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    冷處理對(duì)玉米種子生長(zhǎng)的影響

    2013-12-31 00:00:00張海燕楊克軍
    安徽農(nóng)學(xué)通報(bào) 2013年11期

    摘 要:為探究低溫處理對(duì)玉米種子生長(zhǎng)的影響,對(duì)低溫5℃和10℃脅迫的玉米雜交種(鄭單958)種子的各項(xiàng)生理生化指標(biāo)進(jìn)行了分析。結(jié)果表明:與對(duì)照常溫相比,脅迫顯著降低胚根長(zhǎng)、芽長(zhǎng)、胚鮮重,同時(shí),脅迫處理增加了胚芽SOD、CAT、APX的活性,提高了胚芽的相對(duì)電導(dǎo)率和MDA的含量。

    關(guān)鍵詞:玉米;低溫;脅迫

    中圖分類號(hào) S513 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A 文章編號(hào) 1007-7731(2013)11-17-03

    黑龍江屬高寒地區(qū),早春播種、育苗常遇到低溫的傷害,對(duì)其產(chǎn)量有極大的影響[1]。玉米是典型的低溫敏感型作物,冷害對(duì)玉米的生長(zhǎng)發(fā)育有明顯的傷害,低溫在一定程度上破壞細(xì)胞膜從而影響膜系統(tǒng)維持的生理功能。研究指出大部分植物在溫度介于0~15℃時(shí)一系列生理功能被破壞,因此研究低溫對(duì)玉米傷害意義重大[2]。

    本試驗(yàn)以玉米種子(鄭單958)為試驗(yàn)材料,對(duì)不同低溫脅迫下種子的各項(xiàng)生理生化指標(biāo)進(jìn)行了研究,旨在探討各處理下種子生長(zhǎng)的抑制情況及細(xì)胞膜的傷害程度、抗氧化酶系統(tǒng)在防御活性氧對(duì)細(xì)胞傷害中的作用和差異,并為進(jìn)一步研究玉米種子抗低溫的生理機(jī)制提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料 玉米品種“鄭單 958”,由河南農(nóng)科院培育。

    1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì) 挑選大小一致無(wú)破損的玉米種子,用1% 次氯酸鈉消毒10min,蒸餾水沖洗干凈,25℃浸種24h,均勻擺放在鋪有3層濾紙的培養(yǎng)皿中(直徑為9cm),每個(gè)培養(yǎng)皿均勻擺放20粒種子,再覆蓋一層濾紙,加4mLNaCl鹽處理液(0mmol/L、50mmol/L、100mmol/L、150mmol/L)將其潤(rùn)濕,以正常生長(zhǎng)條件下的玉米種子作對(duì)照(溫度28℃,蒸餾水培養(yǎng)),低溫處理為10℃和5℃,設(shè)置12個(gè)處理組合,每個(gè)處理重復(fù)6次。培養(yǎng)皿置于人工氣候箱內(nèi),光周期為12h/12h,相對(duì)濕度為60%。每天更換處理液,并將培養(yǎng)皿內(nèi)的濾紙用新處理液輕輕沖洗3遍,以保持試驗(yàn)期內(nèi)每個(gè)培養(yǎng)皿中溶液的水勢(shì)基本恒定,重新加入處理液處理3d,恢復(fù)生長(zhǎng)3d,經(jīng)過處理的種子分別用于芽期表型指標(biāo)和胚芽測(cè)定各項(xiàng)生理指標(biāo)分析。

    1.3 測(cè)定方法

    1.3.1 表型指標(biāo)的測(cè)定 分別從每個(gè)培養(yǎng)皿中隨機(jī)取10粒上述處理的發(fā)芽種子,測(cè)定胚鮮重、胚根及胚芽長(zhǎng)度。

    1.3.2 抗氧化酶活性的測(cè)定 稱取樣品0.5g左右,放入預(yù)冷的研缽中,用10mL預(yù)冷的提取緩沖液(K2HP04-KH2P04,pH7.0,1mmol/L EDTA,1% PVP,1mmol/L ASC)研磨勻漿,15 000rpm,4℃離心20min,上清液即為酶粗提液,以下各指標(biāo)均采用上述酶液。超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)參照Giannopolitis和Ries(1977)方法測(cè)定[3]。過氧化氫酶(Catalase,CAT)參照Aebi(1984)方法測(cè)定[4]??箟难徇^氧化物酶(Ascorbate Peroxidase,APX)參照Dalton等(1987)方法[5],在290nm比色,測(cè)定其單位時(shí)間內(nèi)吸光度的變化。

    1.3.3 MDA含量的測(cè)定 參照Heath和Packer(1968)方法測(cè)定[6],吸取上述酶提取液2mL,加2mL含0.5%硫代巴比妥酸的20%三氯乙酸溶液,混合液于沸水浴中加熱15min,迅速用冰水冷卻,以4 000rpm離心10min,上清液分別于450、532、600nm波長(zhǎng)下測(cè)定光密度值。

    1.3.4 浸出液電導(dǎo)率的測(cè)定 參照Lutts等(1996)方法并改進(jìn)[7]。取1cm胚芽,用去離子水洗凈,放入試管中,加10mL去離子水,25℃浸泡24h,用DDS-11 C電導(dǎo)儀測(cè)定各組浸液電導(dǎo)率A;然后將試管置于煮沸水中20min,再冷卻至初始溫度,測(cè)電導(dǎo)率B,相對(duì)電導(dǎo)率R=A/B×100%。

