薄 冰
(河南大學(xué)體育學(xué)院運動人體科學(xué)教研室,河南開封475000)
竇房結(jié)作為心臟的首要起搏點,在心臟規(guī)律的電學(xué)活動中具有極其重要的作用[1],其中,快激活延遲整流鉀離子通道(IKr通道)引導(dǎo)竇房結(jié)細(xì)胞主要的復(fù)極化電流,該通道功能活動的改變可影響竇房結(jié)細(xì)胞動作電位復(fù)極化,進而導(dǎo)致竇房結(jié)功能障礙[2-3]。目前,關(guān)于運動對竇房結(jié)細(xì)胞IKr通道的影響鮮見報道,本文在跑臺訓(xùn)練大鼠模型上,探討IKr通道亞基ERG1b 基因表達(dá)及通道電流密度變化,揭示運動對于竇房結(jié)離子通道及功能的影響。
SPF 級雄性SD 大鼠50 只,6 周齡,體質(zhì)量180±8 g(由河南省實驗動物中心提供,合格證號:410118)。動物常規(guī)分籠飼養(yǎng),5 只/籠,國家標(biāo)準(zhǔn)嚙齒動物飼料喂養(yǎng),自由飲食。飼養(yǎng)環(huán)境為室溫18 ±2 ℃,相對濕度為40%~50%,光照時間12 h。大鼠首先進行3 d 適應(yīng)性跑臺訓(xùn)練,速度10 m/min,時間20 min,跑臺坡度為0°。訓(xùn)練結(jié)束后,將能夠完成跑臺訓(xùn)練的大鼠隨機分為5 組,每組10 只,包括對照組(C 組)1 組、1 次力竭組(O 組)2 組、兩周反復(fù)力竭組(R 組)2 組。C 組大鼠不進行任何運動訓(xùn)練,O 組大鼠在正常飼養(yǎng)兩周后,進行1 次速度25 m/min,坡度為0°跑臺訓(xùn)練至力竭,R 組運動方式及強度同O組,每天1 次跑臺訓(xùn)練,每周6 d,共訓(xùn)練2 周。跑臺訓(xùn)練組大鼠分別于訓(xùn)練結(jié)束后0 h 及24 h 取材,O組以O(shè)-0 h 及O-24 h 命名,R 組以R-0 h 及R-24 h命名[4]。
1.2.1 實時熒光定量PCR 檢測mRNA:腹腔注射10%水合氯醛(1 mL/100 g 體質(zhì)量)麻醉大鼠,參照文獻(xiàn)分離竇房結(jié)組織[5-6],Trizol 法提取總RNA 并反轉(zhuǎn)錄RNA 合成為cDNA,保存于-20 ℃?zhèn)溆茫?]。
通過互聯(lián)網(wǎng)GenBank 查找基因序列,應(yīng)用Primer5 軟件進行引物設(shè)計,設(shè)計完成的引物由Invitrigin公司合成,引物序列見表1。
表1 Real-time PCR 基因引物序列Table 1 Sequence of primers for real-time PCR
取實時熒光定量PCR 專用96 孔板,解凍引物和cDNA,依次加入:引物F/R(上下游引物終濃度均為10 μmol/ L)1 μL、相對應(yīng)的cDNA 1 μL,RealqPCR Master Mix 12 μL、H2O 11 μL,共25 μL,封膜。預(yù)熱ABI7900HT 定量PCR 儀,進行實時熒光定量PCR 實驗,反應(yīng)條件如下:95 ℃10 min,95 ℃15 s,60 ℃1 min(生成擴增曲線);95 ℃15 s,60 ℃60 s,95 ℃15 s(生成熔解曲線),上述反應(yīng)共40 個循環(huán)[7-9]。觀察熔解曲線,判斷PCR 特異性;以2-△△Ct作為計算公式,分析各組間mRNA 的表達(dá)差異,每個反應(yīng)重復(fù)3 次。
1.2.2 Western blot 檢測蛋白質(zhì)表達(dá):采用Novagen跨膜蛋白提取試劑盒按說明書操作提取大鼠竇房結(jié)組織跨膜蛋白(Cat No.71772-3)。提取蛋白質(zhì)后,加入2 ×SDS 上樣緩沖液煮沸,10% SDS-PAGE中電泳,轉(zhuǎn)移至PVDF 膜。取下膜,用5% BSA 室溫封閉1 h,TBST(洗滌緩沖液)洗膜5 min 后加入稀釋濃度為1∶1 000 的一抗(兔ERG 多克隆抗體,Cat.No.ab92513),4 ℃孵育過夜,TBST 洗膜5 ×5 min,然后加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗,室溫孵育1 h,TBST 洗膜5 ×5 min。在暗室中,取ECL 顯色液A、B 液等體積混合,將轉(zhuǎn)印膜用混合液潤濕均勻,壓在暗盒中固定,顯影定影3 min。用掃描儀進行膠片掃描,圖像分析采用Quantity one 軟件進行吸光度積分值分析。
