2007—2012年中國(guó)羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌流行菌株血清型分析

李莉萍，王瑞，黃婷，梁萬(wàn)文，雷愛(ài)瑩，李健，黃維義，唐佳有，施金谷，甘西，陳明、

(1.廣西水產(chǎn)科學(xué)研究院 廣西水產(chǎn)遺傳育種與健康養(yǎng)殖重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，廣西 南寧530021;2.廣西大學(xué) 動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院，廣西南寧530005)

2009—2012年中國(guó)養(yǎng)殖羅非魚(yú)Oreochromis niloticus 大面積暴發(fā)流行鏈球菌病，累計(jì)死亡率為30% ～90%，每年給羅非魚(yú)養(yǎng)殖業(yè)造成經(jīng)濟(jì)損失10 ～15億元，嚴(yán)重影響了該產(chǎn)業(yè)的健康發(fā)展。該病發(fā)病區(qū)域逐年擴(kuò)大，發(fā)病率和死亡率逐年遞增，染病羅非魚(yú)的規(guī)格逐年增大，以前不易感染鏈球菌的魚(yú)苗也出現(xiàn)大批死亡［1-5］。每年都有新的流行病狀出現(xiàn)，從之前感染鏈球菌的羅非魚(yú)出現(xiàn)突眼、游姿異常等癥狀到出現(xiàn)無(wú)任何明顯癥狀即發(fā)生死亡，不同區(qū)域的菌株致病力、藥物敏感性和耐藥性均存在差異［6］。2009年前部分養(yǎng)殖區(qū)域還可以用抗生素控制部分病情，但2010年之后抗生素幾乎不產(chǎn)生實(shí)際效果，多數(shù)養(yǎng)殖戶只能選擇停料處理。疫苗是防治該病的有效途徑，但據(jù)報(bào)道疫苗在不同養(yǎng)殖場(chǎng)使用時(shí)，其免疫保護(hù)率差異較大，有些養(yǎng)殖場(chǎng)的疫苗保護(hù)率僅達(dá)到50%，還有些養(yǎng)殖場(chǎng)完全無(wú)法顯示免疫保護(hù)作用［7-10］。

對(duì)羅非魚(yú)鏈球菌病流行菌株進(jìn)行血清型鑒定有助于掌握病原的起源、分布和傳播等流行病學(xué)信息，科學(xué)地選擇有效的疫苗和防治措施。目前，國(guó)內(nèi)關(guān)于羅非魚(yú)鏈球菌病流行菌株血清型分析的研究較少，郭玉娟等［4］對(duì)2007年、2008年分別從福建省和海南省分離獲得的各2 株無(wú)乳鏈球菌和2009—2010年從廣東省肇慶市8 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)的羅非魚(yú)中分離獲得的21 株無(wú)乳鏈球菌進(jìn)行分子血清型鑒定，結(jié)果全部鑒定為Ⅰa 型;Ye等［11］2009—2010年對(duì)從廣東省5 個(gè)地區(qū)的10 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)和海南省3 個(gè)地區(qū)的6 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)的羅非魚(yú)中分離獲得的14 株無(wú)乳鏈球菌進(jìn)行分子血清型鑒定，結(jié)果同樣全部是Ⅰa 型。上述兩項(xiàng)研究的流行菌株主要集中于部分省市的部分區(qū)域，而羅非魚(yú)鏈球菌病流行情況近些年發(fā)生的巨大變化和區(qū)域差異，提示流行菌株可能存在差異性和多樣性。因此，有必要對(duì)中國(guó)羅非魚(yú)鏈球菌病進(jìn)行更全面的流行菌株分離鑒定及血清型分析。本研究中，采用PCR 方法對(duì)廣西水產(chǎn)遺傳育種與健康養(yǎng)殖重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室2007—2012年從廣西、廣東、海南、福建和云南5 省羅非魚(yú)主養(yǎng)區(qū)145 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)的羅非魚(yú)中分離到的168 株無(wú)乳鏈球菌進(jìn)行血清型分析，旨在掌握羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌流行菌株血清型及流行病學(xué)情況，為該病的防治及疫苗研發(fā)提供科學(xué)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

