摘要:利用生物信息學(xué)軟件對歐文氏桿菌(Erwinia carotovora subsp. atroseptica)基因組中與鐵代謝相關(guān)的基因進(jìn)行生物信息學(xué)分析。結(jié)果表明,共篩選到71個(gè)與鐵代謝相關(guān)的基因,其中,有51個(gè)為已知功能基因,20個(gè)為推測功能基因。在獲得的71個(gè)基因中,12個(gè)基因參與鐵載體合成、27個(gè)基因與Fe3+吸收有關(guān)、3個(gè)基因與Fe2+吸收有關(guān)、10個(gè)基因與亞鐵血紅素吸收有關(guān)、1個(gè)基因與編碼貯鐵蛋白有關(guān)、7個(gè)基因與鐵吸收調(diào)控有關(guān)、還有11個(gè)基因可能與鐵代謝有關(guān)。
關(guān)鍵詞:歐文氏桿菌(Erwinia carotovora subsp. atroseptica);鐵代謝相關(guān)基因;生物信息學(xué)分析
中圖分類號:S432.4+2 文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A 文章編號:0439-8114(2013)22-5606-03
隨著生物信息學(xué)的發(fā)展,利用生物信息學(xué)方法研究生命現(xiàn)象與機(jī)制已成為新的研究熱點(diǎn)。軟腐病菌中的歐文氏桿菌(Erwinia carotovora subsp. atroseptica)SCRI1043的全基因組序列已公布[1-3]。本研究運(yùn)用生物信息學(xué)方法篩選歐文氏桿菌基因組中與鐵代謝有關(guān)的基因,并進(jìn)行相關(guān)分析,為控制軟腐病的發(fā)生提供理論依據(jù)。
1 材料與方法
根據(jù)NCBI數(shù)據(jù)庫中歐文氏桿菌SCRI1043(以下簡稱Eca1043)的基因組,將Eca1043的基因組中每一個(gè)編碼序列Coding sequence(CDS)利用DNAMAN軟件轉(zhuǎn)化為FASTA蛋白的格式,與NCBI數(shù)據(jù)庫中公布的28個(gè)完全注解的腸桿菌科細(xì)菌的CDS進(jìn)行BLAST比對,找出該菌株中所有與鐵代謝相關(guān)的基因,并使用DNAStar和TreeView軟件對其進(jìn)行同源性分析。
2 結(jié)果與分析
Eca1043菌株的基因組大小為5 064 019 nt,G+C含量為50.97%,4 614個(gè)已預(yù)測的CDS,其中有20個(gè)假基因,7個(gè)rRNA操縱子,76個(gè)tRNA。通過與28個(gè)完全注解腸桿菌科細(xì)菌的全部CDS進(jìn)行BLAST比對,發(fā)現(xiàn)了71個(gè)與鐵代謝相關(guān)的基因,其中包括12個(gè)參與鐵載體合成的基因,27個(gè)基因與Fe3+吸收相關(guān)的基因,3個(gè)與Fe2+吸收相關(guān)的基因,10個(gè)與亞鐵血紅素吸收相關(guān)的基因,1個(gè)與貯鐵蛋白相關(guān)的基因,7個(gè)與鐵調(diào)控相關(guān)的基因,11個(gè)其他可能與鐵代謝相關(guān)的基因。
2.1 鐵載體生物合成系統(tǒng)
通過序列比對,Eca1043菌株中與鐵代謝相關(guān)基因與大腸桿菌(Escherichia coli)中某些基因具有較高的相似性,ECA0475、ECA0474、ECA0477、
ECA0478、ECA0479、ECA0480、ECA0481、ECA2023、ECA3781、ECA4116基因與腸菌科中大腸桿菌中cirA、entD、entC、entE、entB、entF、entA、iucC、fepA、 iucC基因的氨基酸序列相似性分別為36.61%、32.53%、46.30%、64.63%、62.94%、30.30%、60.32%、29.47%、63.71%、29.47%。ECA0731、ECA3985基因的氨基酸序列與假結(jié)核耶爾森氏菌(Yersinia pseudotuberculosis)基因的氨基酸序列相似性分別為58.60%、74.36%。由于大腸桿菌中entD、entC、entE、entB、entF、entA基因編碼的蛋白與鐵載體的生物合成有關(guān)[4],推測Eca1043菌株中的ECA0475、ECA0474、ECA0477、ECA0478、ECA0479、ECA0480、ECA0481基因也應(yīng)該與歐文氏桿菌鐵載體生物合成相關(guān)。
2.2 Fe3+轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)相關(guān)基因
