黃雅瓊,石德順,陳旭健,李家洲,曾詩媛,謝秋季,趙仕花,阮桂文
(1.玉林師范學(xué)院 生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,廣西 玉林 537000 ;2.廣西大學(xué) 動(dòng)物繁殖研究所,廣西 南寧 530005)
在生產(chǎn)實(shí)踐中,由于各種因素的影響,造成體細(xì)胞核移植效率低下的問題非常嚴(yán)重,制約了該技術(shù)的進(jìn)一步發(fā)展和應(yīng)用。供核體細(xì)胞是影響核移植效率的關(guān)鍵因素之一[1]。血清饑餓誘導(dǎo)G0期是哺乳動(dòng)物體細(xì)胞核移植克隆成功的必要步驟[2]。誘導(dǎo)細(xì)胞進(jìn)入G1和G2/M等時(shí)期可得到克隆后代[3-4]。血清饑餓處理供體細(xì)胞成為眾多研究者首選的方法[5]。在各種影響因素中,體細(xì)胞和卵母細(xì)胞細(xì)胞周期協(xié)調(diào)更是體細(xì)胞核移植最為關(guān)鍵的環(huán)節(jié)[6]。目前,卵母細(xì)胞體外發(fā)育質(zhì)量及培養(yǎng)體系仍不完善,需進(jìn)一步提高核移植重構(gòu)胚的體外發(fā)育的潛能。本研究探討了胎兒成纖維細(xì)胞的不同處理方式等相關(guān)因素對(duì)核移植重構(gòu)胚胎發(fā)育能力的影響,以期提高豬體細(xì)胞核移植重構(gòu)胚胎的發(fā)育潛力。
卵母細(xì)胞的采集和成熟培養(yǎng)采用黃雅瓊等[7-8]介紹的方法,將屠宰場采集的青年母豬的卵巢放在38 ℃加熱板上,抽取卵巢表面卵泡內(nèi)的卵泡液和卵母細(xì)胞,在體視顯微鏡下挑選并收集具有完整卵丘細(xì)胞層和部分致密卵丘細(xì)胞的卵母細(xì)胞(卵丘-卵母細(xì)胞復(fù)合體)。在1 mL含有促卵泡素(FSH)0.1 μg/mL的成熟培養(yǎng)液(無血清的TCM-199基礎(chǔ)液+10%PFF+0.1%mg/mL cysteine)的培養(yǎng)液中,38.5 ℃、5% CO2和100%濕度的條件下,培養(yǎng)卵母細(xì)胞22~24 h,接著在不含F(xiàn)SH的成熟培養(yǎng)液中成熟培養(yǎng)22~24 h。培養(yǎng)44~48 h后,卵母細(xì)胞復(fù)合體用100 μL的移液槍反復(fù)輕輕吹打或者放入0.1%透明質(zhì)酸酶5 min,除去顆粒細(xì)胞,然后逐一檢查第一極體(PB1)的排出情況,計(jì)算第一極體排出率,并以此計(jì)算卵母細(xì)胞的體外成熟率。
排出第一極體的卵母細(xì)胞首先放入5 μmol/L ionomycin(離子酶素:ION)中激活5 min,然后將清洗后的卵母細(xì)胞放入含有2 mmol/L 6-DMAP(6-二甲氨基嘌呤)中的培養(yǎng)液中培養(yǎng)3~4 h。
豬胎兒成纖維細(xì)胞作為供體細(xì)胞,胎兒成纖維細(xì)胞的收集方法參照文獻(xiàn)[9-10]。首先用PBS溶液清洗干凈胎兒組織,剪碎成1 mm3大小的組織塊,在37 ℃、5%CO2、100%濕度條件下貼壁培養(yǎng)于10%FCS的DMEM(Dulbecco's Modified Eagle's Medium)培養(yǎng)液中。當(dāng)80%以上胎兒成纖維細(xì)胞細(xì)胞匯合后,用無Ca2+,Mg2+的PBS清洗原代細(xì)胞,再用0.25%胰蛋白酶的Hank's液2~3 mL消化3~5 min使胎兒纖維細(xì)胞分離,中止消化后,將胎兒成纖維細(xì)胞離心洗滌(800×g,5 min),加入10%FCS的DMEM培養(yǎng)液中,制成1.0×106個(gè)細(xì)胞/mL的懸浮液,即可多次進(jìn)行接種培養(yǎng)和傳代。
將卵母細(xì)胞輕輕吹打或放入含0.1%透明質(zhì)酸酶的培養(yǎng)液中輕輕反復(fù)吹打,除去卵母細(xì)胞外顆粒細(xì)胞后獲得裸卵,挑選其中具有第一極體、細(xì)胞質(zhì)均勻的成熟良好的卵母細(xì)胞移入含有5 μg/mL細(xì)胞松弛素B+TCM199+5 mmol/L Hepes+5 mmol/L NaHCO3+5%OCS的培養(yǎng)液中,置于顯微操作儀的載物臺(tái)上。用盲吸法去核和Hochest33342染色法進(jìn)行染色[8-9],確認(rèn)去核后的卵母細(xì)胞放入胚胎培養(yǎng)液(NCSU-23+0.3%BSA)中30 min促進(jìn)形態(tài)的恢復(fù)。用含有0.25%胰蛋白酶消化分離和處理胎兒成纖維細(xì)胞,將纖維細(xì)胞和恢復(fù)后的卵母細(xì)胞移入操作盤,構(gòu)建卵母細(xì)胞-胎兒成纖維細(xì)胞復(fù)合體。
