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    Notch和HES蛋白表達(dá)在大鼠靜脈橋狹窄中的作用

    2014-03-16 01:47:10魏小棟肖永光
    基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床 2014年10期
    關(guān)鍵詞:安慰劑平滑肌通路

    魏小棟,肖永光

    (1.湖北民族學(xué)院附屬民大醫(yī)院心胸外科,湖北恩施445000;2.武漢大學(xué)人民醫(yī)院胸外科,湖北武漢430062)

    自體靜脈因其取材方便、操作相對簡單,常作為外科治療冠心病和外周動脈狹窄的首選材料。但此類手術(shù)后靜脈橋遠(yuǎn)期療效不佳,5年通暢率僅為30%,導(dǎo)致遠(yuǎn)端血供重新受到影響,嚴(yán)重者甚至需要再次手術(shù)治療[1]。研究表明,影響術(shù)后靜脈橋再次狹窄的主要原因是中層血管平滑肌細(xì)胞的大量增生并分泌大量的細(xì)胞基質(zhì)在管壁堆積,造成管壁增厚、彈性減弱[2]。但血管平滑肌細(xì)胞增生和分泌大量細(xì)胞基質(zhì)的病理機(jī)制目前卻尚不清楚[3]。

    Notch 是一個(gè)非常保守的信號通路,其一共有4個(gè)受體(Notch1、2、3、4)和5 個(gè)配體(Jagged1、2 和Dll1、3、4),γ-促分泌酶復(fù)合體DAPT 酶切釋放Notch 受體的活化形式NICD 和HES1。有研究表明Notch 通路在血管平滑肌細(xì)胞(vascular smooth muscle cells,vSMCs)的增生/凋亡以及細(xì)胞表型變化過程中起到重要作用[4]。但Notch 信號在靜脈橋狹窄中的作用目前尚不清楚,本研究探討Notch 信號在靜脈橋狹窄中的作用。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)?zāi)P偷慕⑴c分組

    SPA 級SD 大鼠,體質(zhì)量220~240 g,雌雄不限。共30 只(武漢大學(xué)實(shí)驗(yàn)中心),隨機(jī)分為對照組(control)、實(shí)驗(yàn)組和安慰劑組,每組10 只。各組實(shí)驗(yàn)動物均建立靜脈橋移植模型,從尾靜脈注射4%戊巴比妥鈉(30 mg/kg)+肝素(1.5 mg/kg)。麻醉誘導(dǎo)成功后,左頸部備皮并切開頸部皮膚,游離左側(cè)頸總動脈和頸外靜脈。在25 倍手術(shù)顯微鏡下,剪取長約1 cm 靜脈作為血管橋,用11-0 醫(yī)用無損傷線將動脈兩端分別與靜脈橋行端端吻合[5]。術(shù)畢依層縫合,關(guān)閉切口。術(shù)后置大鼠于室溫,自然清醒。術(shù)畢每日觸摸頸部,靜脈橋處可及震顫。對照組術(shù)后不做任何處理;實(shí)驗(yàn)組(DAPT 組)每只每日皮下注射DAPT 10 mg/kg;安慰劑組(DMSO 組)注射安慰劑二甲基亞砜(DMSO)10 mg/kg。術(shù)后3 組動物均常規(guī)飼養(yǎng)。實(shí)驗(yàn)所有試劑均來自Sigma-Aldrich 公司。

    1.2 標(biāo)本采集和處理

    術(shù)后組動物常規(guī)飼養(yǎng),手術(shù)當(dāng)天及術(shù)后第7、14、21 及28 天隨機(jī)抽取3 組動物各2 只,用上述相同方法麻醉后沿原切口切開,游離靜脈橋,清除靜脈壁外附著組織,阻斷兩端吻合處,向腔內(nèi)注入適量10%甲醛液,10 min 后切取移植靜脈橋進(jìn)行常規(guī)病理切片,HE 染色及PCNA 免疫組化染色。實(shí)驗(yàn)動物均放血處死。

    1.3 觀察指標(biāo)

    術(shù)后28d 收集齊各組移植靜脈后觀察以下指標(biāo):在顯微鏡下,以內(nèi)彈力膜為界,測量10 mm 長靜脈橋中膜平均厚度;計(jì)算靜脈橋中膜平滑肌細(xì)胞系PCNA 染色陽性指數(shù)(PCNA 指數(shù)= PCNA 陽性細(xì)胞/視野下100 個(gè)細(xì)胞×100%);取移植血管,裂解細(xì)胞制成蛋白液后,行Western blot,分析Notch1 和HES1 的蛋白濃度變化。

    1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    采用spss17.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。定量數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,組間比較用t 檢驗(yàn)。

    2 結(jié)果

    2.1 Notch 信號蛋白在靜脈橋中呈高表達(dá)狀態(tài)

    Notch1,HES1 蛋白在靜脈移植中呈高表達(dá),且隨著時(shí)間的延長,這些蛋白表達(dá)逐漸增加(圖1)。HES1 蛋白的表達(dá)與靜脈狹窄的嚴(yán)重程度呈正相關(guān)(圖2)。

