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    當(dāng)歸新病害
    ——炭疽病病原鑒定及發(fā)病規(guī)律研究

    2014-01-02 11:37:36卞靜陳泰祥陳秀蓉王涵琦楊小利王艷
    草業(yè)學(xué)報(bào) 2014年6期
    關(guān)鍵詞:炭疽病分生孢子莖稈

    卞靜,陳泰祥,陳秀蓉*,王涵琦,楊小利,王艷,2

    (1.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)草業(yè)學(xué)院,草業(yè)生態(tài)系統(tǒng)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,中-美草地畜牧業(yè)可持續(xù)發(fā)展研究中心,甘肅 蘭州730070;2.甘肅中醫(yī)學(xué)院藥學(xué)系,甘肅 蘭州730000)

    當(dāng)歸(Angelicasinensis)屬傘形科當(dāng)歸屬,其干燥的貯藏根是我國(guó)一味常用中藥材,味苦、辛,性溫,藥用歷史悠久,在方劑中的應(yīng)用頻度甚高,素有“十藥九歸”之稱[1]。由于其藥用價(jià)值以及保健價(jià)值得到了廣泛的認(rèn)可,因此在全國(guó)范圍內(nèi)的種植面積逐漸擴(kuò)大,主產(chǎn)于甘肅、四川、云南等省,陜西、貴州、湖北等省也有生產(chǎn),尤以甘肅的產(chǎn)量最大,年均種植5400hm2,總產(chǎn)量12000多噸,占全國(guó)總產(chǎn)量的70%以上,外銷(xiāo)量占全國(guó)總銷(xiāo)量的90%以上,國(guó)內(nèi)銷(xiāo)售量占全國(guó)當(dāng)歸總產(chǎn)量的70%以上[2]。

    關(guān)于當(dāng)歸病害國(guó)內(nèi)報(bào)道有腐爛莖線蟲(chóng)(麻口)病、根腐病、褐斑病、菌核病、銹病和白粉病6種[3-7],近年來(lái)甘肅省由于種植面積擴(kuò)大,病害逐年加重,其中當(dāng)歸腐爛莖線蟲(chóng)(麻口)病和根腐病已成為造成當(dāng)歸產(chǎn)量下降,品質(zhì)變劣的主要因素之一。2012年筆者在甘肅省當(dāng)歸病害調(diào)查中發(fā)現(xiàn),在甘肅省定西市渭源縣、岷縣、漳縣等當(dāng)歸種植區(qū),自7月初開(kāi)始可見(jiàn),在當(dāng)歸植株的中、下部葉片干枯死亡現(xiàn)象較普遍,根據(jù)癥狀,初步認(rèn)為可能是當(dāng)歸炭疽病,但查閱資料,未見(jiàn)有關(guān)此病的報(bào)道。2013年經(jīng)系統(tǒng)調(diào)查發(fā)現(xiàn),8月初以后癥狀表現(xiàn)明顯,發(fā)病普遍,如渭源縣會(huì)川鎮(zhèn)發(fā)病率約為44%、漳縣大草灘約為55%、岷縣麻子川約為65%,至9月中旬則均達(dá)到100%,但各地不同地塊嚴(yán)重程度有差異,因此,筆者對(duì)其病害癥狀、病原特征、生物學(xué)特性以及發(fā)病規(guī)律、傳播方式及條件等進(jìn)行了較系統(tǒng)的研究。本研究?jī)H報(bào)道病害癥狀、病原學(xué)鑒定以及發(fā)病規(guī)律、傳播方式及條件等方面的研究,旨意為此病的防治提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    1.1.1 供試培養(yǎng)基 馬鈴薯葡萄糖瓊脂(PDA)培養(yǎng)基:馬鈴薯200g,葡萄糖20g,瓊脂15g,蒸餾水1000mL,pH自然。

    當(dāng)歸汁液培養(yǎng)基:當(dāng)歸葉10g,瓊脂15g,蒸餾水1000mL,pH自然。

    馬鈴薯瓊脂蔗糖培養(yǎng)基(PSA)培養(yǎng)基:馬鈴薯200g,蔗糖20g,瓊脂15g,蒸餾水1000mL,pH自然。

    察氏培養(yǎng)基:NaNO32g、KCl 0.5g、FeSO40.01g、K2HPO 41.0g、MgSO4·7H2O 0.5g、瓊脂15g、蔗糖30 g、蒸餾水1000mL。