在Eca1043菌株的基因組中發(fā)現(xiàn)12個(gè)Fe3+-鐵載體轉(zhuǎn)運(yùn)子,其中包括Fe3+轉(zhuǎn)運(yùn)子、Fe3+ ABC轉(zhuǎn)運(yùn)子、鐵色素轉(zhuǎn)運(yùn)子、Fe3+-二檸檬酸鹽轉(zhuǎn)運(yùn)子。12個(gè)Fe3+-鐵載體轉(zhuǎn)運(yùn)子中有4個(gè)操縱子包括11個(gè)基因(ECA1492—ECA1494,ECA2561—ECA2564、ECA3243、
ECA4254—ECA4256)編碼Fe3+ ABC轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)蛋白,有1個(gè)操縱子包括3個(gè)基因(ECA3310—ECA3312)編碼鐵色素轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)蛋白,有1個(gè)操縱子包括6個(gè)基因(ECA1073—ECA1078)編碼Fe3+-二檸檬酸鹽轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)蛋白,有1個(gè)操縱子包括2個(gè)基因(ECA3138—ECA3139)編碼Fe3+轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)蛋白,還有5個(gè)操縱子包括5個(gè)基因(ECA0350、ECA0814、ECA1510、ECA1775、ECA2718)尚無法確定具體功能。
2.3 Fe2+轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)相關(guān)基因
細(xì)菌中Fe2+吸收與Fe3+吸收是同等重要的[5]。在Eca1043菌株的基因組中,不但發(fā)現(xiàn)了與Fe3+轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)相關(guān)基因,還發(fā)現(xiàn)了3個(gè)與Fe2+轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白相關(guān)的基因ECA3277、ECA3933、ECA4308,并與大腸桿菌的Fe2+轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)相關(guān)基因feoB、fieF同源性很高。
2.4 亞鐵血紅素吸收系統(tǒng)相關(guān)基因
大多數(shù)細(xì)菌在生長階段需要鐵,而在侵染階段則需要亞鐵血紅素[5-7],所有已被證實(shí)的能使亞鐵血紅素降解的酶都是單加氧酶作為亞鐵血紅素的加氧酶。目前,已證實(shí)在金黃葡萄球菌(Staphylococcus aureus)中的亞鐵血紅素的吸收系統(tǒng)蛋白是由一簇isd(Iron-regulated surface determinants)基因編碼的[8]。在Eca1043菌株的基因組中發(fā)現(xiàn)了10個(gè)與亞鐵血紅素吸收相關(guān)的基因,其中8個(gè)基因功能已知,還有2個(gè)基因功能為預(yù)測的。ECA1882—ECA1885與大腸桿菌中與亞鐵血紅素的轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)基因ccmA、ccmB、ccmC、ccmD具有高度的相似性,ECA2116—ECA2118與假結(jié)核菌中和溶血素蛋白相關(guān)的基因YPTB3461、YPTB3460、YPTB3459具有高度相似性。此外,ECA0056、ECA1537、ECA1538與假結(jié)核菌中與亞鐵血紅素的轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)基因hmuR、hasA、hasR具有高度相似性。
2.5 鐵吸收調(diào)節(jié)蛋白相關(guān)基因(Fur)及其同系物
Fur是鐵吸收相關(guān)基因的重要調(diào)節(jié)子,在細(xì)菌的生長和侵染過程中起著重要作用。與鐵吸收相關(guān)的大多數(shù)基因中都有一個(gè)保守的上游Fur結(jié)合位點(diǎn)(Fur-Box),在鐵充足的條件下,F(xiàn)ur蛋白結(jié)合Fe2+,然后結(jié)合到Fur-Box上,導(dǎo)致Fur調(diào)控基因的轉(zhuǎn)錄受阻。Fur蛋白根據(jù)胞內(nèi)鐵的有效濃度來調(diào)節(jié)細(xì)菌的鐵代謝,除Fur基因外,還發(fā)現(xiàn)了與Fur基因功能相近的6個(gè)基因,1個(gè)是zur基因(ECA0632),編碼依賴鋅的阻遏物;1個(gè)編碼鐵蛋白的基因(ECA2473)和4個(gè)其他與Fur基因功能相近的基因(ECA1941、ECA3778、ECA3833、ECA3834),均與大腸桿菌中的相應(yīng)基因具有很高的相似性。