    圖1 WB 顯示相關(guān)蛋白表達(dá)變化Fig 1 WB data show the result of Notch1 and HES1

    圖2 HES1 蛋白表達(dá)與移植靜脈中膜厚度相關(guān)性Fig 2 The expression of HES1 protein and intima thickness of vein graft

    2.2 抑制Notch 信號能夠緩解靜脈橋狹窄

    DAPT 能夠明顯抑制HES1 蛋白的表達(dá)(圖3),而安慰劑組中DMSO 對Notch 信號通路無影響,所以HES1 蛋白表達(dá)無變化。圖4 顯示各組移植靜脈后靜脈管壁厚度的差異。圖5 顯示DAPT 組中層厚度比例明顯低于對照組和DMSO 組(P<0.05),PCNA 指數(shù)顯示DAPT 組明顯低于其他兩組(P<0.05)(圖6)。

    圖3 各組移植靜脈vSMCs 中HES1 蛋白表達(dá)Fig 3 The expression of HES1 protein in each group

    圖4 各組移植靜脈HE 染色Fig 4 H&E staining in each group

    圖5 各組移植靜脈中膜厚度比變化Fig 5 The intima thickness of vein graft in each group

    3 討論

    靜脈是用于治療冠心病和外周動脈狹窄最常用的自體材料,但靜脈橋再狹窄一直是制約其遠(yuǎn)期療效的關(guān)鍵因素[6]。雖然靜脈橋狹窄的原因目前尚未完全明了,有研究表明靜脈橋發(fā)生狹窄的主要原因是血管壁中膜平滑肌樣細(xì)胞增生且細(xì)胞表型發(fā)生變化,并分泌大量細(xì)胞外基質(zhì)在血管壁內(nèi)堆積,從而形成移植橋血管管腔狹窄,導(dǎo)致閉塞[5]。本實(shí)驗(yàn)也證實(shí)如果降低中膜平滑肌細(xì)胞的增殖能力,可以極大限度的緩解靜脈橋狹窄的程度。

    圖6 各組移植靜脈PCNA 指數(shù)變化Fig 6 PCNA positive index of vein graft in each group

    Notch 信號是一個(gè)相對保守的通路,其在血管系統(tǒng)的生理和病理反應(yīng)中均起到重要作用,特別是在調(diào)控血管平滑肌細(xì)胞增生方面起到重要作用[3,7]。本實(shí)驗(yàn)證實(shí)靜脈橋狹窄過程中,Notch 信號通路明顯活化,其蛋白成員均呈高表達(dá)狀態(tài),且與靜脈橋狹窄程度呈正相關(guān),這說明Notch 信號與靜脈橋狹窄存在一定的相關(guān)性。而通過DAPT 阻斷Notch 信號通路,不僅可以使Notch 信號通路的蛋白表達(dá)下降,而且可以明顯抑制肺動脈高壓的形成。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果還顯示血管平滑肌細(xì)胞PCNA 陽性指數(shù)明顯降低,提示血管平滑肌細(xì)胞增生程度明顯被抑制,表明DAPT 能夠通過阻斷notch 通路,影響血管平滑肌細(xì)胞的增生,從而達(dá)到抑制靜脈橋內(nèi)膜增厚的目的[8]。

    [1]Hillis LD,Smith PK,Anderson JL,et al.2011 ACCF/AHA Guideline for coronary artery bypass graft surgery:executive summary:a report of the American College of Cardiology Foundation/American Heart Association Task Force on Practice Guidelines[J].Circulation,2011,124:2610-2642.

    [2]Serruys PW,Morice MC,Kappetein AP,et al.Percutaneous coronary intervention versus coronary-artery bypass grafting for severe coronary artery disease[J].N Engl J Med,2009,360:961-972.

    [3]Kudo FA,Muto A,Maloney SP,et al.Venous identity is lost but arterial identity is not gained during vein graft adaptation[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2007,27:1562-1571.

    [4]Chen Y,Zheng S,Qi D,et al.Inhibition of Notch signaling by a c-secretase inhibitor attenuates hepatic fibrosis in rats[J].PloS One,2012,7:e46512

    [5]Sun J,Zheng J,Ling KH,et al.Preventing intimal thickening of vein grafts in vein artery bypass using STAT-3 siRNA[J].J Transl Med,2012,10:2-3.

    [6]Bikdeli B,Hassantash SA,Pourabdollah M,et al.Histopathologic insight into saphenous vein bypassgraft disease[J].Cardiology,2012,123:208-215.

    [7]Muto A,Model L,Ziegler K,et al.Mechanisms of vein graft adaptation to the arterial circulation:insights into the neointimal algorithm and management strategies[J].Circ J,2010,74:1501-1512.

    [8]Lyon CA,Koutsouki E,Aguilera CM,et al.Inhibition of N-cadherin retards smooth muscle cell migration and intimal thickening via induction of apoptosis[J].J Vasc Surg,2010,52:1301-1309.

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