1.2.3 大鼠竇房結(jié)細(xì)胞膜IKr通道電流密度測定:參照文獻(xiàn)[10],急性分離大鼠心臟竇房結(jié)細(xì)胞(圖1),選取大鼠單個竇房結(jié)細(xì)胞為研究對象,采用全細(xì)胞膜片鉗記錄大鼠竇房結(jié)細(xì)胞IKr電流(圖6),具體操作步驟參照文獻(xiàn)[8-9]。實驗結(jié)果以通道電流密度數(shù)值表示,電流密度為電流強度與膜電容的比值(pA/pF),其中電流強度為實驗所測量電流峰值,膜電容為實驗中記錄到的單個細(xì)胞電容值。
圖1 酶消化分離后不同形態(tài)大鼠竇房結(jié)細(xì)胞Fig 1 Morphlolgy of isolated mouse sinoatrial node cells(scale bar=10 μm)
與C 組相比,O-0h 組ERG1b mRNA 相對表達(dá)量升高(P<0.01),O-24 h 組無變化;R-0 h 及R-24 h組表達(dá)量下降,低于C 組及O-0 h(P<0.01,P<0.01),兩組間無明顯差異(圖2,3)。
圖2 各組大鼠竇房結(jié)ERG1b real-time PCR 熔解曲線Fig 2 The dissociation curve of ERG1b real-time PCR of different groups in sinoatrial node
圖3 大鼠竇房結(jié)IKr通道亞基ERG1b mRNA相對表達(dá)量比較Fig 3 ERG1b mRNA expression level in IKr channel of rats sinoatrial node(±s,n=8)
與C 組相比,一次跑臺訓(xùn)練組吸光度值無明顯差異;與C 及O-0h 組相比,R-0h 及R-24 h 組吸光度值明顯下降(P<0.01,P<0.01)(圖4,5)。
與對照組相比,O-0 h 及O-24 h 組電流密度無明顯變化,R-0h 及R-24 h 組電流密度較對照組及一次訓(xùn)練兩組明顯下降(P<0.01)(表2,圖6,7)。
圖4 各組大鼠竇房結(jié)IKr通道亞基ERG1b蛋白質(zhì)表達(dá)電泳圖Fig 4 The electrophoresis of ERG1b protein expression level in IKr channel of rats sinoatrial node
圖5 各組大鼠竇房結(jié)IKr通道亞基ERG1b 蛋白質(zhì)表達(dá)量比較Fig 5 ERG1b protein expression level in IKr channel of rats sinoatrial node (±s,n=8)
表2 各組大鼠竇房結(jié)細(xì)胞IKr通道電流密度Table 2 The current density of IKr channel of different groups in sinoatrial node cells
圖6 C 組及R-0 h 組大鼠竇房結(jié)細(xì)胞IKr原始電流圖Fig 6 IKr original traces of different groups in sinoatrial node cells IKr
圖7 對照組、一次力竭即刻組、反復(fù)力竭即刻組大鼠竇房結(jié)細(xì)胞膜上IKr通道IKr I-V 曲線Fig 7 IKr current-voltage (I-V)relationship of different groups in sinoatrial node cells
快激活I(lǐng)Kr通道在竇房結(jié)細(xì)胞動作電位復(fù)極化過程中引導(dǎo)外向K+電流,在動作電位復(fù)極化控制及起搏活動中發(fā)揮重要作用,構(gòu)成心臟竇房結(jié)IKr通道主要為ERG1b 基因[11]。本研究用兩周跑臺訓(xùn)練的大鼠模型探討運動對大鼠竇房結(jié)IKr通道亞基ERG1b 基因表達(dá)及通道IKr電流密度的影響,發(fā)現(xiàn)一次跑臺訓(xùn)練對ERG1b 基因表達(dá)無明顯影響,兩周力竭訓(xùn)練后該亞基mRNA 及蛋白質(zhì)表達(dá)量減少,運動結(jié)束后24 h 內(nèi)其變化趨勢穩(wěn)定,可見,兩周反復(fù)大強度運動能夠抑制ERG1b 基因表達(dá),這種下調(diào)可能引起IKr通道介導(dǎo)的IKr電流密度減少,結(jié)合電生理實驗結(jié)果可知,R-0 h 組電流密度較對照組明顯下降,并且在運動結(jié)束后24 h 無明顯變化,這與ERG1b 基因表達(dá)的變化趨勢類似,提示ERG1b 亞基的變化與IKr通道的變化密切相關(guān),反復(fù)力竭運動對于IKr通道亞基基因表達(dá)及電流密度均可產(chǎn)生抑制作用。