血平板購(gòu)自鄭州安圖綠科生物工程有限公司;TSB 培養(yǎng)基購(gòu)自杭州微生物試劑有限公司;細(xì)菌DNA 抽提試劑盒為天根生化科技有限公司產(chǎn)品;引物由寶生物工程(大連)有限公司合成;Taq DNA 聚合酶、10 ×buffers、dNTPs、DL2000 Maker均為寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品;Gel -red核酸染料購(gòu)自Biotium 公司。

羅非魚(yú)鏈球菌病流行菌株為廣西水產(chǎn)遺傳育種與健康養(yǎng)殖重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室于2007—2012年從廣西、廣東、海南、福建和云南羅非魚(yú)養(yǎng)殖場(chǎng)的羅非魚(yú)中分離的鏈球菌病流行菌株，經(jīng)生化鑒定及特異性PCR 驗(yàn)證，其中168 株為無(wú)乳鏈球菌，詳細(xì)記錄菌株相關(guān)信息后，于冰箱(-80 ℃)中保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2 方法

細(xì)菌DNA 的抽提:從冰箱中取出無(wú)乳鏈球菌，環(huán)劃線接種于血平板上。待平板上長(zhǎng)出單個(gè)菌落時(shí)，染色鏡檢，確認(rèn)無(wú)污染之后，挑取單個(gè)菌落置于TSB 液體培養(yǎng)基中，于28 ℃下培養(yǎng)24 h，取1.5 mL 菌液，以9000 r/min 離心10 min，棄上清，按細(xì)菌DNA 抽提試劑盒說(shuō)明書(shū)提取菌體DNA，-20 ℃下保存?zhèn)溆谩?/p>

PCR 擴(kuò)增:按文獻(xiàn)［12］中報(bào)道的10種血清型特異性引物序列合成引物(表1)。

表1 無(wú)乳鏈球菌血清型特異性引物序列和PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物片段Tab.1 Sequence of serotype-specific primers and PCR products of amplification in Streptococcus agalactiae

目前報(bào)道的羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌大部分為Ⅰa型，因此，本試驗(yàn)中將所有菌株DNA 先用Ⅰa 血清型引物進(jìn)行擴(kuò)增，Ⅰa 血清型引物擴(kuò)增不出的菌株再用Ⅰb 血清型引物進(jìn)行擴(kuò)增，Ⅰb 血清型引物還未擴(kuò)增出的菌株再用Ⅲ血清型引物進(jìn)行擴(kuò)增，另外再用其余7種血清型引物分別對(duì)所有代表菌株DNA 混合物進(jìn)行擴(kuò)增輔助驗(yàn)證。通過(guò)對(duì)PCR 擴(kuò)增的退火溫度、引物濃度、dNTP 濃度和Taq DNA 聚合酶濃度進(jìn)行優(yōu)化，最終確定PCR 反應(yīng)體系為50 μL，包括:10 × Ex Taq Buffer(Mg2+Plus)5.0 μL，2.5 mmol/L dNTP 2.0 μL，引物各2.0 μL，DNA 模板2.0 μL(約50 ng)，5 U/μL Ex Taq(TaKa-Ra 公司)1.0 μL，ddH2O 36.0 μL。PCR 反應(yīng)條件:94 ℃下預(yù)變性5 min;94 ℃下變性45 s，58 ℃下退火1 min，72 ℃下延伸60 s，共進(jìn)行35 個(gè)循環(huán);最后在72 ℃下再延伸10 min。PCR 陽(yáng)性擴(kuò)增產(chǎn)物送寶生物工程(大連)有限公司進(jìn)行測(cè)序。

