劉 丹,彭易安,劉卓琦,湯 蕾,尹 東,何 明
(南昌大學1.醫(yī)學院藥理學教研室、2.醫(yī)學院生化教研室、3.第二附屬醫(yī)院江西省分子醫(yī)學重點實驗室,江西 南 昌 330006)
14-3-3γ是14-3-3蛋白家族中的一個亞型,其作為細胞內(nèi)磷酸化作用的重要因子,參與多種病理生理過程。已有研究報道[1],大鼠注射脂多糖(LPS)后,14-3-3γ mRNA表達明顯升高,提示其在提高心肌組織對損傷的反應(yīng)性以及作為修復信號等方面發(fā)揮重要作用。我們前期研究也已發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染14-3-3γ重組質(zhì)粒至心肌細胞,能明顯對抗LPS所致的損傷,減少細胞凋亡,但是機制不明。越來越多的研究表明[2],線粒體是心肌細胞中十分重要的細胞器,與凋亡密切相關(guān)。促凋亡信號作用于線粒體,可以改變線粒體膜的通透性,致使其內(nèi)的一些凋亡因子如細胞色素C(cytochrome C,Cyt C)、凋亡誘導因子(AIF)、核酸內(nèi)切酶等釋放至胞質(zhì),從而啟動凋亡[3]。Bcl-2蛋白家族在調(diào)控線粒體通透性方面起關(guān)鍵作用,14-3-3蛋白可與Bcl-2蛋白家族中的Bad相互作用,使后者S112、S136位點磷酸化,從而導致Bcl-2/Bad異二聚體復合物解聚,Bcl-2游離,進而移位于線粒體外膜,通過調(diào)控線粒體通透性轉(zhuǎn)換孔道(mPTP)的開放來影響線粒體膜的通透性,在線粒體凋亡途徑中起關(guān)鍵作用[4]。14-3-3γ重組質(zhì)粒的抗LPS損傷的心肌保護作用是否與此途徑相關(guān),目前尚未見報道。本實驗擬培養(yǎng)原代大鼠乳鼠心肌細胞,從Bcl-2/Bad/mPTP參與的線粒體凋亡途徑角度,探討14-3-3γ抗LPS損傷的作用機制。
1.1 受試藥品與主要試劑 pFLAG-CMVTM-4質(zhì)粒:Sigma公司;限制性內(nèi)切酶EcoRI、KpnI:NEB公司;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、T4 DNA連接酶、凝膠回收試劑盒及無內(nèi)毒素質(zhì)粒提取試劑盒:Promega公司;14-3-3γ、Bcl-2、β-actin 抗體及相應(yīng)二抗:Santa Cruz公司;Bad、phospho-Bad(S112):Cell Signaling 公司;胎牛血清:杭州四季青生物工程材料有限公司;胞核-胞漿蛋白制備試劑盒:北京普利萊基因技術(shù)有限公司;MEM培養(yǎng)基:Gibco BRL公司;硝酸纖維素膜:Amersham公司;LPS(傷寒菌內(nèi)毒素脂多糖)、胰酶、HEPES、增強化學發(fā)光印跡試劑、丙烯酰胺、PMSF、亮肽素、SDS、亞甲基雙丙烯酰胺、過硫酸銨、TEMED、EDTA和DTT:Sigma公司;其它試劑均為分析純。
1.2 14-3-3γ 真核表達載體 pFLAG-14-3-3γ 的構(gòu)建及轉(zhuǎn)染 設(shè)計14-3-3γ擴增的PCR引物,并在引物中加入了EcoRI和Kpn兩個限制性酶切位點。上游引物:5'-AAGAATTCCCCCGCGAAGATG-3',下游引物:5'-TTAGGTACCTGGGGCCTTAGTTGTT-3'。以SD乳鼠心肌細胞的cDNA為模板進行PCR擴增,然后酶切、連接、篩選,質(zhì)粒提取后,LipofectamineTM2000(μl)與 DNA(μl)以2.0∶0.8比例混合,轉(zhuǎn)染入心肌細胞,Western blot檢測14-3-3γ蛋白表達以評價轉(zhuǎn)染效率。
1.3 心肌細胞的分離培養(yǎng) 參照已發(fā)表的方法[5],以出生1~3 d的SD乳鼠心室肌組織為實驗對象,0.1%胰酶消化分離,MEM培養(yǎng)基(含15%胎牛血清)混懸后放CO2培養(yǎng)箱(5%CO2,37℃)孵育2 h去除成纖維細胞,然后分別按5×105cells·well-1、1×105cells·well-1接種于 6 孔、96 孔培養(yǎng)板,隔天換培養(yǎng)液,前3 d加入0.1 mmol·L-1Brdu抑制纖維細胞生長。培養(yǎng)4 d隨機分組進行實驗。