將卵母細(xì)胞-胎兒成纖維細(xì)胞復(fù)合體放在融合液0.28 mol/L甘露醇+0.05 mmol/LCaCl2+0.1mmol/LMgSO4+5 mmol/LHepes+0.1%BSA+5mg/L酚紅溶液中,施加電流進(jìn)行融合。在38.5℃、5%CO2、100%濕度的條件下培養(yǎng)電融合后的卵母細(xì)胞-供體細(xì)胞復(fù)合體30 min~60 min,在顯微鏡下檢查融合情況,注入卵周隙的胎兒成纖維細(xì)胞進(jìn)入去核后的卵母細(xì)胞的胞質(zhì)內(nèi),卵母細(xì)胞與供體細(xì)胞融合為一體即為重構(gòu)胚胎。計(jì)錄各組融合數(shù)及融合率[11]。將融合激活后的重構(gòu)胚胎用豬胚胎培養(yǎng)液NCSU-23(North Carolina State University-23,NCSU-23)溶液在38.5 ℃,含5%CO2的空氣和100%濕度的條件下培養(yǎng)48 h后觀察分裂率。每2 d將進(jìn)行重構(gòu)胚胎培半換液1次,6~9 d記錄囊胚率。重構(gòu)胚胎的融合率為融合卵數(shù)/NT卵數(shù)的比率;重構(gòu)胚胎的卵裂率為分裂卵數(shù)/培養(yǎng)卵數(shù)的比率;重構(gòu)胚胎的囊胚率為囊胚發(fā)育卵數(shù)/分裂卵數(shù)的比率。
試驗(yàn)一:采用血清饑餓法和接觸抑制法誘導(dǎo)第6代胎兒成纖維細(xì)胞進(jìn)入G0/G1期,以70%~80%匯合的胎兒成纖維細(xì)胞作對(duì)照組,進(jìn)行70%~80%接觸、完全接觸抑制法(100%長滿)和血清饑餓法(0.5%FCS+DMEM)比較,探討三種處理胎兒成纖維細(xì)胞的方法對(duì)重構(gòu)胚胎體外發(fā)育的影響。
試驗(yàn)二:分別用常規(guī)傳代消化、4 ℃冷藏和冷凍-解凍的第6代胎兒成纖維細(xì)胞作為供體細(xì)胞,分析核移植胚胎的發(fā)育潛力。
試驗(yàn)三:分別用酶消化法和組織塊法分離培養(yǎng)的胎兒成纖維細(xì)胞作為供體細(xì)胞構(gòu)建核移植胚胎,分析不同方法對(duì)核移植胚胎發(fā)育潛力的影響。
所有試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用INSTAT統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行卡方(x2)分析檢驗(yàn)。
胎兒成纖維細(xì)胞不同傳代的培養(yǎng)方法對(duì)核移植胚胎發(fā)育潛力的影響見表1。由表1知,完全接觸抑制組融合率較高,與對(duì)照組相比差異顯著(P<0.05),接觸抑制組分裂率與血清饑餓組分裂率相比,差異顯著(P<0.05),但各組之間的囊胚率差異不顯著(P>0.05)。70%~80%接觸、完全接觸抑制法(100%長滿)和血清饑餓法(0.5%FCS+DMEM)是三種調(diào)節(jié)供體細(xì)胞進(jìn)入G0/G1期的有效的同期化處理胎兒成纖維細(xì)胞作為供體的方法。
在常規(guī)消化(Routine Digestion)情況中,即正常傳代消化分離的胎兒成纖維細(xì)胞直接用,一部分收集于Eppendorf離心管中,放于4 ℃冷藏,液氮( 196 ℃)冷凍解凍(37 ℃)的胎兒成纖維細(xì)胞復(fù)蘇后收集做為供體細(xì)胞,構(gòu)建重構(gòu)胚胎。三種方法的結(jié)果見表2。由表2知,豬胎兒成纖維細(xì)胞冷凍解凍后的核移植分裂率和囊胚發(fā)育率均顯著低于新鮮和4 ℃冷藏的細(xì)胞(P<0.05)。雖然融合率無顯著差異(P>0.05),但豬胎兒成纖維細(xì)胞解凍后不宜直接進(jìn)行核移植。
表1 胎兒成纖維細(xì)胞的不同傳代的培養(yǎng)方法對(duì)核移植胚胎發(fā)育潛力的影響Table 1 Effects of different passage culture methods of fetal fibroblasts on embryos developmentalcapacity of porcine somatic cells nuclear transfer
注:同列數(shù)據(jù)肩標(biāo)為不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05),無字母或相同小寫字母表示差異不顯著(P>0.05);括號(hào)內(nèi)數(shù)字分別是融合率、分裂卵率、囊胚率。下同。
Note:Values with different small letter superscripts in the same column mean significant difference(P>0.05),while those with the same letter or without superscripts mean insignifiant difference(P>0.05);Numbers in the brackets are respectively fusion rate, cleavage rate and blastocyst rate.The same below.