2 結(jié)果與分析

2.1 PCR 血清型分析

8 株Ⅰa 血清型代表菌株、6 株Ⅰb 血清型菌株和3 株Ⅲ血清型菌株的特異PCR 擴(kuò)增結(jié)果見(jiàn)圖1。8 株Ⅰa 血清型代表菌株擴(kuò)增出521 bp 的特異性片段(孔1 ～8)，6 株Ⅰb 血清型菌株擴(kuò)增出770 bp特異性片段(孔9 ～14)，3 株Ⅲ血清型菌株擴(kuò)增出1826 bp 特異性片段(孔15 ～17)，空白對(duì)照未擴(kuò)增出條帶(孔18 ～20)，其余7種血清型引物對(duì)所有代表菌株DNA 混合物未擴(kuò)增出條帶(孔21 ～27)。擴(kuò)增目的片段測(cè)序結(jié)果在GenBank 中進(jìn)行Blast 比對(duì)，結(jié)果顯示，測(cè)序結(jié)果與GenBank 中無(wú)乳鏈球菌相應(yīng)基因序列的同源性為99% ～100%。

2.2 各省區(qū)羅非魚(yú)鏈球菌病流行菌株血清型鑒定

經(jīng)過(guò)血清型特異性PCR 分析，168 株羅非魚(yú)鏈球菌病流行菌株中，有159 株為Ⅰa 型，6 株為Ⅰb型，3 株為Ⅲ型。其中2007—2012年從廣西南寧、北海、玉林、柳州、百色、欽州和崇左7 個(gè)地區(qū)50 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)的羅非魚(yú)中分離的61 株無(wú)乳鏈球菌中，有54 株為Ⅰa 型，4 株為Ⅰb 型，3 株為Ⅲ型(表2);2010—2012年從廣東省茂名、湛江、珠海、陽(yáng)江、惠州、汕頭、揭陽(yáng)、高州、化州和肇慶10 個(gè)地區(qū)59 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)的羅非魚(yú)中分離的64 株無(wú)乳鏈球菌中，有63 株為Ⅰa 型，1 株為Ⅰb 型(表3);2009—2012年從海南省臨高、?？凇⑽牟?、澄邁和瓊海5 個(gè)地區(qū)26 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)的羅非魚(yú)中分離的33 株無(wú)乳鏈球菌中，有32 株為Ⅰa 型，1 株為Ⅰb 型(表4);2010年從福建省漳州6 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)的羅非魚(yú)中分離的6 株和2012年從云南省文山4個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)的羅非魚(yú)中分離的4 株無(wú)乳鏈球菌，均為Ⅰa 型(表5和表6)。

圖1 羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌特異性PCR 血清型分析Fig.1 Specific PCR serotype assays of Streptococcus agalactiae isolated from Nile tilapia

