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    PMA—LAMP法對(duì)克氏螯蝦樣品中沙門(mén)氏菌的快速檢測(cè)

    2013-12-31 00:00:00張毅胡定金付云潔等
    湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2013年23期

    摘要:采用環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(PMA-LAMP)對(duì)克氏螯蝦(Cambarus Clarkii)樣品中沙門(mén)氏菌進(jìn)行快速檢測(cè),旨在建立一種快速簡(jiǎn)便、靈敏度高、特異性強(qiáng)的檢驗(yàn)方法。分別采用PMA-LAMP、PCR檢測(cè)方法對(duì)沙門(mén)氏菌進(jìn)行檢測(cè)。結(jié)果表明,PMA-LAMP法檢測(cè)限為2×10 CFU/mL,PCR法和GB/T 4789.4-2008檢測(cè)限為2×103 CFU/mL。采集湖北省省內(nèi)60份市售的克氏螯蝦樣品,分別采用PMA-LAMP檢測(cè)方法、PCR檢測(cè)方法及國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法(GB/T 4789.4-2008)對(duì)樣品進(jìn)行檢測(cè),PMA-LAMP 方法檢出6例沙門(mén)氏菌,陽(yáng)性率為10%;PCR檢測(cè)方法檢出4例沙門(mén)氏菌,陽(yáng)性率為6.7%;國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法檢出4例沙門(mén)氏菌,陽(yáng)性率為6.7%。

    關(guān)鍵詞:PMA-LAMP法;沙門(mén)氏菌(Salmonella);克氏螯蝦(Cambarus Clarkii)

    中圖分類(lèi)號(hào):TS207.4 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):0439-8114(2013)23-5854-04

    湖北省是小龍蝦(克氏螯蝦,Cambarus clarkii)養(yǎng)殖大省,小龍蝦養(yǎng)殖業(yè)快速發(fā)展的同時(shí)也引發(fā)了食源性病原微生物污染的食品安全問(wèn)題。2010年7月份以來(lái),南京陸續(xù)收治因食用克氏螯蝦而入院的病人,經(jīng)檢查診斷為橫紋肌溶解綜合征(哈夫?。?。螯蝦體內(nèi)的藥物殘留、重金屬及攜帶的病原微生物都可能成為哈夫病的致病因素??耸向r養(yǎng)殖主要分布于低湖田、水稻田、池塘、溝渠等地區(qū),受生長(zhǎng)環(huán)境的影響,克氏螯蝦體內(nèi)可能寄生多種病原微生物,在養(yǎng)殖、運(yùn)輸、銷(xiāo)售等諸多環(huán)節(jié)均有可能產(chǎn)生安全隱患,但是這些過(guò)程食品安全隱患很難被發(fā)現(xiàn),只有進(jìn)入餐飲環(huán)節(jié)后,安全問(wèn)題才得以突顯。因此在小龍蝦養(yǎng)殖業(yè)中建立快速監(jiān)測(cè)病原微生物的方法及制定標(biāo)準(zhǔn)化的養(yǎng)殖體系迫在眉睫。

    沙門(mén)氏菌(salmonella)是最常見(jiàn)的食源性病原微生物,可引起人畜胃腸炎、傷寒和副傷寒等癥[1,2]。人畜感染后可呈無(wú)癥帶菌狀態(tài),也可表現(xiàn)為有臨床癥狀的致死疾,它可加重病態(tài)或死亡率,或者降低動(dòng)物的繁殖生產(chǎn)力。傳統(tǒng)的沙門(mén)氏菌檢測(cè)方法,由于其檢測(cè)周期長(zhǎng)、程序復(fù)雜等缺點(diǎn)已不能滿(mǎn)足現(xiàn)代檢測(cè)要求,因此研究沙門(mén)氏菌快速、有效的檢測(cè)方法顯得尤其重要[3-5]。常規(guī)檢測(cè)采用傳統(tǒng)培養(yǎng)方法,致病菌需要獨(dú)立的檢測(cè)方法單獨(dú)進(jìn)行檢測(cè),工作量大,檢測(cè)周期長(zhǎng),且受到檢測(cè)人員的專(zhuān)業(yè)、經(jīng)驗(yàn)等多種因素限制,容易出現(xiàn)誤判[6,7]。隨著分子生物學(xué)方法在食品微生物檢測(cè)中的逐步應(yīng)用,致病菌的檢測(cè)效率也逐步提升。聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)技術(shù)不斷應(yīng)用于病原微生物的快速檢測(cè)。但PCR技術(shù)在現(xiàn)場(chǎng)快速檢測(cè)適用性上具有一定的局限性。環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(PMA-LAMP)由Nagamine等[8]于2000年建立,該技術(shù)通過(guò)針對(duì)靶基因的6個(gè)區(qū)域而設(shè)計(jì)4種特異引物,利用具有鏈置換活性的Bst DNA聚合酶,在恒溫條件下(60~65 ℃)高效擴(kuò)增目標(biāo)DNA。該方法具有檢測(cè)快速、特異性強(qiáng)、靈敏度高、操作簡(jiǎn)便、適用于現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè)。與PCR反應(yīng)相比,PMA-LAMP反應(yīng)最明顯的優(yōu)勢(shì)是不需要高精密的儀器設(shè)備,同時(shí)檢測(cè)靈敏度和特異性又能滿(mǎn)足快速鑒定病原微生物的需要[6]。

