧血的機制可能與其促進(jìn)葉酸吸收、保證造血原料充足、優(yōu)化造血環(huán)境有關(guān);同時,高劑量EPO對葉酸轉(zhuǎn)運的雙向調(diào)控作用可能與EPO療法的個體差異性有關(guān)。
腸道內(nèi)負(fù)責(zé)葉酸轉(zhuǎn)運的轉(zhuǎn)運蛋白主要包括PCFT、RFC和MRP2,其中PCFT與RFC負(fù)責(zé)將葉酸從腸道AP側(cè)轉(zhuǎn)運至BL側(cè)(攝取),而MRP2則負(fù)責(zé)將葉酸從BL側(cè)轉(zhuǎn)運至AP側(cè)(外排)。我們在轉(zhuǎn)運體表達(dá)的檢測中發(fā)現(xiàn),藥理劑量下EPO (0.3、1、3 U/m L)處理48 h即可引起上述轉(zhuǎn)運體表達(dá)的變化。其中,PCFT、RFC表達(dá)在EPO作用下劑量依賴上調(diào),與轉(zhuǎn)運實驗中葉酸在攝取方向的變化一致。值得注意的是,中劑量EPO(1 U/m L)處理與高劑量EPO(3 U/m L)處理引起的PCFT、RFC表達(dá)的變化十分接近,但在轉(zhuǎn)運實驗中兩者引起的變化程度卻有較大差異,說明高劑量EPO (3 U/m L)影響下葉酸攝取的改變可能還有轉(zhuǎn)運體表達(dá)之外的機制參與。MRP2表達(dá)同樣在EPO作用下呈劑量依賴上調(diào),但僅高劑量EPO(3 U/m L)引起葉酸在外排方向的改變,這可能與葉酸外排還有其他轉(zhuǎn)運體參與介導(dǎo)有關(guān)。此外,我們發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)運體表達(dá)的變化在m RNA水平與蛋白水平并不完全一致,說明EPO的調(diào)控方式可能同時包括轉(zhuǎn)錄調(diào)控與翻譯調(diào)控。
機體在非貧血狀態(tài)下EPO水平含量極低,血中含量約10 m U/m L,但在低氧應(yīng)激中可上升1 000倍,達(dá)到10 U/m L[19-20]。生理劑量下EPO是否與藥理劑量下EPO具有相似功能還值得探討。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),生理劑量下EPO(10 m U/m L)長期作用15天,Caco-2細(xì)胞內(nèi)葉酸轉(zhuǎn)運體PCFT、RFC的表達(dá)無顯著變化。這一現(xiàn)象提示EPO在腸道細(xì)胞上的作用可能是機體在低氧脅迫下的應(yīng)激反應(yīng),即通過促進(jìn)造血原料的吸收、優(yōu)化造血環(huán)境來刺激造血、改善低氧,而在正常情況下該作用處于靜息狀態(tài)。
綜上所述,本研究采用體外培養(yǎng)Caco-2單層細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)了EPO對葉酸腸道吸收的促進(jìn)作用,以及高劑量EPO對葉酸轉(zhuǎn)運的雙向調(diào)控作用,對拓寬EPO作用機制的認(rèn)識,深化了解腎性貧血患者體內(nèi)病理生理的改變具有一定幫助。
[1] Elliott S,Pham E,Macdougall IC.Erythropoietins:a common mechanism of action[J].Exp Hematol,2008,36 (12):1573-1584.
[2] Bamgbola OF.Pattern of resistance to erythropoietinstimulating agents in chronic kidney disease[J].Kidney Int,2011,80(5):464-474.
[3] Johnson DW,Pollock CA,Macdougall IC.Erythropoiesisstimulating agent hyporesponsiveness[J].Nephrology (Carlton),2007,12(4):321-330.
[4] Zhao R,Matherly LH,Goldman ID.Membrane transporters and folate homeostasis:intestinal absorption and transport into systemic compartments and tissues[J]. Expert Rev Mol Med,2009,11:e4.
[5] Pinto JP,Ribeiro S,Pontes H,et al.Erythropoietin mediates hepcidin expression in hepatocytes through EPOR signaling and regulation of C/EBPalpha[J].Blood, 2008,111(12):5727-5733.
[6] Kong WN,Chang YZ,Wang SM,et al.Effect of erythropoietin on hepcidin,DMT1 with IRE,and hephaestin gene expression in duodenum of rats[J].J Gastroenterol,2008,43(2):136-143.
[7] Srai SK,Chung B,Marks J,et al.Erythropoietin regulates intestinal iron absorption in a rat model of chronic renal failure[J].Kidney Int,2010,78(7):660-667.