3 討論

根據(jù)無(wú)乳鏈球菌莢膜多糖的不同，可以將無(wú)乳鏈球菌分為Ⅰa、Ⅰb、Ⅱ～Ⅷ、dltS 共10種血清型［12］。無(wú)乳鏈球菌傳統(tǒng)血清型鑒定常用蘭氏分類法，根據(jù)抗原與已知血清型抗體反應(yīng)結(jié)果進(jìn)行鑒定，如免疫沉淀、酶免疫測(cè)定、協(xié)同凝集試驗(yàn)、對(duì)流免疫電泳、毛細(xì)管沉淀試驗(yàn)等，這些方法必須有特異性血清抗體且工作量較大［13］。另外，由于莢膜多糖某些基因在不同情況下可能不表達(dá)或表達(dá)量較低，達(dá)不到與抗血清反應(yīng)要求，利用傳統(tǒng)方法鑒定可造成部分無(wú)乳鏈球菌菌株血清型無(wú)法分型;同時(shí)由于缺少魚(yú)類特異性血清而使用人源標(biāo)準(zhǔn)抗血清，并且市場(chǎng)上也僅有6種人用血清型鑒定試劑盒，導(dǎo)致部分魚(yú)源菌株不能與其反應(yīng)，無(wú)法分型［14-15］。隨著分子生物學(xué)的發(fā)展和無(wú)乳鏈球菌全基因組測(cè)序的完成，建立了多種莢膜區(qū)域血清型特異基因的檢測(cè)方法并得到完善和發(fā)展，如PCR［16］、PFGE［17］、mPCR/RLB［18］方法。該類方法可在普通分子實(shí)驗(yàn)室條件下完成，具有分辨率高、特異性強(qiáng)、操作簡(jiǎn)單快速、重復(fù)性好等特點(diǎn)，分型結(jié)果與傳統(tǒng)鑒定方法結(jié)果相符，并且還能鑒定出傳統(tǒng)方法鑒定不出的血清型。其中，PCR 分型方法具有高敏感性，可檢測(cè)出微量的DNA，并且對(duì)DNA 的純度要求沒(méi)有像酶切分析、雜交分析等那樣高，可以直接對(duì)臨床樣品進(jìn)行檢驗(yàn);同時(shí)PCR 引物是化學(xué)合成的，具有穩(wěn)定、可預(yù)測(cè)的特點(diǎn)，易于標(biāo)準(zhǔn)化［19］。Kong等［20］對(duì)206 株無(wú)乳鏈球菌臨床菌株進(jìn)行傳統(tǒng)方法鑒定和PCR 分型比較，傳統(tǒng)方法能夠鑒定出188 株(91.3%)，而PCR 分型可以鑒定出所有菌株，同時(shí)用PCR 分型與傳統(tǒng)方法鑒定的188株菌株血清型完全一致。采用PCR 方法對(duì)羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌進(jìn)行血清型分析，不但操作簡(jiǎn)單快速，而且分析結(jié)果準(zhǔn)確可靠。目前PCR 分型方法主要包含3種技術(shù)，如PCR 加雜交、PCR 加酶切、PCR 加序列分析。本研究中，主要參考Poyart等［12］無(wú)乳鏈球菌血清型多重PCR 分型方法，該方法可檢測(cè)出10種已知血清型。但該文獻(xiàn)并未報(bào)道此多重PCR 的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件，向該文作者咨詢也未予回復(fù)。為保證試驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確可靠，根據(jù)目前報(bào)道的羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌分為3 個(gè)血清型(Ⅰa、Ⅰb和Ⅲ)［21-22］，本試驗(yàn)中對(duì)PCR 反應(yīng)進(jìn)行了合理設(shè)計(jì)和優(yōu)化。所有菌株的DNA 先用Ⅰa型引物擴(kuò)增，Ⅰa 型引物擴(kuò)增不出的菌株再用Ⅰb型引物擴(kuò)增，Ⅰb 型引物還未擴(kuò)增出的菌株再用Ⅲ型引物擴(kuò)增，最后用其余7種血清型引物分別對(duì)所有代表菌株的DNA 混合物擴(kuò)增輔助驗(yàn)證。通過(guò)研究發(fā)現(xiàn)，退火溫度為58 ℃，退火時(shí)間為1 min 時(shí)，3 個(gè)血清型均能擴(kuò)增出特異目的片段，PCR 產(chǎn)物測(cè)序結(jié)果證明，擴(kuò)增條帶為目的序列，證明建立的方法準(zhǔn)確可靠。

表2 2007—2012年從廣西自治區(qū)分離獲得的羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌流行菌株信息表Tab.2 Information on epidemic strains of S.agalactiae isolated from Nile tilapia in Guangxi during 2007—2012

表3 2010—2012年從廣東省分離獲得的羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌流行菌株信息表Tab.3 Information on epidemic strains of S.agalactiae isolated from Nile tilapia in Guangdong Province during 2010—2012

