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    微波預處理-超聲波提取山茱萸多糖及穩(wěn)定性研究

    2014-02-16 06:11:56史娟
    食品研究與開發(fā) 2014年1期
    關鍵詞:山茱萸光度預處理

    史娟

    (陜西理工學院化學與環(huán)境科學學院,陜西漢中723000)

    近年來,隨著分子生物學、生物化學等學科的發(fā)展,多糖所具有的增強免疫功能,抗輻射、抗腫瘤、抗炎、降血糖等生物活性,逐漸被人們發(fā)現(xiàn)和認識,成為當前新藥發(fā)展的方向之一。山茱萸(Fructus corni)作為山茱萸科植物山茱萸的干燥果實,因其抗氧化作用[1]、抗癌、抗腫瘤作用[2-3]、抗衰老作用[4]及保護腦組織等作用[5]而成為生物醫(yī)藥研究、開發(fā)的一大熱點。目前,山茱萸多糖的提取技術主要包括熱水提取法[6]、堿提取法[7]、超聲波提取法[8]、微波提取法[9]和酶提取法[10]。其中,超聲波、微波提取法因其速度快、能耗小、溶劑用量小等特點受到青睞。目前,關于微波、超聲波技術聯(lián)合用于山茱萸多糖的提取及穩(wěn)定性的研究報道尚未見到。本文將微波、超聲波技術聯(lián)合應用于山茱萸多糖的提取,并對提取多糖進行穩(wěn)定性研究。以期獲得山茱萸多糖的最佳提取條件及穩(wěn)定性數(shù)據(jù),為其產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)及深加工提供有效方法及技術參數(shù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料、試劑和儀器

    1.1.1 材料與試劑

    山茱萸2011年10月下旬收于漢中佛坪縣,洗凈、烘干、粉碎后,經(jīng)乙醚、乙醇回流脫脂脫色后密封備用。

    1.1.2 試劑

    葡萄糖、乙醚、無水乙醇、三氯甲烷、正丁醇、苯酚、濃硫酸、氯化鈉、氯化鉀、氯化鋁、氯化鈣、氯化銅、氯化鐵、檸檬酸、苯甲酸鈉、30%H2O2、亞硫酸鈉、濃鹽酸、氫氧化鈉等試劑均為國產(chǎn)分析純。水為二次去離子水。

    1.1.3 儀器

    101 型電熱鼓風干燥箱:北京科偉永興儀器有限公司;FW117 粉碎機:天津市泰斯特儀器有限公司;AL204-IC 型電子分析天平:梅特勒-托利多儀器上海有限公司;WP700 型微波爐:佛山市格蘭仕微波爐電器有限公司;SB-5200DT 超聲波清洗器:寧波新芝生物科技股份有限公司;HH 系列恒溫水浴鍋:河北省黃驊市渤海電器廠;TDL-5 臺式離心機:上海安亭科學儀器廠;721 型可見分光光度計:山海光譜儀器有限公司制造;RE-52B 型旋轉蒸發(fā)儀:上海亞榮生化儀器廠;PHS-3S 型pH 酸度計:上海精密科學儀器有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 山茱萸多糖提取方法

    山茱萸果實→烘干→粉碎→乙醚、乙醇回流脫脂脫色→微波預處理→超聲波提取→蒸發(fā)濃縮→乙醇沉淀過夜→Savage 法除蛋白→二次醇沉→靜置過夜→無水乙醇洗滌→低溫干燥→山茱萸多糖。

    1.2.2 標準曲線的繪制

    準確吸取1 mg/mL 的標準葡萄糖溶液2.0、4.0、8.0、12.0、16.0、20.0、24.0、28.0 mL 于100 mL 容量瓶中,蒸餾水定容;再分別吸取上述各溶液1.0 mL 于25 mL比色管中,加入1.0 mL 2%苯酚和5.0 mL 濃硫酸;搖勻,沸水浴加熱15 min 后,冰水浴中冷至室溫,以蒸餾水為空白,在波長490 nm 處測吸光度,繪制標準曲線如圖1 所示。

    圖1 標準曲線Fig.1 The standard curve of polysaccharide

    1.2.3 山茱萸中多糖含量的測定方法

    苯酚-硫酸比色法測定山茱萸多糖含量[11],多糖提取率計算采用:多糖提取率=(C×V)/W×100%,式中C 為按標準曲線得出的多糖溶液濃度;V 為多糖溶液體積;W 為原料質量。