    1.1.2 供試儀器 主要儀器有NIKON光學(xué)顯微鏡,NIKON圖像分析系統(tǒng),BI-2000圖像分析系統(tǒng),Bioneer水平凝膠電泳裝置,Bioneer PCR熱循環(huán)儀,Bioneer凝膠成像系統(tǒng),Biometra高速冷凍離心機(jī),pHS-3C精密數(shù)顯酸度計(jì)、Apresys溫濕度記錄儀等。

    1.1.3 供試試劑 主要試劑有Rnase,Proteinase K,PCR Master Mix,Marker購(gòu)于上海生工生物技術(shù)公司,通用引物ITS1(5′-TCC GTA GGT GAA CCT GCG G-3′),ITS4(5′-TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC-3′)由上海生工生物技術(shù)公司合成。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 采樣時(shí)間和方法 于2012年7,8月至2013年7,8月由甘肅省定西市渭源縣、漳縣、岷縣各當(dāng)歸主產(chǎn)區(qū)調(diào)查發(fā)病率和嚴(yán)重度,同時(shí)進(jìn)行癥狀描述,并采集典型病株,備用。

    1.2.2 病原菌分離純化 采用常規(guī)組織分離法,將典型病株莖部切成0.4cm見(jiàn)方小塊,用1%的升汞消毒1 min,無(wú)菌水沖洗3次,分別置PDA、PSA、察氏和當(dāng)歸汁液平板培養(yǎng)基上,每皿接種5塊,置25℃下培養(yǎng)7d后純化,編號(hào),置4℃保存?zhèn)溆茫?]。

    1.2.3 致病性測(cè)定 當(dāng)歸種子浸泡后,盆栽育苗,待植株長(zhǎng)到約20cm高,并長(zhǎng)出5個(gè)莖稈以上時(shí),進(jìn)行致病性測(cè)定[9-10]。采用針刺法接種,即用針輕輕刺傷健康的當(dāng)歸植株的莖基部,將當(dāng)歸汁液培養(yǎng)基培養(yǎng)的純菌種,配制成分生孢子濃度為3×106個(gè)/mL懸浮液澆灌于刺傷部位,用蘸滅菌水的棉球包在接種部位保濕,同時(shí)以刺傷健康植株澆灌無(wú)菌水后保濕作為對(duì)照,處理與對(duì)照均接種10株,保濕24h后,置于室溫下,每隔2d觀察其發(fā)病情況。待發(fā)病后對(duì)其病株進(jìn)行鏡檢和再分離,并計(jì)算發(fā)病率。

    1.3 病原菌的鑒定

    1.3.1 病原菌的形態(tài)學(xué)鑒定 將分別在PDA、PSA、察氏和當(dāng)歸汁液4種平板培養(yǎng)基保存的菌株轉(zhuǎn)接后,置25℃下培養(yǎng),7d后觀察菌落性狀,鏡檢菌絲顏色、分生孢子盤(pán)、分生孢子形態(tài),觀察是否產(chǎn)生剛毛,測(cè)量100個(gè)分生孢子及50個(gè)分生孢子盤(pán)的大小及剛毛的長(zhǎng)度,并顯微拍照,根據(jù)病原形態(tài)、大小,查閱相關(guān)資料進(jìn)行病原鑒定[11-12]。

    1.3.2 病原菌的rDNA-ITS序列分析 將菌株轉(zhuǎn)接到PDA平板培養(yǎng)基上培養(yǎng)7d后,挑取菌絲塊接入PDA液體培養(yǎng)基中,置25℃,120r/min的恒溫振蕩箱培養(yǎng)7d,用滅菌的紗布過(guò)濾后,再用無(wú)菌水沖洗2~3次,然后用濾紙吸干水分,保存?zhèn)溆茫瑓⒖紡埧≈遥?3]的方法提取 DNA。參考相關(guān)文獻(xiàn)[14-17],選擇ITS1(5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′)和ITS4(5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′)作為擴(kuò)增引物,由上海生物公司合成引物。PCR反應(yīng)在PCR擴(kuò)增儀上進(jìn)行,PCR反應(yīng)體系為50μL,PCR反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性3min,循環(huán)1次;95℃變性30s,55℃退火30s,72℃延伸1min,循環(huán)30次;最后72℃延伸10min。用1%瓊脂糖凝膠電泳對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行檢測(cè)。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用上海生物公司提供的試劑盒進(jìn)行純化,并由其對(duì)純化產(chǎn)物直接測(cè)序。將序列與GenBank中相關(guān)數(shù)據(jù)進(jìn)行同源性分析,并構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。