[8] Balamurugan K,Said HM.Role of reduced folate carrier in intestinal folate uptake[J].Am J Physiol Cell Physiol, 2006,291(1):C189-C193.
[9] Said HM.Recent advances in carrier-mediated intestinal absorption of water-soluble vitamins[J].Annu Rev Physiol,2004,66:419-446.
[10] Zhao R,Min SH,Wang Y,et al.A role for the protoncoupled folate transporter(PCFT-SLC46A1)in folate receptor-mediated endocytosis[J].J Biol Chem,2009,284 (7):4267-4274.
[11] Qiu A,Jansen M,Sakaris A,et al.Identification of an intestinal folate transporter and the molecular basis for hereditary folate malabsorption[J].Cell,2006,127(5):917-928.
[12] Mottino AD,Hoffman T,Jennes L,et al.Expression and localization of multidrug resistant protein mrp2 in rat small intestine[J].J Pharmacol Exp Ther,2000,293(3):717-723.
[13] Salojin KV,Cabrera RM,Sun W,et al.A mouse model of hereditary folate malabsorption:deletion of the PCFT gene leads to systemic folate deficiency[J].Blood,2011, 117(18):4895-4904.
[14] Bukhari FJ,Moradi H,Gollapudi P,et al.Effect of chronic kidney disease on the expression of thiamin and folic acid transporters[J].Nephrol Dial Transplant,2011,26(7):2137-2144.
[15] Artursson P,Palm K,Luthman K.Caco-2 monolayers in experimental and theoretical predictions of drug transport[J].Adv Drug Deliv Rev,2001,46(1-3):27-43.
[16] Ashokkumar B,Mohammed ZM,Vaziri ND,et al.Effect of folate oversupplementation on folate uptake by human intestinal and renal epithelial cells[J].Am J Clin Nutr, 2007,86(1):159-166.
[17] Verwei M,van den Berg H,Havenaar R,et al.Effect of folate-binding protein on intestinal transport of folic acid and 5-methyltetrahydrofolate across Caco-2 cells[J].Eur J Nutr,2005,44(4):242-249.
[18] Hubatsch I,Ragnarsson EG,Artursson P.Determination of drug permeability and prediction of drug absorption in Caco-2 monolayers[J].Nat Protoc,2007,2(9):2111 -2119.
[19] Fisher JW,Koury S,Ducey T,et al.Erythropoietin production by interstitial cells of hypoxic monkey kidneys[J].Br J Haematol,1996,95(1):27-32.
[20] Jacobson LO,Goldwasser E,Fried W,et al.Role of the kidney in erythropoiesis[J].Nature,1957,179(4560):633 -634.
Effects of erythropoietin(Ep O)on the transport of folic acid across Caco-2 monolayers
YAN Jun-kai1,JIN Gui-ying1,RI Ho-nam2,YANG Qing1△
(1Department of Biochemistry,School of Life Sciences,Fudan University,Shanghai 200433,China;
2Department of Biochemistry,Faculty of Life Science,Kim Il Sung University,Pyongyang,D.P.R.Korea)
Objective To investigate the effect of erythropoietin(EPO)on the transport of folic acid across human colon adenocarcinoma cell line Caco-2 monolayers.MethodsTransport assays of folic acid in uptake direction and efflux direction were performed in Caco-2 monolayers with or without the supplement of EPO(0.3,1 and 3 U/m L).The effects of EPO on the expressions of folate transportersproton coupled folate transporter(PCFT),reduced folate carrier(RFC)and multidrug resistanceassociated protein 2(MRP2)were analyzed by real time-PCR and Western blot.ResultsTransporter-mediated uptake of folic acid was enhanced by EPO treatment in a dose-dependent manner,and the increasing degrees were 31.6%,61.5%and 120.5%for 0.3,1 and 3 U/m L EPO,respectively.The efflux of folic acid was enhanced only by EPO at high dose(3 U/m L),and the increasing degree was 56.9%.The expression levels of folate transporters(PCFT,RFC and MRP2) were up-regulated by EPO in a dose-and time-dependent manner.ConclusionsEPO at high does bidirectionally regulates the transport of folic acid.The uptake of folic acid was enhanced by EPO in a dose-dependent manner while the efflux of folic acid was enhanced by EPO of high dose.
folic acid; erythropoietin(EPO); Caco-2 cell; folate transporter
Q 563+.8;Q 735
A
10.3969/j.issn.1672-8467.2014.01.005
2013-03-07;編輯:王蔚)
國家自然科學(xué)基金(30873153)
△Corresponding author E-mail:yangqing68@fudan.edu.cn
*This work was supported by the National Natural Science Foundation of China(30873153).