表2 不同方法處理的胎兒成纖維細(xì)胞對(duì)核移植胚胎發(fā)育潛力的影響Table 2 Effects of different treatment methods of fetal fibroblasts on embryos developmental capacity of porcine somatic cells nuclear transfer
用組織塊和酶消化法分離培養(yǎng)的胎兒成纖維細(xì)胞對(duì)核移植胚胎發(fā)育潛力的影響見表3。表3表明,兩種分離方法分離得到的胎兒成纖維細(xì)胞構(gòu)建的重構(gòu)胚胎在融合率、分裂率和囊胚率方面沒有顯著差異(P>0.05)。組織塊和酶消化法分離方法均是分離培養(yǎng)的胎兒成纖維細(xì)胞細(xì)胞的方法。
表3 胎兒成纖維細(xì)胞不同分離培養(yǎng)方法對(duì)重構(gòu)胚胎發(fā)育潛力的影響Table 3 Effects of different cell dissociate culture methods of fetal fibroblasts on embryos developmental capacity of porcine somatic cells nuclear transfer
調(diào)節(jié)細(xì)胞周期的方法有血清饑餓法、接觸抑制法、誘導(dǎo)法及輔助用化學(xué)試劑調(diào)節(jié)等方法。目前,血清饑餓法、接觸抑制法較常用,很多克隆動(dòng)物都由這兩種方法獲得[12-14]。血清饑餓法是經(jīng)典的調(diào)節(jié)細(xì)胞周期的方法,首例體細(xì)胞克隆綿羊“Dolly”等多種動(dòng)物克隆成功都是采用將供體細(xì)胞調(diào)節(jié)至G0/G1期而實(shí)現(xiàn)[15-18]。Beyhan等[19]和Ono等[20]研究表明,供體細(xì)胞處于G0/G1狀態(tài)下有利于核移植重構(gòu)胚胎發(fā)育。因此,供體細(xì)胞處于G0/G1階段是體細(xì)胞核移植重構(gòu)胚胎進(jìn)行重編,啟動(dòng)發(fā)育的重要因素。通??衫眉?xì)胞貼壁生長接觸抑制的特性將其調(diào)節(jié)到G0/G1期,體細(xì)胞在體外貼壁培養(yǎng)并接觸抑制時(shí),70%左右的細(xì)胞處于G0/G1期的細(xì)胞生長周期內(nèi)[21-23],100%匯合的供體細(xì)胞自然停止生長,其細(xì)胞周期達(dá)到靜止期。本試驗(yàn)結(jié)果表明,胎兒成纖維細(xì)胞在完全接觸抑制組的融合率較高,接觸抑制組分裂率顯著高于血清饑餓組,但不同處理間的囊胚率差異不顯著。血清饑餓處理的細(xì)胞DNA碎片明顯較高,影響核移植的效率[23-24]。Bochenek等[25]研究表明,血清饑餓處理并不能顯著增加成纖維細(xì)胞處于G0/G1期細(xì)胞的比率。Kues等[23]研究證實(shí),血清饑餓培養(yǎng)時(shí)間延長會(huì)導(dǎo)致大量的DNA碎裂;降低培養(yǎng)液中血清濃度可以盡量維持細(xì)胞不分化的狀態(tài),降低細(xì)胞的生長速度,調(diào)節(jié)細(xì)胞生長狀態(tài),不發(fā)生增殖,從而使細(xì)胞達(dá)到周期一致。血清饑餓處理對(duì)囊胚的早期發(fā)育沒有明顯的促進(jìn)[26-29]。誘導(dǎo)細(xì)胞進(jìn)入G1和G2/M等時(shí)期可得到克隆后代[3-4]。Vignon等[30]和Cibelli 等[31]等不經(jīng)血清饑餓同樣得到了克降動(dòng)物,這說明供體細(xì)胞可以不需要血清饑餓。Kasinathan等[3]研究發(fā)現(xiàn),分別從25%和100%匯合程度人供體細(xì)胞分離出來的G1期細(xì)胞為供體細(xì)胞,其重構(gòu)胚胎的囊胚的細(xì)胞數(shù)量和囊胚率都沒有明顯區(qū)別。這說明可能細(xì)胞的匯合程度并不能做為判斷細(xì)胞周期同期化程度的標(biāo)準(zhǔn)。多數(shù)研究者均認(rèn)為,血清饑餓和接觸抑制可以提高供體細(xì)胞處于G0/G1周期階段的數(shù)量,G0/G1周期階段的供體細(xì)胞有利于重構(gòu)胚胎的發(fā)育和克隆動(dòng)物的成功[15-19]。