    1.4 統(tǒng)計(jì)分析 采用Excel和SPSS17.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 低溫處理對(duì)玉米芽期表型指標(biāo)的影響 低溫處理對(duì)玉米芽期表型指標(biāo)的影響結(jié)果見圖1,圖中不同字母表示經(jīng)dengken式新復(fù)極差法比較差異顯著。由圖1可知,在正常種子發(fā)芽溫度28℃和低溫10℃、5℃不同溫度下,玉米種子胚根長(zhǎng)度、芽長(zhǎng)和鮮重均隨低溫脅迫程度的增加呈下降趨勢(shì)。與對(duì)照相比各處理均顯著抑制胚根的生長(zhǎng),抑制種子的芽長(zhǎng)以及鮮重。

    圖1 不同處理對(duì)玉米胚根長(zhǎng)、芽長(zhǎng)及胚鮮重的影響

    2.2 低溫處理對(duì)玉米芽期膜透性的影響 由表1所示,隨著脅迫程度的增加,MDA含量顯著上升,其中以5℃處理最為顯著,是對(duì)照值的2倍。電導(dǎo)率是衡量玉米植株體內(nèi)細(xì)胞內(nèi)容物擴(kuò)散到細(xì)胞外的一項(xiàng)生理指標(biāo),由表1可知,5℃時(shí)相對(duì)電導(dǎo)率最高為44.58%,是對(duì)照ck(28℃)的2.2倍,同時(shí)也高于10℃的電導(dǎo)率值,且差異顯著。

    表1 低溫處理對(duì)玉米種子膜透性的影響

    [溫度(℃)\相對(duì)電導(dǎo)率(%)\MDA(μmol/g FW)\28(ck)\20.05±0.95a\2.25±0.22a\10\35.25±2.12b\3.62±0.24b\5\44.58±2.94c\4.56±0.22c\]

    2.3 低溫處理對(duì)玉米芽期生理指標(biāo)的影響 5℃和10℃的低溫處理玉米種子,其芽期生理指標(biāo)結(jié)果見表2。從表2可以看出,低溫處理下玉米種子芽的SOD、CAT、APX等指標(biāo)均隨處理溫度的降低而呈現(xiàn)增加的趨勢(shì),即低溫5℃和10℃下種子芽酶的活性均顯著高于對(duì)照28℃的活性,且5℃和10℃條件下SOD、CAT活性均差異顯著。而5℃和10℃條件下玉米種子的APX活性差異不明顯。

    表2 低溫處理對(duì)玉米種子芽期生理指標(biāo)的影響(U/g FW)

    [溫度(℃)\SOD\APX)\CAT\28(ck)\22.86±1.62a\57.62±2.73a\70.45±2.17a\10\31.91±2.01b\68.69±0.77b\87.14±2.09b\5\39.30±2.55c\68.76±1.15b\104.70±2.39c\]

    3 結(jié)論與討論

    本研究以鄭單958為試驗(yàn)材料,模擬低溫條件下種子生長(zhǎng)、胚芽細(xì)胞膜透性以及活性氧代謝的變化進(jìn)行了研究。結(jié)果表明,低溫明顯抑制種子生長(zhǎng),與對(duì)照相比,各處理均顯著降低胚根長(zhǎng)、胚芽長(zhǎng)及胚鮮重。低溫處理均導(dǎo)致胚芽細(xì)胞膜遭受不同程度的破壞,MDA是膜質(zhì)過氧化的產(chǎn)物[8],隨脅迫程度的增加,MDA含量顯著上升。電導(dǎo)率是衡量玉米植株體內(nèi)細(xì)胞內(nèi)容物擴(kuò)散到細(xì)胞外的一項(xiàng)生理指標(biāo),也是衡量細(xì)胞組織的幼嫩程度和細(xì)胞質(zhì)膜是否受到傷害的指標(biāo)[9],與對(duì)照相比,脅迫均不同程度地提高了胚芽的相對(duì)電導(dǎo)率,5℃條件下表現(xiàn)更為明顯。

    SOD是抵御活性氧自由基介導(dǎo)的氧化損傷的第一道防線,可通過Haber-weiss反應(yīng)清除植物體內(nèi)多余的超氧根陰離子(2O2·+2H+→H2O2+O2),是保護(hù)酶體系中的關(guān)鍵酶[10]。CAT可專一清除H2O2,但CAT定位于線粒體、過氧化物體與乙醛酸循環(huán)體中,葉綠體中H2O2的清除是通過Halliwell-Asada途徑進(jìn)行的,APX和GR在這一途徑中起著重要作用。APX是植物AsA-GSH氧化還原途徑的重要組分之一[11]。因此,CAT、APX、GPX被認(rèn)為H2O2清除系統(tǒng)中重要的酶類[12]。與對(duì)照相比低溫脅迫均不同程度地增加了胚芽SOD、CAT、APX的活性,低溫脅迫對(duì)胚芽抗氧化物酶系統(tǒng)的影響較大,可能是由于低溫導(dǎo)致機(jī)構(gòu)受損嚴(yán)重,電子傳遞泄露嚴(yán)重,產(chǎn)生的大量活性氧不能迅速清除,進(jìn)一步加劇傷害。使得葉綠體中主要負(fù)責(zé)清除H2O2的APX活性快速下降,傾向于依靠CAT來清除體內(nèi)的H2O2。而關(guān)于低溫冷害方面研究已經(jīng)較早,具體的機(jī)制學(xué)者們正在進(jìn)一步探索并揭示。

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    (責(zé)編:徐世紅)

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