1.4 實驗分組 細胞隨機分4組:(1)對照組(Control):未轉(zhuǎn)染質(zhì)粒及未經(jīng)LPS處理組;(2)LPS組:終濃度為10 mg·L-1的LPS加至培養(yǎng)液,孵育6 h;(3)pFLAG+LPS組:空載質(zhì)粒pFLAG轉(zhuǎn)染至心肌細胞中,24 h后處理同LPS組。(4)pFLAG-14-3-3γ+LPS組:重組質(zhì)粒pFLAG-14-3-3γ轉(zhuǎn)染至心肌細胞中,24 h后處理同LPS組。每組重復6次。
1.5 細胞存活率 MTT比色法檢測細胞存活率。胰酶消化細胞,每組細胞以1×104cells·well-1濃度接種至96孔培養(yǎng)板中。細胞融合至80%左右開始檢測。吸棄原培養(yǎng)基,每孔加入20 μl MTT溶液(5 g·L-1溶于 PBS),37℃,4 h,然后每孔加 DMSO 150 μl振蕩10 min,使藍色結(jié)晶充分溶解,在490 nm波長處測定其光吸收值(OD值)。
1.6 生化檢測 各組處理結(jié)束后取上清200 μl,生化自動分析儀檢測LDH活性。
1.7 流式細胞法檢測心肌細胞凋亡 4℃預冷的PBS洗滌細胞 2次,加入 0.25%胰蛋白酶(含0.02%EDTA)消化、收集細胞,以 10 μmol·L-1DCFH-DA溶液500 μl重懸細胞,37℃孵育30 min,離心,800×g,5 min,棄上清,PBS 洗滌細胞 2 次,制成1×108cells·L-1的懸液,以488 nm為激發(fā)波長,以530 nm為發(fā)射波長,行流式細胞儀檢測。以不加DCFH-DA的一管為陰性對照。
1.8 mPTP開放檢測 參照試劑盒分離心肌細胞線粒體,線粒體腫脹實驗檢測mPTP的開放。520 nm波長測各組吸光度初值(OD1),加入200 μmol·L-1CaCl2誘導mPTP開放,20 min后吸光度不再變化,記錄此時吸光度值(OD2),△OD=OD1-OD2?!鱋D/min×100/%表示mPTP開放程度。
1.9 Western blot 實驗結(jié)束后,加入三去污劑裂解液裂解細胞,提取總蛋白,同等量蛋白質(zhì)完成SDS-PAGE后,進行電轉(zhuǎn)膜,再先后結(jié)合一抗和二抗,最后X線膠片曝光分析。
1.10 數(shù)據(jù)處理 應(yīng)用SPSS 11.5統(tǒng)計軟件行組間方差分析,各實驗組數(shù)據(jù)以±s表示。
2.1 pFLAG-14-3-3γ 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染對LPS損傷后14-3-3γ蛋白表達的影響 LPS損傷處理使14-3-3γ蛋白表達較對照組明顯上調(diào)(P<0.01);轉(zhuǎn)染空載質(zhì)粒后行LPS處理,14-3-3γ蛋白表達與LPS處理組基本一致(P>0.05);轉(zhuǎn)染重組質(zhì)粒pFLAG-14-3-3γ后行LPS處理,14-3-3γ蛋白表達較之LPS處理組及轉(zhuǎn)染空載質(zhì)粒組上調(diào)(P<0.01),表明pFLAG-14-3-3γ質(zhì)粒成功轉(zhuǎn)染至心肌細胞(Fig 1)。
Fig 1 Effect of recombinant plasmid pFLAG-14-3-3γ on expression of 14-3-3γ protein in cardiomyocyte subjected to LPS injury(±s,n=6)
2.2 pFLAG-14-3-3γ質(zhì)粒轉(zhuǎn)染對LPS損傷后心肌細胞存活率、LDH活性的影響 LPS處理使心肌細胞存活率明顯下降,LDH活性明顯升高(P<0.01)。pFLAG-14-3-3γ轉(zhuǎn)染至心肌細胞后行LPS處理,與LPS處理組及轉(zhuǎn)染空載質(zhì)粒組相比較,心肌細胞存活率明顯升高,LDH活性則明顯下降(P<0.01,見Tab 1)。
Tab 1 Effects of recombinant plasmid pFLAG-14-3-3γ on cell viability and LDH activity in cardiomyocytes subjected to LPS injury(±s,n=6)
Tab 1 Effects of recombinant plasmid pFLAG-14-3-3γ on cell viability and LDH activity in cardiomyocytes subjected to LPS injury(±s,n=6)