表4 2009—2012年從海南省分離獲得的羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌流行菌株信息表Tab.4 Information on epidemic strains of S.agalactiae isolated from Nile tilapia in Hainan Province during 2009—2012

表5 2010年從福建省分離獲得的羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌流行菌株信息表Tab.5 Information on epidemic strains of S.agalactiae isolated from Nile tilapia in Fujian Province in 2010

表6 2012年從云南省分離獲得的羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌流行菌株信息表Tab.6 Information on epidemic strains of S.agalactiae isolated from Nile tilapia in Yunnan Province in 2012

目前國(guó)外報(bào)道，羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌血清型包括Ⅰa、Ⅰb和Ⅲ共3種血清型且以Ⅰa 型為主，而國(guó)內(nèi)僅報(bào)道1種血清型(Ⅰa)，推測(cè)可能是由于菌株來(lái)源區(qū)域范圍小，菌株分離時(shí)間跨度較窄所致。本試驗(yàn)中收集了從中國(guó)主要羅非魚(yú)養(yǎng)殖區(qū)廣東省10 個(gè)地區(qū)的59 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)，廣西自治區(qū)7 個(gè)地區(qū)的50 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)，海南省5 個(gè)地區(qū)的26 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)，福建省1 個(gè)地區(qū)的6 個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)，云南省1 個(gè)地區(qū)的4個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)的羅非魚(yú)中分離的共168 株羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌進(jìn)行血清型分析，在時(shí)間和地域上均有很好的代表性。鑒定結(jié)果顯示，168 株羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌中，Ⅰa 血清型159 株(占94.64%)，Ⅰb 血清型6 株(占3.57%)，Ⅲ血清型3 株(占1.79%)，與國(guó)外報(bào)道的羅非魚(yú)有Ⅰa、Ⅰb和Ⅲ3種血清型一致。研究結(jié)果表明，中國(guó)羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌主要以Ⅰa 血清型為主。廣東、海南省有Ⅰa、Ⅰb 兩種血清型，廣西自治區(qū)有Ⅰa、Ⅰb和Ⅲ3種血清型，其他省份是否也存在多種血清型還需進(jìn)一步研究。廣東、海南省流行菌株比較穩(wěn)定，除了2010年發(fā)現(xiàn)2 株Ⅰb 型菌株，再?zèng)]有其他新血清型出現(xiàn)。血清型分析主要是針對(duì)細(xì)菌表面某個(gè)成分進(jìn)行的，可以總體了解當(dāng)?shù)亓餍芯晏攸c(diǎn)及發(fā)生變異的速度和頻率，但是中國(guó)羅非魚(yú)鏈球菌病流行情況復(fù)雜，新病情不斷出現(xiàn)，相同血清型菌株的抗原性及耐藥性可能存在較大差異。因此，在對(duì)菌株進(jìn)行血清型鑒定之后，還可利用分辨率更高的分型技術(shù)，如PFGE 技術(shù)，對(duì)這些流行菌株進(jìn)行分型，獲得菌株之間更細(xì)微的差異信息，同時(shí)與血清型分型結(jié)果進(jìn)行比較分析，進(jìn)一步明確感染來(lái)源和暴發(fā)因素，分析流行規(guī)律和特點(diǎn)，為預(yù)防控制該病及篩選疫苗候選菌株提供參考［23-27］。