    1.4 發(fā)病規(guī)律研究

    1.4.1 侵入途徑 盆栽當(dāng)歸苗,選擇高約20cm,分支多于5個(gè)莖稈的健株用于試驗(yàn)。將純培養(yǎng)的菌株配成濃度為3×106個(gè)/mL的菌懸液,分別采用針刺、灌根和噴霧3種方式進(jìn)行接種,每處理10株。針刺接種:即用滅菌的細(xì)昆蟲(chóng)針在莖基部輕微刺傷,將菌懸液澆灌于刺傷部位,用棉球蘸取無(wú)菌水保濕接種部位,同時(shí)以針刺莖基部,用無(wú)菌水澆灌刺傷部位并保濕的植株作為對(duì)照;灌根接種:即直接將菌懸液灌入根部,以無(wú)菌水澆灌的植株為對(duì)照;噴霧處理:即將菌懸液均勻噴灑于整株植物,并套塑料袋保濕,同時(shí)以噴無(wú)菌水同樣保濕植株為對(duì)照,以上處理均保濕24h后置于室溫下,觀察其發(fā)病情況,統(tǒng)計(jì)不同接種方式的發(fā)病率,確定該病原菌的侵入途徑。

    1.4.2 田間發(fā)病進(jìn)程 2013年在甘肅省渭源縣會(huì)川鎮(zhèn)新城村唐家灘發(fā)病田塊進(jìn)行發(fā)病規(guī)律調(diào)查,自8月11日起,每7d定點(diǎn)調(diào)查1次,共調(diào)查7次,每次隨機(jī)調(diào)查100株,觀察發(fā)病進(jìn)程,統(tǒng)計(jì)每株當(dāng)歸植株莖稈的發(fā)病率及嚴(yán)重度,計(jì)算病情指數(shù)。病害分級(jí)標(biāo)準(zhǔn),查閱相關(guān)資料[18]制定如下:0級(jí):無(wú)??;1級(jí):輕微發(fā)病,莖稈上有零星病斑,病斑面積占莖稈表面積的5%以下;3級(jí):輕度發(fā)病,病斑面積占莖稈表面積的6%~50%;5級(jí):中等發(fā)病,病斑面積占莖稈表面積的50%以上;7級(jí):高度發(fā)病,50%以上的莖稈枯死發(fā)黑;9級(jí):嚴(yán)重發(fā)病,整株枯死,并在莖稈上密生小黑點(diǎn)。

    1.4.3 病害與溫、濕度的相關(guān)性 在發(fā)病規(guī)律調(diào)查田塊放置Apresys自記溫濕度記錄儀,設(shè)置每h記錄1次田間,自動(dòng)測(cè)定田間小氣候溫、濕度變化情況,做出日均氣溫、濕度變化曲線,結(jié)合發(fā)病率及嚴(yán)重度調(diào)查結(jié)果進(jìn)行回歸分析[19],作出回歸方程,分析病害發(fā)生情況與田間溫濕度的相關(guān)性。

    1.5 統(tǒng)計(jì)分析

    采用Excel 2003和DPS 6.55軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)及方差分析。

    2 結(jié)果與分析

    圖1 病害癥狀Fig.1 Disease of symptoms

    2.1 病害癥狀

    2012年至2013年田間調(diào)查結(jié)果表明,此病一般在6月中、下旬開(kāi)始發(fā)生,8月下旬到9月上旬達(dá)到發(fā)病高峰,該病害主要危害植株莖稈。如圖1所示,發(fā)病初期先在植株外部莖稈上出現(xiàn)淺褐色病斑,隨后病斑逐漸擴(kuò)大,形成深褐色長(zhǎng)條形病斑,葉片變黃枯死,莖稈從外向內(nèi)逐漸干枯死亡,后期在病斑上出現(xiàn)黑色小顆粒,即病原菌的分生孢子盤(pán),最后整株枯死。

    2.2 致病性測(cè)定

    挑選典型純化菌株(編號(hào)T1),針刺接種到健康的當(dāng)歸植株20d后,植株均陸續(xù)開(kāi)始發(fā)病,而對(duì)照未發(fā)?。▓D2a)。鏡檢莖稈上的小黑點(diǎn),均為已形成的分生孢子盤(pán),與病株上的分生孢子盤(pán)形態(tài)一致(圖2b,c)。對(duì)發(fā)病植株進(jìn)行再分離,獲得菌株的培養(yǎng)形狀、分生孢子形態(tài)與原接種菌株一致,因此可確定該菌株為致病菌。