    1 材料與方法

    1.1 標(biāo)準(zhǔn)菌株

    鼠傷寒沙門(mén)氏菌ATCC14028、大腸埃希氏菌ATCC25922、福氏志賀菌CMCC6120513、金黃色葡萄球菌CMCC26003、單核細(xì)胞增生李斯特菌CMCC(B)54002-5、創(chuàng)傷弧菌ATCC27562均購(gòu)自廣東省微生物研究所。

    1.2 試劑及培養(yǎng)基

    食品中沙門(mén)氏菌PMA-LAMP快速檢測(cè)試劑盒(湖北泰揚(yáng)生物工程有限公司);疊氮溴化丙錠(Biotium公司);DNA Marker、Taq酶購(gòu)于北京天根生物有限公司;二甲亞砜(Sigma公司);緩沖蛋白胨水、亞硒酸鹽胱氨酸增菌液、四硫磺酸鹽煌綠增菌液、亞硫酸鉍瓊脂、HE瓊脂、三糖鐵瓊脂、營(yíng)養(yǎng)肉湯和營(yíng)養(yǎng)瓊脂均購(gòu)自北京陸橋技術(shù)有限公司。

    1.3 儀器

    電熱恒溫水浴鍋(金壇新航儀器有限公司);S1000型PCR擴(kuò)增儀、Gel Doc EQ凝膠成像系統(tǒng)(Bio-Rad公司);高速離心機(jī)(Sigma公司);電泳儀(北京六一廠);全自動(dòng)高壓滅菌鍋(日本三洋公司)。

    1.4 樣品的制備和選擇性增菌

    依據(jù) GB/T4789.4-2008《食品微生物學(xué)檢驗(yàn)沙門(mén)氏菌檢驗(yàn)》方法進(jìn)行樣品制備和選擇性增菌。

    1.4.1 國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法 依據(jù)GB/T 4789.4-2008《食品微生物學(xué)檢驗(yàn)沙門(mén)氏菌檢驗(yàn)》進(jìn)行菌株的分離和生化鑒定試驗(yàn)。

    1.4.2 PCR檢測(cè)方法 根據(jù)GenBank公布的沙門(mén)氏菌invA基因序列,應(yīng)用Primer 5設(shè)計(jì)特異性引物。上游引物為GTGAAATTATCGCCACGTTCGGG

    CAA;下游引物為T(mén)CATCGCACCGTCAAAGGAACC。

    20 μL的擴(kuò)增體系包括:2 μL反應(yīng)液,1 μL DNA模板,上下游引物各1 μL (0.2 μmol/L),2 μL dNTP mixture,1 μL Taq酶,1 μL 25 mmol/L MgSO4,11 μL去離子水。PCR 反應(yīng)體系:94 ℃預(yù)變性5 min,30個(gè)循環(huán),每個(gè)循環(huán)94 ℃(30 s)、56 ℃(30 s)、72 ℃(30 s), 72 ℃(10 min)。擴(kuò)增產(chǎn)物在2 %瓊脂糖凝膠上100 V電泳分離60 min,加樣量為5 μL/上樣孔。

    1.4.3 疊氮溴化丙錠處理 用20%二甲基亞砜配制40 mmol/L的PMA溶液,-20 ℃避光保存。將PMA(40 mmol/L)依次加入裝有0.5 mL沙門(mén)氏菌活菌菌懸液離心管中,充分混勻后,將離心管于暗室中放置15 min。然后將離心管開(kāi)蓋放置冰上,距鹵鎢燈(500 W)約15 cm,曝光時(shí)間為5 min。