廣西自治區(qū)的中國(guó)羅非魚(yú)產(chǎn)量位居全國(guó)第三，近年來(lái)也一直深受鏈球菌危害。從2007—2009年，廣西只有Ⅰb 血清型，2010年出現(xiàn)Ⅰa 血清型，2011年出現(xiàn)Ⅲ血清型，新血清型出現(xiàn)間隔時(shí)間較短。廣西北海市從2007—2012年短短6年時(shí)間，出現(xiàn)3種血清型。特別值得注意是，在同一個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)、同樣的時(shí)間內(nèi)，可分離到2種不同血清型菌株(GX033和GX034)。北海市作為廣西自治區(qū)羅非魚(yú)養(yǎng)殖的主要地區(qū)，與廣東、海南兩省相鄰，養(yǎng)殖苗種多從這兩省購(gòu)進(jìn)，同時(shí)又自繁部分苗種，伴隨養(yǎng)殖環(huán)境惡化、養(yǎng)殖密度增加、抗生素濫用，大大增加了流行菌株發(fā)生變異的可能性，導(dǎo)致血清型呈現(xiàn)多樣性。研究證實(shí)，無(wú)乳鏈球菌可在人、奶牛、小鼠、蜥蜴和羅非魚(yú)間進(jìn)行交叉感染，人和奶牛的無(wú)乳鏈球菌都可以感染魚(yú)［28-30］。羅非魚(yú)鏈球菌也嚴(yán)重威脅到人類健康與安全。截至目前，在北美和亞洲已有9 例羅非魚(yú)海豚鏈菌感染人的病例報(bào)道，感染途徑均是患者直接接觸發(fā)病羅非魚(yú)引起［31］。從2012年廣西柳州市，分離到一株Ⅲ型菌株，與北海市不同，柳州市苗種引進(jìn)比較單一，離其他羅非魚(yú)主養(yǎng)區(qū)較遠(yuǎn)，理論上其血清型應(yīng)該比較單一，但實(shí)際上并非如此。據(jù)調(diào)查，距離該菌株來(lái)源的羅非魚(yú)養(yǎng)殖場(chǎng)100 米處有一個(gè)奶牛場(chǎng)，而牛無(wú)乳鏈球菌主要血清型正是Ⅲ型［18］，因此，可能是通過(guò)人員流動(dòng)或水流把人、牛源的Ⅲ型無(wú)乳鏈球菌傳染給了羅非魚(yú)。究竟是無(wú)乳鏈球菌在魚(yú)體內(nèi)進(jìn)行重組產(chǎn)生變異還是來(lái)源于人、牛源無(wú)乳鏈球菌，還需要進(jìn)一步試驗(yàn)驗(yàn)證。但由此可能引發(fā)的公共衛(wèi)生事件，卻值得我們提高警惕，如國(guó)內(nèi)暴發(fā)的禽流感［32-34］、豬鏈球菌感染人［35-37］事例，都是菌株在長(zhǎng)期進(jìn)化過(guò)程中適應(yīng)環(huán)境發(fā)生變異進(jìn)而引發(fā)人畜共患。因此，對(duì)羅非魚(yú)鏈球菌病流行病學(xué)進(jìn)行深入研究，密切注意鏈球菌流行菌株的變化情況，及時(shí)掌握菌株來(lái)源和傳播途徑，不但對(duì)羅非魚(yú)鏈球菌病防治具有重要意義，也為公共衛(wèi)生建設(shè)和未來(lái)應(yīng)對(duì)可能由鏈球菌引起的突發(fā)事件提供參考依據(jù)。

［1］柴家前，丁巧玲，王振龍，等.羅非魚(yú)鏈球菌的分離鑒定［J］.中國(guó)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào)，2002，24(1):18 -20.

［2］甘西，陳明，余曉麗，等.羅非魚(yú)海豚鏈球菌16S rRNA 基因的序列測(cè)定和系統(tǒng)進(jìn)化分析［J］.水產(chǎn)學(xué)報(bào)，2007，31(5):618 -623.

［3］祝璟琳，楊弘，鄒芝英，等.海南養(yǎng)殖羅非魚(yú)(Oreochromis niloticus)致病鏈球菌的分離、鑒定及其藥敏試驗(yàn)［J］.海洋與湖沼，2010，41(4):590 -596.

［4］郭玉娟，張德鋒，樊海平，等.中國(guó)南方地區(qū)羅非魚(yú)無(wú)乳鏈球菌的分子流行病學(xué)研究［J］.水產(chǎn)學(xué)報(bào)，2012，36(3):399 -406.