    2.3 病原菌的鑒定

    2.3.1 病原菌培養(yǎng)性狀 分別在4種培養(yǎng)基上培養(yǎng),菌落形態(tài)及顏色有差異,如圖3所示,在PDA、PSA和當(dāng)歸浸汁液培養(yǎng)基菌落生長(zhǎng)速度沒(méi)有明顯差異,菌落初期均為白色,后期在PDA上菌落變?yōu)楹谏赑SA上菌落變?yōu)楹诤稚?,在?dāng)歸汁液培養(yǎng)基上菌落則為白色,菌絲稀疏且產(chǎn)生大量灰黑色小顆粒,而在PDA、PSA培養(yǎng)基均未見(jiàn)小顆粒;在察氏培養(yǎng)基上菌落為白色,菌絲稀疏,生長(zhǎng)速率明顯低于其他3種,也未見(jiàn)小顆粒。鏡檢培養(yǎng)的組織,在察氏和PDA培養(yǎng)基的組織,僅看到菌絲而未見(jiàn)分生孢子;在PSA培養(yǎng)基上雖能產(chǎn)生孢子但數(shù)量很少,未見(jiàn)分生孢子盤(pán);僅在當(dāng)歸浸汁液上鏡檢到大量的分生孢子,并且產(chǎn)生分生孢子盤(pán),因此,當(dāng)歸浸汁液培養(yǎng)基為病原菌生長(zhǎng)的適宜培養(yǎng)基。

    圖2 致病性測(cè)定Fig.2 Results of pathogenicity identification

    圖3 不同培養(yǎng)基上的菌落形態(tài)Fig.3 Colonies on the different media forms

    圖4 形態(tài)學(xué)鑒定Fig.4 Results of morphological identification

    2.3.2 病原菌形態(tài)學(xué)特征 鏡檢和測(cè)量當(dāng)歸培養(yǎng)基上的菌絲、分生孢子、分生孢子盤(pán)以及剛毛。結(jié)果表明,菌絲無(wú)色,有隔膜具分枝;分生孢子盤(pán)為黑褐色,大小為50~400μm,周?chē)泻谏珓偯?,剛毛長(zhǎng)度為45~200μm,頂端尖基部寬4~8μm,有0~7個(gè)隔膜;分生孢子有2種形態(tài),一種孢子為新月形,兩端尖,無(wú)色透明,單胞,中間有一個(gè)油球,孢子大小為(18.0~24.5)×(3.5~5.0)μm,另一種孢子為卵圓形或橢圓形,無(wú)色透明,單胞,孢子大小為(9.7~16.5)×(2.5~4.0)μm(圖4)。查閱相關(guān)文獻(xiàn)資料[17],初步確定該病病原菌為半知菌亞門(mén)腔孢綱黑盤(pán)孢目炭疽菌屬的束狀炭疽菌(Colletotrichumdematium,Grove)。

    2.3.3 病原菌的rDNA-ITS序列分析 將菌株的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物測(cè)序、校對(duì)、剪切和拼接,獲得全長(zhǎng)550 bp序列 (圖5)。將序列與GenBank中相關(guān)數(shù)據(jù)進(jìn)行同源性分析,并構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)(圖6),結(jié)果表明,該菌的ITS與已登錄的Colletotrichumdematium的ITS同源性均為99%。

    圖5 PCR電泳檢測(cè)結(jié)果Fig.5 Electrophoresis results of PCR

    綜合上述形態(tài)學(xué)和ITS序列鑒定,結(jié)果表明,甘肅省當(dāng)歸炭疽病病原菌為束狀炭疽菌(Colletotrichum dematium,Grove)。

    2.4 發(fā)病規(guī)律研究

    2.4.1 侵入途徑 采用3種不同方式接種健株,15d后針刺接種的植株先發(fā)病,最初在莖部產(chǎn)生淺褐色病斑,后逐漸擴(kuò)大形成深褐色條形病斑,葉片逐漸枯死,造成植株干枯死亡,莖部產(chǎn)生小黑點(diǎn);18d后灌根的植株開(kāi)始發(fā)病,癥狀與針刺接種的相同;20d后噴霧處理的植株開(kāi)始發(fā)病,但發(fā)病率略低于其他兩種處理,癥狀同針刺接種的。30d后統(tǒng)計(jì)發(fā)病率,結(jié)果表明,針刺接種10株全部發(fā)病;灌根接種10株,8株發(fā)??;噴霧接種10株,5株發(fā)病;對(duì)照株均未發(fā)?。▓D7)。以上結(jié)果說(shuō)明,該病原菌可通過(guò)植物傷口、根部及地上部分自然孔口或直接侵入危害,傷口有利于病原菌的侵入。