    1.2.4 提取實驗

    采用不同超聲時間、溫度、料液比及醇沉濃度4個因素對山茱萸多糖提取率的影響進行單因素考查。并結合單因素實驗結果設計L9(34)的正交試驗(見表1),尋求最佳提取工藝條件。

    表1 四因素三水平正交試驗表Table 1 Factors and levels of orthogonal experiments

    1.2.5 山茱萸多糖的穩(wěn)定性試驗

    取山茱萸多糖溶液,通過改變酸堿度、加入不同金屬離子、食品添加劑、氧化還原劑等的水溶液,在一定條件下放置一段時間,在波長為490 nm 處測定不同溶液的吸光度,考察山茱萸多糖在上述條件下的穩(wěn)定性。

    2 結果與討論

    2.1 最佳單因素的確定

    2.1.1 超聲提取時間對多糖提取率的影響

    準確稱取5 g 脫脂脫色后的山茱萸粉末,微波預處理60 s,在料液比1 ∶14(g ∶mL)、提取溫度60 ℃的條件下,改變超聲處理時間,研究多糖提取率。超聲提取時間對多糖提取率的影響如圖2 所示。

    圖2 提取時間對多糖提取率的影響Fig.2 Effect of time on polysaccharide yield

    結果表明,隨著超聲提取時間的增加,山茱萸多糖得率逐漸提高。在80 min 時,多糖得率達到最高。此后隨著處理時間的延長,多糖得率開始下降。故最佳超聲提取時間為80 min。

    2.1.2 超聲提取溫度對多糖提取率的影響

    準確稱取5 g 脫脂脫色后的山茱萸粉末,微波預處理60 s 后,在料液比1 ∶14(g ∶mL)、超聲提取時間80 min 的條件下,改變超聲處理溫度,研究多糖提取率。溫度對提取率的影響見圖3,隨著提取溫度升高,多糖得率隨之增加,在60 ℃多糖得率最高。

    圖3 提取溫度對多糖提取率的影響Fig.3 Effect of temperature on polysaccharide yield

    2.1.3 料液比對多糖提取率的影響

    準確稱取5 g 脫脂脫色后的山茱萸粉末,微波預處理60 s 后,在超聲處理時間80 min,溫度60 ℃的條件下,研究料液比對山茱萸多糖提取效果的影響見圖4。

    圖4 料液比對多糖提取率的影響Fig.4 Effect of material/liquid ratio on polysaccharide yield

    圖4 反映出了料液比對多糖提取率的影響,料液比低于1∶14(g/mL)時,增大料液比,多糖提取率隨之增加;料液比大于1∶14(g/mL)后,提取率減小。這是因為溶劑用量少,原料細胞組織浸潤不完全,提取效果差;而過多溶劑則會消耗大量超聲波輻射能量,因而影響多糖的析出。因此,選擇料液比1∶14(g/mL)為宜。

    2.1.4 醇沉濃度對多糖提取率的影響

    準確稱取5 g 脫脂脫色后的山茱萸粉末,微波預處理60 s 后,在超聲處理時間80 min,提取溫度60 ℃,料液比為1∶14(g/mL)條件下,改變醇沉濃度,研究多糖提取率。醇沉濃度對提取率的影響見圖5。結果表明,隨著乙醇濃度升高,多糖得率隨之增加,在乙醇濃度75%時,多糖得率最高。

    圖5 醇沉濃度對多糖提取率的影響Fig.5 Effect of alcohol concentration on polysaccharide yield

    2.2 正交試驗得出各因素交互作用對山茱萸多糖提取含量的影響

    2.2.1 正交試驗結果與分析

    正交試驗結果與分析見表2、表3。

    表2 正交試驗結果Table 2 Orthogonal test design and results

    表3 方差分析表Table 3 Analysis of variance

    正交試驗分析由表2 可知,在山茱萸多糖超聲提取的因素中:時間A>溫度B>醇沉濃度D>料液比C,優(yōu)方案為A2B2C2D1,故最佳提取條件為:提取時間80 min,提取溫度60 ℃,料液比1 ∶14(g/mL),乙醇濃度為65 %。方差分析各因素與極差分析結果是一致,說明本實驗設計方法合理,操作符合規(guī)范。