［5］Chen M，Li L P，Wang R，et al.PCR detection and PFGE genotype analyses of streptococcal clinical isolates from tilapia in China［J］.Veterinary Microbiology，2012，159(3/4):526 -530.

［6］柯劍，趙飛，羅理，等.廣東省羅非魚(yú)主養(yǎng)區(qū)無(wú)乳鏈球菌的分離、鑒定與致病性［J］.廣東海洋大學(xué)學(xué)報(bào)，2010，30(3):22 -27.

［7］Pretto-Giordano L G，Müller E E，Klesius P，et al.Efficacy of an experimentally inactivated Streptococcus agalactiae vaccine in Nile tilapia(Oreochromis niloticus)reared in Brazil［J］.Aquaculture Research，2010，14(10):1539 -1544.

［8］Chen M，Wang R，Li L P，et al.Screening vaccine candidate strains against Streptococcus agalactiae of tilapia based on PFGE genotype［J］.Vaccine，2012，30(42):6088 -6092.

［9］Evans J J，Klesius P H，Shoemaker C A，et al.Streptococcus agalactiae vaccination and infection stress in Nile tilapia，Oreochromis niloticus［J］.J Appl Aquacult，2004，16(3/4):105 -115.

［10］Evans J J，Shoemaker C A，Klesius P H.Efficacy of Streptococcus agalactiae(Group B)vaccine in tilapia(Oreochromis niloticus)by intraperitoneal and bath immersion administration［J］.Vaccine，2004，22(27/28):3769 -3777.

［11］Ye X，Li J，Lu M X，et al.Identification and molecular typing of Streptococcus agalactiae isolated from pond - cultured tilapia in China［J］.Fisheries Science，2011，77(4):623 -632.

［12］Poyart C，Tazi A，Reglier -Poupet H，et al.Multiplex PCR assay for rapid and accurate capsular typing of group B streptococci［J］.Journal of Clinical Microbiology，2007，45(6):1985-1988.

［13］Chaffin D O，Beres S B，Yim H H，et al.The serotype of type Ⅰa and Ⅲgroup B streptococci is determined by the polymerase gene within the polycistronic capsule operon［J］.J Bacteriol，2000，182(16):4466 -4477.

［14］Persson E，Berg S，Trollfors B，et al.Serotypes and clinical manifestations of invasive group B streptococcal infections in western Sweden 1998 -2001［J］.Clin Microbiol Infect，2004，10(9):791 -796.

［15］Slotved H C，Kong F，Lambertsen L，et al.Serotype IX，a proposed new Streptococcus agalactiae serotype［J］.J Clin Microbiol，2007，45(9):2929 -2936.

［16］Mawn J A，Simpson A J，Heard S R.Detection of the C protein gene among group B streptococci using PCR［J］.J Clin Pathol，1993，46(7):633 -636.

［17］Gordillo M E，Singh K V，Baker C J.Typing of group B streptococci:comparison of pulsed - field gel electrophoresis and conventional electrophoresis［J］.Journal of Clinical Microbiology，1993，31(6):1430 -1434.

［18］Zhao Z，Kong F，Martinez G，et al.Molecular serotype identification of Streptococcus agalactiae of bovine origin by multiplex PCR-based reverse line blot(mPCR/RLB)hybridization assay［J］.FEMS Microbiol Lett，2006，263(2):236 -239.

［19］宋程，陳小玲.PCR 技術(shù)用于病原微生物的血清型鑒定研究進(jìn)展［J］.中國(guó)獸藥雜志，2001，35(1):56 -59.

［20］Kong F，Gowan S，Martin D，et al.Serotype identification of group B streptococci by PCR and sequencing［J］.J Clin Microbiol，2002，40(1):216 -226.