Fe2+-Fur復(fù)合物通常結(jié)合在被抑制基因啟動子之間,最初發(fā)現(xiàn)Fur結(jié)合位點(diǎn)與己知的Fur-box的19 bp回文序列(GATAATGATAATCATTATC)相一致[9]。在大腸桿菌染色體的任何位置都沒有發(fā)現(xiàn)這種嚴(yán)格的序列,F(xiàn)ur結(jié)合位點(diǎn)可能只匹配一致序列的11/19堿基,如TonB[10]。本研究利用Fur-box的19 bp的回文序列找到了26個(gè)推測的Fur-box,這些基因參與了鐵載體的生物合成以及鐵的吸收、轉(zhuǎn)運(yùn)、儲存和調(diào)控。
2.6 貯鐵蛋白相關(guān)基因及其他與鐵吸收相關(guān)基因
鐵蛋白是在細(xì)菌細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)的貯鐵蛋白的一類,為中空的球形粒子形態(tài),其中貯存2 000到4 500個(gè)三價(jià)鐵原子。鐵蛋白的粒子直徑大約在8~12 nm,為調(diào)節(jié)鐵進(jìn)出細(xì)胞內(nèi)部的運(yùn)輸通道。細(xì)菌中有兩種形式的鐵蛋白,一種是含有亞鐵血紅素的鐵蛋白,另一種是不含亞鐵血紅素的鐵蛋白。鐵蛋白在革蘭氏陰性菌中的主要作用是貯鐵,以及防止金屬毒性和氧化,在不同的菌株中鐵蛋白的調(diào)控和功能顯著不同[11]。在Eca1043中發(fā)現(xiàn)了一個(gè)編碼鐵蛋白的基因ECA2473(表1)與大腸桿菌中編碼鐵蛋白的基因ftn同源性很高。
除了以上與貯鐵蛋白相關(guān)的基因外,還找到了可能與鐵吸收相關(guān)的11個(gè)基因,其中有9個(gè)基因?yàn)橐阎δ艿幕颍?個(gè)基因?yàn)轭A(yù)測功能的基因。5個(gè)基因(ECA1197、ECA1898、ECA3232、ECA3273、ECA4269)與大腸桿菌中與鐵氧還蛋白相關(guān)的基因(yfaE、napF、fdx、yfhL、ECs4849)具有很高相似性,6個(gè)基因(ECA1181、ECA2392—ECA2395、ECA2395)與大腸桿菌中與鐵螯合蛋白相關(guān)基因(hemH、sitA、SitB、sitC、SitD、c2517)具有很高的同源性。
3 小結(jié)與討論
基因組序列測定使微生物研究手段發(fā)生了革命性改進(jìn)。自1995年嗜血流感菌(Haemophilus influenza)基因組序列發(fā)表以來,已有312種細(xì)菌基因組全序列完成測序(http//www.ncbi.nlm.nih.gov/genomes/MICROBES/Complete.html),包括26種古細(xì)菌,286種真細(xì)菌。截至2013年9月,收錄在GenBank已測基因組全序列的植物病原細(xì)菌種類達(dá)31種,依靠傳統(tǒng)的研究思想和試驗(yàn)手段注釋如此龐大的生物信息資源幾乎是不可能的。生物信息學(xué)的首要任務(wù)之一是分析新基因的功能,即從大量不連續(xù)的信息中發(fā)現(xiàn)其中隱藏著的重要信息。
通過多重序列比對篩選保守序列是生物信息學(xué)方法的基礎(chǔ),幾乎所有的注釋序列的意義、研究序列結(jié)構(gòu)的方法都是建立在此基礎(chǔ)上的。保守序列是指病毒在進(jìn)化過程中基因組序列保持不變或變異很小的序列。在進(jìn)化過程中,變化很小或者不變的序列往往承擔(dān)著極其重要的功能,一旦出現(xiàn)變化,功能就會受影響或者被破壞,物種就有被淘汰的危險(xiǎn)。因此,保持不變或變化很小的序列可能具有相同的功能。國際上已有專門的數(shù)據(jù)庫(如Blocks、PROSITE和IDENTIFY)和分析軟件(如BLAST、DNAsis、FASTA、GCG、MOST、Emotif和Tool)用于保守序列的分析。
本研究利用生物信息學(xué)方法對歐文氏桿菌基因組進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)了71個(gè)與鐵代謝相關(guān)的基因,分別參與了歐文氏桿菌中鐵載體的生物合成以及鐵的運(yùn)輸、吸收、貯存和調(diào)控。
參考文獻(xiàn):
[1] BULTREYS A, GHEYSEN I, MARAITE H, et al. Characterization of fluorescent and non-fluorescent peptide siderophores produced by Pseudomonas syringae strains and their potential use in strain identification[J]. Applied and Environmental Microbiology,2001,67(4):1718-1727.