    1.4.4 沙門(mén)氏菌DNA模板制備 將過(guò)夜培養(yǎng)的沙門(mén)氏菌菌懸液(2×109 CFU/mL)置于離心管中,依次稀釋為2×109、2×108、2×107、2×106、2×105、2×104、2×103、2×102、2×10 CFU/mL的菌懸液,經(jīng)過(guò)疊氮溴化丙錠處理后,在100 ℃沸水中煮沸5 min,8 000 r/min離心2 min,取上清液作為DNA模板備用。

    1.4.5 PMA-LAMP檢測(cè)方法 根據(jù)GenBank公布的沙門(mén)氏菌invA基因序列,應(yīng)用Primer Explorer 4設(shè)計(jì)特異引物。引物序列如表1所示,引物由上海生工合成。PMA-LAMP反應(yīng)體系(25 μL)如下:依次加入10×Thermopol反應(yīng)緩沖液2.5 μL,Bst聚合酶1 μL,引物,dNTP,模板和去離子水。引物FIP和BIP終濃度為1.8 μmol/L;引物F3和B3終濃度為0.2 μmol/L;引物L(fēng)F和LB終濃度為1.0 μmol/L。在62 ℃水浴中反應(yīng)60 min,在85℃水浴中溫浴5 min使酶失活。擴(kuò)增產(chǎn)物在2%瓊脂糖凝膠上120 V電泳分離60 min,加樣量為5 μL/上樣孔。

    1.5 PMA-LAMP檢測(cè)方法的特異性

    分別將4株沙門(mén)氏菌和其他5株非沙門(mén)氏菌(依次為大腸埃希氏菌ATCC25922、福氏志賀菌CMCC6120513、金黃色葡萄球菌CMCC26003、單核細(xì)胞增生李斯特菌CMCC(B)54002-5、創(chuàng)傷弧菌ATCC27562)接種到增菌培養(yǎng)基上,于(36±1) ℃,300 r/min 搖床培養(yǎng)16 h,離心后將菌體依次用無(wú)菌生理鹽水稀釋至2×104 CFU/mL菌懸液,按照“1.4.5”的方法進(jìn)行檢測(cè)。

    1.6 人工污染食品中沙門(mén)氏菌檢測(cè)

    1.6.1 不同濃度菌液的制備 挑取沙門(mén)氏菌標(biāo)準(zhǔn)菌株ATCC14028至營(yíng)養(yǎng)肉湯中增菌,于(36±1) ℃,300 r/min 搖床培養(yǎng)16~18 h,用生理鹽水制成菌懸液,依次再用無(wú)菌生理鹽水10倍梯度稀釋至2×107、2×106、2×105、2×104 CFU/mL。

    1.6.2 人工污染樣的制備 將檢測(cè)無(wú)沙門(mén)氏菌污染的克氏螯蝦樣品按GB/T 4789.4-2008方法制成1∶10 稀釋液。吸取制備好的 2×106、2×105、2×104、2×103 CFU/mL菌懸液依次加入每組1∶10 稀釋液中,混勻,菌懸液濃度依次為2×105、2×104、2×103、2×102 CFU/mL,于(36±1)℃培養(yǎng)12~16 h后分別按照國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法、PCR檢測(cè)方法及PMA-LAMP檢測(cè)方法進(jìn)行檢測(cè)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 沙門(mén)氏菌PCR和PMA-LAMP檢測(cè)方法檢測(cè)結(jié)果

    將鼠傷寒沙門(mén)氏菌ATCC14028按照2×109、2×108、2×107、2×106、2×105、2×104、2×103、2×102、2×10 CFU/mL依次稀釋?zhuān)ㄟ^(guò)煮沸法提取鼠傷寒沙門(mén)氏菌ATCC14028 DNA,將其用于PMA-LAMP反應(yīng)和PCR反應(yīng),當(dāng)反應(yīng)體系中存在鼠傷寒沙門(mén)氏菌ATCC14028 DNA時(shí),PMA-LAMP檢測(cè)方法擴(kuò)增反應(yīng)會(huì)產(chǎn)生大量的、大小不等的DNA重復(fù)序列,凝膠上呈現(xiàn)典型的梯型電泳條帶。檢測(cè)結(jié)果如圖1所示。由圖1可知,PCR檢測(cè)鼠傷寒沙門(mén)氏菌ATCC14028的檢出限為2×103 CFU/mL,而PMA-LAMP檢測(cè)鼠傷寒沙門(mén)氏菌ATCC14028的檢出限為2×10 CFU/mL。