**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs LPS group.
Group MTT(optical density)/% LDH/IU·L -1 Control 95.74 ±7.17 2.56 ±0.33 LPS 25.68 ±3.45** 37.38 ±4.16**pFLAG+LPS 21.47 ±3.19** 40.21 ±4.37**pFLAG-14-3-3γ +LPS 61.22 ±4.52## 21.57 ±3.45##
2.3 pFLAG-14-3-3γ質(zhì)粒轉(zhuǎn)染對LPS損傷后心肌細胞凋亡的影響 LPS處理使凋亡的心肌細胞明顯增加(P<0.01),pFLAG-14-3-3γ轉(zhuǎn)染至心肌細胞后行LPS處理,較之LPS處理組或轉(zhuǎn)染空載質(zhì)粒組凋亡的心肌細胞則明顯減少(P<0.01,見Fig 2)。綜合Tab 1和Fig 2之結(jié)果,提示pFLAG-14-3-3γ質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至心肌細胞能明顯提高心肌細胞對抗LPS損傷的能力。
Fig 2 Effect of recombinant plasmid pFLAG-14-3-3γ on apoptosis in cardiomyocyte subjected to LPS injury(±s,n=6)
2.4 pFLAG-14-3-3γ 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染對 LPS損傷后mPTP開放的影響 mPTP越開放,線粒體通透性隨之增加,線粒體腫脹加重,吸光度逐漸下降。LPS處理后,△OD/min值較正常對照組明顯升高(P<0.01),提示LPS處理能使mPTP開放,線粒體通透性增加。轉(zhuǎn)染pFLAG-14-3-3γ后,較之未轉(zhuǎn)染組或轉(zhuǎn)染空載質(zhì)粒組,LPS所致的mPTP開放明顯被抑制,△OD/min值明顯下降(P<0.01,見Fig 3)
Fig 3 Effect of recombinant plasmid pFLAG-14-3-3γ on mPTP opening in cardiomyocyte subjected to LPS injury(±s,n=6)
2.5 pFLAG-14-3-3γ質(zhì)粒轉(zhuǎn)染對LPS損傷后心肌細胞Bad、phospho-Bad表達的影響 由Fig 4可得:各組Bad蛋白表達無差異(P>0.05);LPS損傷組phospho-Bad蛋白表達與正常組相比亦無明顯變化(P>0.05);轉(zhuǎn)染重組質(zhì)粒14-3-3γ之后,phospho-Bad蛋白水平明顯升高,與未轉(zhuǎn)染質(zhì)粒組或轉(zhuǎn)染空載質(zhì)粒組相比,差異有顯著性(P<0.01)。提示重組質(zhì)粒pFLAG-14-3-3γ能促進Bad的磷酸化(Fig 4)。
2.6 pFLAG-14-3-3γ質(zhì)粒轉(zhuǎn)染對LPS損傷后心肌細胞線粒體Bcl-2表達的影響 LPS處理組與對照組相比,線粒體Bcl-2無明顯變化(P>0.05),轉(zhuǎn)染重組質(zhì)粒pFLAG-14-3-3γ組,較之未轉(zhuǎn)染組,線粒體Bcl-2表達明顯增加(P<0.01)。提示pFLAG-14-3-3γ重組質(zhì)粒的轉(zhuǎn)染能促進Bcl-2的線粒體移位(Fig 5)。
Fig 4 Effect of recombinant plasmid pFLAG-14-3-3γ on expression of Bad and phospho-Bad protein in cardiomyocyte subjected to LPS injury(±s,n=6)
Fig 5 Effect of recombinant plasmid pFLAG-14-3-3γ on expression of Bcl-2 protein of mitochondria in cardiomyocyte subjected to LPS injury(±s,n=6)
當心肌細胞遭受損傷時,線粒體膜的通透性發(fā)生改變致使其內(nèi)的凋亡物質(zhì)釋放入胞質(zhì)中,在決定細胞命運過程中發(fā)揮了關(guān)鍵性的作用[6]。其中,線粒體的通透性主要由mPTP調(diào)控[7]。mPTP是一個跨膜、多蛋白復合物孔道,主要由電壓依賴性陰離子通道(voltage-dependent anion channel,VDAC)、腺苷酸轉(zhuǎn)位子(adenine nucleotide translocator,ANT)、親環(huán)蛋白D(cyclophilin D)等構(gòu)成的蛋白復合物,是線粒體內(nèi)外信息交流的關(guān)鍵,也稱為線粒體的刺激感受器[8]。當外界刺激造成mPTP大量(或長時間)開放,造成線粒體基質(zhì)呈高滲狀態(tài),出現(xiàn)基質(zhì)腫脹[9]。由于線粒體的外膜面積遠小于內(nèi)膜,當mPTP大量(或長時間)開放,出現(xiàn)明顯的基質(zhì)腫脹,并造成嵴伸展,最終會引起外膜的破裂和線粒體不可逆的損傷,從而使膜間隙中的促凋亡蛋白釋放至胞質(zhì),通過啟動半胱天冬氨酸蛋白酶(caspase)依賴性或非依賴性的級聯(lián)反應(yīng)機制,誘導細胞凋亡或者壞死[10]。本實驗已證實,LPS損傷會使mPTP開放,線粒體吸光度下降,△OD/min值升高。而轉(zhuǎn)染重組質(zhì)粒pFLAG-14-3-3γ以后,mPTP開放被抑制,損傷大大被減輕。