[2] DERBYSHIRE P, BALDWIN T, STEVENSON P, et al. Expression in Escherichia coli K-12 of the 76, 000-dalton iron-regulated outer membrane protein of Shigella flexneri confers sensitivity to cloacin DF13 in the absence of Shigella O antigen[J]. Infection Immunity,1989,57(9):2794-2798.
[3] BELL M, SEBAIHIA L, PRITCHARD,et al. Genome sequence of the enterobacterial phytopathogen Erwinia carotovora subsp. atroseptica and characterization of virulence factors[J]. Proceedings of the National Academy of Science of the United State of America,2004,101(30):11105-11110.
[4] RAYMOND K N, EMILY A, DERTZ, et al. Enterobactin: An archetype for microbial iron transport[J]. Proceedings of the National Academy of Science of the United State of America,2003,100(7):3584-3588.
[5] VELAYUDHAN J, HUGHES N J, MCCOLM A A, et al. Iron acquisition and virulence in Helicobacter pylori: a major role for FeoB, a high-affinity ferrous iron transporter[J]. Journal of Molecular Biology,2000,37(2):274-286.
[6] LILLARDJR J W, BEARDEN S W , FETHERSTON J D, et al. The haemin storage (Hms+) phenotype of Yersinia pestis is not essential for the pathogenesis of bubonic plague in mammals[J].Microbiology,1999,145(1):197-209.
[7] PERRY R D,SHAH J, BEARDEN S W, et al. Yersinia pestis TonB: role in iron, heme, and hemoprotein utilization[J]. Infection and Immunity,2003,71(7):4159-4162.
[8] MAZMANIAN S K, SKAAR E P, GASPAR A H, et al. Passage of heme-iron across the envelope of Staphylococcus aureus[J]. Science,2003,299(5608):906-909.
[9] MORRISSEY J A, COCKAYNE A, BRUMMELL K, et al. The staphylococcal ferritins are differentially regulated in response to iron and manganese and via PerR and Fur[J]. Infection and Immunity,2004,72(2):972-979.
[10] ESCOLAR L, PEREZ-MARTIN J, LORENZO D V J. Evidence of an unusually long operator for the Fur repressor in the aerobactin promoter of Escherichia coli[J]. Journal of Biological Chemistry,2000,275(32):24709-24714.
[11] NEWMAN D L, SHAPIRO J A. Differential fiu-lacZ fusion regulation linked to Escherichia coli colony development[J]. Molecular Microbiology,1999,33(1):18-32.
(責(zé)任編輯 屠 晶)