    圖6 T1菌株的rDNA系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)Fig.6 rDNA phylogenetic tree of strain T1

    圖7 室內(nèi)盆栽傳播方式Fig.7 The mode of transmission of indoor plants

    2.4.2 田間發(fā)病進(jìn)程 6月調(diào)查時(shí),田間僅有零星發(fā)病,但癥狀不典型,也未見(jiàn)病癥,不能確定為炭疽病危害所致。進(jìn)入8月,出現(xiàn)典型癥狀后開(kāi)始進(jìn)行發(fā)病進(jìn)程調(diào)查。由圖8可以看出,從6月開(kāi)始發(fā)病到8月11日調(diào)查時(shí),田間發(fā)病率和病情指數(shù)分別為44%和24%,隨后發(fā)病率穩(wěn)定增長(zhǎng),9月1日,發(fā)病率已高達(dá)87%,僅僅20d的時(shí)間,發(fā)病率增長(zhǎng)了43%,到9月15日發(fā)病率已達(dá)到100%;病情指數(shù)在8月11日至8月25日近半個(gè)月的時(shí)間增長(zhǎng)了15%,而從8月25日到9月1日僅僅6d時(shí)間,病情指數(shù)高達(dá)68%,隨后病情增加緩慢,9月15日后病情指數(shù)不再增加,由此可見(jiàn),8月11日至9月初是病害普遍發(fā)生時(shí)期,8月下旬病害嚴(yán)重度顯著加重,這與該時(shí)間段田間的溫濕度有一定的關(guān)系。

    2.4.3 病害發(fā)生與溫度、濕度的相關(guān)性 經(jīng)調(diào)查,試驗(yàn)地塊的日均氣溫變化見(jiàn)圖9,夜間平均氣溫變化見(jiàn)圖10。由圖9可見(jiàn),從8月13日至9月23日測(cè)定的43 d中,日均氣溫為10~27℃,夜間平均氣溫則為5~15℃。而在8月13日至9月1日中,發(fā)病率不斷增長(zhǎng)時(shí),白天日均氣溫為16~25℃,有利于病害的發(fā)生,與筆者測(cè)定病菌生長(zhǎng)對(duì)溫度的要求一致。

    圖8 田間發(fā)病進(jìn)程Fig.8 The pathogenesis regularity in the field

    經(jīng)調(diào)查,試驗(yàn)地塊的日均濕度變化見(jiàn)圖11,夜間平均濕度變化見(jiàn)圖12。在8月13日至9月23日調(diào)查的43d中,日均濕度高于90%的有27d,夜間平均濕度高于95%的共有40d,可見(jiàn)該地區(qū)相對(duì)濕度普遍高,有利于病害發(fā)生,特別是8月25日后,日、夜?jié)穸让黠@增高,日均濕度為87%~100%,而夜間平均濕度則均高達(dá)95%~100%,這與筆者測(cè)定的病原菌孢子萌發(fā)需要95%以上相對(duì)濕度相一致,此時(shí)濕度有利于病菌孢子的萌發(fā)和生長(zhǎng),加重了危害。

    圖9 日均氣溫變化Fig.9 Changes of daily average temperature

    圖10 夜間平均氣溫變化Fig.10 Changes of average temperature at night

    圖11 日均濕度變化Fig.11 Changes of daily average humidity

    圖12 夜間平均濕度變化Fig.12 Changes of average humidity at night

    采用DPS 6.55軟件對(duì)當(dāng)歸炭疽病的病情指數(shù)與平均氣溫、平均相對(duì)濕度等進(jìn)行回歸分析。其相關(guān)性分別可用以下回歸方程表述:Y=2.362X1-1.536,r1=0.907;Y=2.230X2-1.192,r2=0.942。Y=0.629X1+0.746X2-22.976,r=0.986。Y為病情指數(shù);X1為平均氣溫;X2為平均相對(duì)濕度;r1為病情指數(shù)與平均氣溫的相關(guān)系數(shù),r2為病情指數(shù)與平均相對(duì)濕度的相關(guān)系數(shù)?;貧w分析表明,田間當(dāng)歸炭疽病的病情指數(shù)與平均氣溫、平均相對(duì)濕度之間存在著極顯著的相關(guān)性。r為平均氣溫和平均相對(duì)濕度同時(shí)與病情指數(shù)的相關(guān)系數(shù),因此從影響程度來(lái)看,病情指數(shù)受濕度影響大于溫度的影響,與室內(nèi)生物學(xué)特性測(cè)定相一致。