14-3-3蛋白是存在于幾乎所有生物體細胞中的一類重要蛋白質(zhì)家族,作為細胞內(nèi)磷酸化作用的重要因子,參與許多病理生理的調(diào)節(jié)過程[11]。已有研究證實14-3-3可使Bad蛋白S112、S136位點磷酸化,從而釋放出Bad/Bcl-2二聚體中的Bcl-2,游離的Bcl-2移位至線粒體,對線粒體的通透性起調(diào)控作用。本研究結(jié)果顯示,LPS損傷雖可在一定程度上調(diào)心肌細胞14-3-3γ蛋白內(nèi)源性的表達,但是對phospho-Bad、線粒體Bcl-2卻無明顯影響。據(jù)此,可以推斷LPS損傷雖可誘導14-3-3 γ蛋白內(nèi)源性表達小幅度的上調(diào),但是僅作為細胞對外源性刺激的一個應(yīng)激反應(yīng),其不足以對抗LPS所造成綜合損傷,至少無法發(fā)揮其磷酸化Bad蛋白功能及其后續(xù)的功能學之作用;而轉(zhuǎn)染重組質(zhì)粒pFLAG-14-3-3γ之后行LPS損傷,phospho-Bad表達水平升高,線粒體Bcl-2增加,同時mPTP開放被抑制,細胞損傷明顯減輕,則提示外源性的14-3-3γ基因的導入,不僅在表達水平上進一步上調(diào)14-3-3γ,且具有良好的磷酸化BadS112之作用及其增強心肌細胞對抗LPS損傷之能力。
綜上所述,我們的實驗結(jié)果證實了LPS所致的心肌細胞損傷不依賴于Bad/Bcl-2對線粒體通透性的影響,但是轉(zhuǎn)染重組質(zhì)粒pFLAG-14-3-3γ,可通過增加對Bad的磷酸化,使更多的Bcl-2移位至線粒體,從而對抗LPS損傷所致的心肌細胞損傷。
[1]He M,Zhang J,Shao L,et al.Upregulation of 14-3-3 isoforms in acute rat myocardial injuries induced by burn and lipopolysaccharide[J].Clin Exp Pharmacol Physiol,2006,33(4):374-80.
[2]Tsutsui H,Kinugawa S,Matsushima S.Oxidative stress and heart failure[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2011,301(6):H2181-90.
[3]Hüttemann M,Helling S,Sanderson T H,et al.Regulation of mitochondrial respiration and apoptosis through cell signaling:cytochrome c oxidase and cytochrome c in ischemia/reperfusion injury and inflammation[J].Biochim Biophys Acta,2012,1817(4):598-609.
[4]Aitken A.14-3-3 proteins:a historic overview[J].Semin Cancer Biol,2006,16(3):162-72.
[5]劉 丹,尹 東,廖章萍,等.p38MAPK/14-3-3γ 通路在LPS預處理對抗心肌細胞缺氧/復氧損傷中的作用[J].中國藥理學通報,2012,28(29):1239-43.
[5]Liu D,Yin D,Liao Z P,et al.p38MAPK/14-3-3γ signal pathway may be involved in LPS preconditioning against cardiomyocytes anoxia/reoxygenation injury[J].Chin Pharmacol Bull,2012,28(29):1239-43.
[6]Hollander J M,Baseler W A,Dabkowski E R.Proteomic remodeling of mitochondria in heart failure[J].Congest Heart Fail,2011,17(6):262-8.
[7]Kinnally K W,Peixoto P M,et al.Is mPTP the gatekeeper for necrosis,apoptosis,or both[J].Biochim Biophys Acta,2011,1813(4):616-22.
[8]Javadov S,Hunter J C,Barreto-Torres G,et al.Targeting the mitochondrial permeability transition:cardiac ischemia-reperfusion versus carcinogenesis[J].Cell Physiol Biochem,2011,27(3-4):179-90.
[9]Morin D,Assaly R,Paradis S,et al.Inhibition of mitochondrial membrane permeability as a putative pharmacological target for cardioprotection[J].Curr Med Chem,2009,16(33):4382-98.
[10]Akopova O V,Kolchinskaya L I,Nosar V I,et al.Cytochrome C as an amplifier of ROS release in mitochondria[J].Fiziol Zh,2012,58(1):3-12.
[11]Zhao J,Meyerkord C L,Du Y,et al.14-3-3 proteins as potential therapeutic targets[J].Semin Cell Dev Biol,2011,22(7):705-12.