    2.2 PMA-LAMP檢測(cè)方法的特異性

    4株沙門(mén)氏菌均呈陽(yáng)性反應(yīng),其他5株非沙門(mén)氏菌(為大腸埃希氏菌ATCC25922、福氏志賀菌CMCC6120513、金黃色葡萄球菌CMCC26003、單核細(xì)胞增生李斯特菌CMCC(B)54002-5、創(chuàng)傷弧菌ATCC27562均為陰性(圖2)。由圖2可知,按照方法“1.4.3”的擴(kuò)增體系,62 ℃溫育45 min,4株沙門(mén)氏菌在凝膠上呈現(xiàn)典型的梯型電泳條帶,5株非沙門(mén)氏菌均為陰性,去離子水作為陰性對(duì)照,通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳無(wú)擴(kuò)增條帶。

    2.3 人工污染克氏螯蝦樣品中沙門(mén)氏菌檢測(cè)結(jié)果

    將檢測(cè)無(wú)沙門(mén)氏菌污染的克氏螯蝦樣品按GB/T 4789.4-2008方法制備樣品,菌懸液濃度依次為2×105、2×104、2×103、2×102 CFU/mL,于(36±1)℃培養(yǎng)18~24 h后分別按照國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法、PCR檢測(cè)方法及PMA-LAMP檢測(cè)方法進(jìn)行檢測(cè)(表2)。由表2可知,國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法與PMA-LAMP檢測(cè)方法的檢測(cè)結(jié)果一致。PCR檢測(cè)方法的最低檢出限高于國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法和PMA-LAMP檢測(cè)方法。

    2.4 克氏螯蝦樣品的檢測(cè)結(jié)果

    采集60份市售的克氏螯蝦樣品,PMA-LAMP 檢測(cè)方法檢出6例沙門(mén)氏菌,陽(yáng)性率為10%;PCR檢測(cè)方法檢出4例沙門(mén)氏菌,陽(yáng)性率為6.7%;國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法檢出4例沙門(mén)氏菌,陽(yáng)性率為6.7%。PMA-LAMP檢測(cè)方法與國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法的陽(yáng)性率差異不顯著性,并且比國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法的檢出限低。

    3 結(jié)論

    湖北省是水產(chǎn)養(yǎng)殖大省,近年來(lái)湖北省大力發(fā)展克氏螯蝦養(yǎng)殖,其年平均產(chǎn)值達(dá)20億元以上??耸向r養(yǎng)殖主要集中在水稻田、池塘、溝渠等地,受養(yǎng)殖環(huán)境的影響,克氏螯蝦體內(nèi)可能會(huì)寄生多種病原微生物,由此容易引發(fā)食源性病原微生物問(wèn)題。因此在養(yǎng)殖環(huán)節(jié)建立食源性病原微生物監(jiān)測(cè)體系,對(duì)食源性病原微生物做到早檢測(cè)早預(yù)防。目前LAMP技術(shù)已被應(yīng)用于食源性病原微生物的快速檢測(cè),與傳統(tǒng)的快速檢測(cè)方法相比較,PMA-LAMP檢測(cè)方法具有檢測(cè)快速、操作簡(jiǎn)便、靈敏度高、特異性強(qiáng)、成本較低、不需要精密儀器的優(yōu)點(diǎn),特別適合現(xiàn)場(chǎng)快速檢測(cè)的需求。本研究建立了快速檢測(cè)克氏螯蝦沙門(mén)氏菌PMA-LAMP檢測(cè)技術(shù),應(yīng)用PMA-LAMP檢測(cè)方法檢測(cè)克氏螯蝦樣品中沙門(mén)氏菌,與國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)檢測(cè)方法比對(duì),兩種方法檢測(cè)結(jié)果相同,可為食品安全快速檢測(cè)提供一種新的思路,PMA-LAMP檢測(cè)方法具有快速、靈敏度高、操作簡(jiǎn)便等優(yōu)點(diǎn),并能檢測(cè)鑒定沙門(mén)氏菌病原活細(xì)胞[6,9]。

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