有報道納摩爾劑量的E-4031 阻斷兔竇房結(jié)自律細(xì)胞中IKr后,可使細(xì)胞的靜息電位穩(wěn)定于-30 mV和-40 mV 之間,最大舒張電位的正向變化可減少起搏電流If 的活化,同時增加電壓依賴性ICa,L和ICa,T在舒張期去極化的失活,導(dǎo)致動作電位幅度和上升速度減少,從而引起起搏活動的減慢并終止竇房結(jié)細(xì)胞的自律活動[12]。
本研究證實,反復(fù)力竭運動可引起大鼠竇房結(jié)細(xì)胞膜IKr通道亞基ERG1b 基因表達(dá)及IKr電流密度下降,這可能成為運動引發(fā)竇房結(jié)功能障礙及運動性猝死發(fā)生的離子通道機制之一[13]。
[1]Yaniv Y,Lakatta EG.Pacemaker gene mutations,bradycardia,arrhythmias and the coupled clock theory[J].J Cardiovasc Electr,2013,24:28-29.
[2]Oehmen CS,Giles WR,Demir SS.Mathematical model of the rapidly activating delayed rectifier potassium current I(Kr)in rabbit sinoatrial node[J].J Cardiovasc Electr,2002,13:1131-1140.
[3]Ono K,Ito H.Role of rapidly activating delayed rectifier K+ current in sinoatrial node pacemaker activity[J].Am J Physiol,1995,269:453-462.
[4]王凱,潘珊珊,王慶棠.心肌SarcKATP 通道kir6.2 亞基在運動預(yù)適應(yīng)心肌保護效應(yīng)中變化的研究[J].體育科學(xué),2012,32:60-66.
[5]Monfredi O,Dobrzynski H,Mondal T,et al.The anatomy and physiology of the sinoatrial node-a contemporary review[J].Pacing Clin Electrophysiol,2010,33:1392-1406.
[6]Sánchez-Quintana D,Pizarro G,López-Mínguez JR,et al.Standardized Review of Atrial Anatomy for Cardiac Electrophysiologists[J].J Cardiovasc Trans Res,2013,6:122-144.
[7]楊紅霞,常蕓.力竭運動后不同時相大鼠心臟竇房結(jié)ADAMTS-1 的變化[J].中國運動醫(yī)學(xué)雜志,2011,30:437-441.
[8]薄冰,常蕓.力竭運動對大鼠竇房結(jié)超級化激活環(huán)核苷酸門控通道的影響[J].中國運動醫(yī)學(xué)雜志,2012,31:792-800.
[9]薄冰,常蕓.力竭運動對大鼠竇房結(jié)ATP-敏感型鉀離子通道的影響[J].中國運動醫(yī)學(xué)雜志,2012,31:861-867.
[10]Rose RA,Lomax AE,Kondo CS,et al.Effects of C-type natriuretic peptide on ionic currents in mouse sinoatrial node:a role for the NPR-C receptor[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2004,286:1970-1977.
[11]Vandenberg JI,Perry MD,Perrin MJ,et al.hERG K+channels:structure,function,and clinical significance[J].Physiol Rev,2012,92:1393-1478.
[12]Verheijck EE,van Ginneken AC,Bourier J,et al.Effects of delayed rectifier current blockade by E-4031 on impulse generation in single sinoatrial nodal myocytes of the rabbit[J].Circ Res,1995,76:607-615.
[13]Hashem SI,Claycomb WC.Genetic isolation of stem cellderived pacemakeR-nodal cardiac myocytes[J].Mol Cell Biochem,2013,383:161-171.