［21］Vandamme P，Devriese L A，Pot B，et al.Streptococcus difficile is a nonhemolytic group B，type Ⅰb Streptococcus［J］.Int J Syst Bacteriol，1997，47(1):81 -85.

［22］Naraid S，F(xiàn)anrong K，Gwendolyn L G，et al.Occurrence of rare genotypes of Streptococcus agalactiae in cultured red tilapia Oreochromis sp.and Nile tilapia O.niloticus in Thailand-relationship to human isolates?［J］Aquaculture，2008，284(1/4):35 -40.

［23］Bannerman T，Hancock G.Pulsed-Field gel electrophoresis as a replacement for bacteriophage typing of Staphylococcus aureus［J］.J Clin Microbiol，1995，33(3):551 -555.

［24］黃彥，孫貴娟，唐振柱，等.出血性大腸桿菌O157:H7 的脈沖場(chǎng)凝膠電泳分型方法研究［J］.應(yīng)用預(yù)防醫(yī)學(xué)，2007，13(1):19 -22.

［25］Schlichting C，Branger C.Typing of Staphylococcus aureus by pulsed - field gel electrophoresis，zymotyping，capsular typing，and phage typing:resolution of clonal relationships［J］.J Clin Microbiol，1993，31(2):227 -232.

［26］Harrell L，Andersen G.Genetic variability of Bacillus anthracis and related species［J］.J Clin Microbiol，1995，33(7):1847 -1850.

［27］Murayama O，Matsuda M，Moore J E.Studies on the genomic heterogeneity of Micrococcus luteus strains by macro - restriction analysis using pulsed-field gel electrophoresis［J］.J Basic Microbiol，2003，43(4):337 -340.

［28］Evans J J，Klesius P H，Pasnik D J，et al.Human Streptococcus agalactiae isolate in Nile tilapia(Oreochromis niloticus)［J］.Emerg Infect Dis，2009，15(5):774 -776.

［29］Pereira U P，Mian G F，Oliveira I C，et al.Genotyping of Streptococcus agalactiae strains isolated from fish，human and cattle and their virulence potential in Nile tilapia［J］.Vet Microbiol，2010，140(1/2):186 -192.

［30］Hetzel U，Konig A，Yildirim A O，et al.Septicaemia in emerald monitors(Varanus prasinus Schlegel 1839)caused by Streptococcus agalactiae acquired from mice［J］.Vet Microbiol，2003，95(4):283 -293.

［31］Lau S K，Woo P C，Luk W K，et al.Clinical isolates of Streptococcus iniae from Asia are more mucoid and beta - hemolytic than those from North America［J］.Diagn Microbiol Infect Dis，2006，54(3):177 -181.

［32］Kwon Y K，Sung H W，Joh S J，et al.An outbreak of highly pathogenic avian influenza subtype H5N1 in broiler breeders，Korea［J］.J Vet Med Sci，2005，67(11):1193 -1195.

［33］郭元吉，李建國(guó)，程小斐，等.禽H9N2 亞型流感病毒能感染人的發(fā)現(xiàn)［J］.中華實(shí)驗(yàn)和臨床病毒學(xué)雜志，1999，13:105 -108.

［34］Subbarao K，Klimov A，Katz J，et al.Characterization of an avian influenza A(H5N1)virus isolated from a child with a fatal respiratory illness［J］.Science，1998，279:393 -396.

［35］楊維中，余宏杰，景懷琦，等.四川省一起伴中毒性休克綜合征的人感染豬鏈球菌2 型暴發(fā)［J］.中華流行病學(xué)雜志，2006，27(3):185 -191.

［36］祝小平，祖榮強(qiáng)，陳志海，等.四川省人感染豬鏈球菌病死亡病例特征分析［J］.中華流行病學(xué)雜志，2005，26(9):633 -635.

［37］姚火春，陳國(guó)強(qiáng)，陸承平.豬鏈球菌1998 分離株病原特性鑒定［J］.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)，1999，22(2):67 -70.