    3 討論

    3.1 當(dāng)歸炭疽病及其病原

    查閱相關(guān)資料[20-21],當(dāng)歸屬植物的炭疽病在國(guó)外有報(bào)道,分別危害當(dāng)歸屬中的白芷(Angelicadahurica)和川姜活(Angelicasylvestris),而當(dāng)歸炭疽病在國(guó)內(nèi)僅有1次簡(jiǎn)單報(bào)道[22],但其病原與本研究不是同一個(gè)屬,且未進(jìn)行詳細(xì)的鑒定及研究,查閱其病原分子序列與Colletotrichumdematium沒(méi)有相似性,國(guó)外則未見(jiàn)報(bào)道。因此本研究系首次報(bào)道。據(jù)報(bào)道[23-25],炭疽菌屬的成員寄主范圍廣,它們可寄生或腐生于不同科屬植物上,如束狀炭疽菌可侵染葡萄(Vitisvinifera)、蘿卜(Raphanussativus)、薯芋(Dioscoreagrandifolia)、大麗花(Dahliapinnata)、知母(Dahliapinnata)、枸杞(Lyciumchinense)、玉竹(Polygonatumodratum)、菠菜(Spinaciaoleracea)以及曼陀羅(Daturastramonium)等不同科屬植物,引起炭疽病。而Grove[27]報(bào)道,束狀炭疽菌僅寄生在枯死的莖稈和葉片,但本研究表明,將當(dāng)歸炭疽病菌接種當(dāng)歸健株,引起發(fā)病較重,田間調(diào)查亦表明,此菌危害當(dāng)歸后,發(fā)病普遍且較重,可見(jiàn)此菌的致病性較強(qiáng),與Grove[27]報(bào)道的有差異。另外,楊連娟和徐紅[28]報(bào)道,束狀炭疽菌在PDA上能夠產(chǎn)生大量孢子,并且相關(guān)資料表明,多種植物的炭疽病菌均可在PDA培養(yǎng)基上生長(zhǎng)并產(chǎn)孢[28-31]。而本試驗(yàn)菌株在當(dāng)歸汁液培養(yǎng)基上產(chǎn)生大量孢子且產(chǎn)生分生孢子盤(pán),在PSA培養(yǎng)基上僅能產(chǎn)生少量孢子,而在PDA不產(chǎn)孢。由此可見(jiàn),本試驗(yàn)的當(dāng)歸炭疽病菌在致病性和生理特性上與其他寄生植物上有差異,此菌能否侵染其他植物,是否有生理分化還有待進(jìn)一步研究。

    3.2 侵入途徑

    郭彩霞和遲曉紅[29]報(bào)道,萬(wàn)年青炭疽刺盤(pán)孢菌(Colletotrichummontemartinii)接種14d后有傷口的葉片開(kāi)始發(fā)病,17d后沒(méi)有傷口的葉片也開(kāi)始發(fā)病,室內(nèi)接種試驗(yàn)比室外早2d。朱桂寧和蔡健和[30]報(bào)道山藥炭疽病病原菌(Colletotrichumgloeosporioides)也可侵入有傷口和無(wú)傷口的葉片。范永山和劉海英[31]等報(bào)道,唐山綠寶石炭疽病菌(Colletotrichumgloeosporioides)噴霧接種7d后開(kāi)始發(fā)病。本試驗(yàn)采用針刺、灌根和噴霧3種接種方式均能使健株發(fā)病,但針刺造成傷口有利于發(fā)病,與上述報(bào)道一致。因此,在田間進(jìn)行農(nóng)事操作時(shí)應(yīng)盡量避免機(jī)械損傷,注意田間防蟲(chóng),以減少病害危害。灌根接種發(fā)病較重,說(shuō)明該病原菌可以通過(guò)土壤帶菌,從根部或莖基部侵入。筆者在田間調(diào)查發(fā)現(xiàn),重茬地的發(fā)病率高,這說(shuō)明病菌可在田間病殘?bào)w上或土壤中越冬,造成土壤中病原菌積累,發(fā)病加重,因此,建議采取輪作倒茬、精耕細(xì)作、深翻土壤、清除帶病當(dāng)歸殘?bào)w等措施。

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