    2.2.2 驗證性試驗結果

    為進一步確定山茱萸多糖微波預處理-超聲波提取的最佳工藝條件,在正交試驗基礎上選擇最優(yōu)水平組合:A2B2C2D1,并在此條件下提取山茱萸多糖,平行3 次,多糖提取率平均值為16.83%。

    2.3 山茱萸多糖的穩(wěn)定性研究

    2.3.1 金屬離子對山茱萸多糖的影響

    取4 mL 的多糖溶液6 份,分別加入0.05 mol/L 的KCl、NaCl、CaCl2、AlCl3、FeCl3、CuCl2溶液2 mL,搖勻避光靜置2h,用苯酚-硫酸比色法測其吸光度結果見圖6。

    圖6 金屬離子對多糖穩(wěn)定性的影響Fig.6 Influence of metal ions on polysaccharide stability

    由圖6 可以看出,幾種金屬離子對多糖穩(wěn)定性的影響。K+、Ca2+、Na+離子使多糖吸光度明顯下降,F(xiàn)e3+、Cu2+使吸光度大幅上升,僅有Al3+對吸光度影響不大。說明山茱萸多糖在此條件下可能與K+、Ca2+、Na+、Fe3+、Cu2+發(fā)生了化學反應。

    2.3.2 pH 對山茱萸多糖的影響

    取4mL 的多糖溶液6 份,用0.1mol/LHCl和0.1mol/L NaOH 調節(jié)pH 為2.0、4.0、6.0、8.0、10.0、12.0,避光處理2 h,用苯酚-硫酸比色法測其吸光度。由圖7 可知pH 對山茱萸多糖穩(wěn)定性的影響,在酸性條件下,多糖的吸光度變化較??;而堿性條件下,多糖的吸光度隨著pH 先增后減。由此表明,山茱萸多糖在酸性介質中比較穩(wěn)定,在堿性介質穩(wěn)定性較差。

    圖7 pH 對多糖穩(wěn)定性的影響Fig.7 Influence of pH value on polysaccharide stability

    2.3.3 食品添加劑對山茱萸多糖的影響

    取4 mL 的多糖溶液3 份,分別加入0.05 mol/L 的VC、檸檬酸、苯甲酸鈉2.0 mL,保溫2 h,用苯酚-硫酸比色法測其吸光度。食品添加劑對山茱萸多糖穩(wěn)定性的影響見表4。

    表4 食品添加劑對多糖穩(wěn)定性的影響Table 4 Influence of food additives on polysaccharide stability

    實驗結果表明,苯甲酸鈉的加入對多糖的影響不大,檸檬酸、VC的加入導致吸光度明顯增加,說明這兩種物質對山茱萸多糖的影響較大。

    2.3.4 氧化還原劑對西洋參葉多糖的影響

    取4 mL 的多糖溶液10 份,分別加入濃度為0.02、0.03、0.04、0.05、0.06 mol/L 的H2O2和Na2SO3溶液 各2.0 mL,振蕩避光保存2 h,用苯酚-硫酸比色法測定吸光度。氧化還原劑對山茱萸多糖穩(wěn)定性的影響見圖8。

    圖8 氧化還原劑對多糖穩(wěn)定性的影響Fig.8 Influence of oxidant and reductant on polysaccharide stability

    由圖8 可知,多糖吸光度值隨著氧化還原劑濃度的增大,逐漸降低,說明山茱萸多糖在氧化還原劑中的穩(wěn)定性較差。

    3 結論

    本實驗用微波預處理-超聲波法從山茱萸中提取多糖,其最優(yōu)化工藝條件:超聲時間80 min、溫度60 ℃、料液比1∶14(g/mL),乙醇濃度65%,此工藝下得到的山茱萸多糖提取率為16.83%。與常見的熱水提取法[6]、微波提取法和酶提取法[10-11]相比,該法產(chǎn)率高、方法簡便、節(jié)能環(huán)保。山茱萸多糖在Al3+、苯甲酸鈉及弱酸性溶液中穩(wěn)定性較好;而在K+、Ca2+、Na+、Fe3+、Cu2+、檸檬酸鈉、VC、氧化還原劑中穩(wěn)定性較差。因此在綜合開發(fā)利用山茱萸多糖產(chǎn)品時應注意避免與影響其穩(wěn)定性的物質直接接觸。

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