Boquest等[22]認(rèn)為沒有一種最佳方法調(diào)節(jié)細(xì)胞周期完全達(dá)到(100% G0/G1)周期同步的要求,而Woods等[5]采用血清饑餓的方法處理供體細(xì)胞。本試驗(yàn)研究結(jié)果表明,胎兒成纖維細(xì)胞70%~80%接觸、完全接觸抑制法(100%長滿)和血清饑餓法(0.5%FCS + DMEM)三種方法均可有效地同期化供體細(xì)胞周期。對(duì)于供體細(xì)胞周期的問題,Enright等[32]建議通過監(jiān)測(cè)細(xì)胞周期同期化建立預(yù)測(cè)克隆胚胎命運(yùn)的模型。對(duì)于供體細(xì)胞的周期同步調(diào)節(jié)問題上,細(xì)胞的處理方法、血清的成分、血清濃度、血清培養(yǎng)時(shí)間、細(xì)胞生長的最佳密度、細(xì)胞生長的合適時(shí)間、促進(jìn)細(xì)胞生長的調(diào)節(jié)因子、細(xì)胞生長的影響因素、影響細(xì)胞生長的處理和調(diào)控方法等還需要進(jìn)一步研究。
使用胎兒成纖維細(xì)胞為供體,探討在常規(guī)消化法、4 ℃冷藏法和液氮( 196 ℃)冷凍與解凍(37 ℃)法處理后,對(duì)豬重構(gòu)胚胎發(fā)育潛力。常規(guī)消化法和冷藏方法可有效處理胎兒成纖維細(xì)胞。Liu等[33]成功得到了冷藏2~5 d后的牛囊胚;Guo等[34]成功得到了冷藏細(xì)胞克隆的山羊后代。據(jù)王立芳[35]報(bào)道,成功得到冷凍細(xì)胞克隆的種間水牛。張運(yùn)海[29]研究表明,冷藏的細(xì)胞支持囊胚發(fā)育效率沒有受到不利影響,也獲得首例用冷藏的豬體細(xì)胞表達(dá)綠色熒光蛋白的克隆囊胚。新鮮解凍的供體細(xì)胞步驟較復(fù)雜,可利用的傳代次數(shù)也不多,效率低,所以人們通過冷凍/解凍供體細(xì)胞的方法來保證核移植的供體細(xì)胞的需要。本試驗(yàn)中,對(duì)胎兒成纖維細(xì)胞冷凍/解凍后,發(fā)現(xiàn)冷凍效果不理想,可能是大部分細(xì)胞受到了冷凍損傷,造成重構(gòu)胚胎的卵裂率降低;豬胎兒成纖維細(xì)胞冷凍解凍后的核移植分裂率和囊胚發(fā)育率均顯著低于新鮮和4 ℃冷藏的細(xì)胞,說明豬胎兒成纖維細(xì)胞解凍后不宜直接進(jìn)行核移植。本試驗(yàn)中胎兒成纖維細(xì)胞所構(gòu)建的核移植重構(gòu)胚胎出現(xiàn)分裂到細(xì)胞的不同階段,沒有得到冷凍解凍后的胎兒成纖維細(xì)胞構(gòu)建的核移植囊胚。其原因可能是胎兒成纖維細(xì)胞在冷凍解凍過程中,胎兒成纖維細(xì)胞冷凍所形成的細(xì)胞內(nèi)的冰晶融解后,對(duì)胎兒成纖維細(xì)胞的亞顯微結(jié)構(gòu)成一定程度的損壞,胎兒成纖維細(xì)胞的由于冷凍損傷而活力下降。另外,由于使用方法不同及條件差異,造成試驗(yàn)結(jié)果不盡相同,本試驗(yàn)中,胎兒成纖維細(xì)胞冷凍解凍的重構(gòu)胚胎不能發(fā)育至囊胚階段。
酶消化法和組織塊培養(yǎng)法是常規(guī)的細(xì)胞分離培養(yǎng)方法。王啟鳳等[36]利用胰蛋白酶消化供體細(xì)胞易受pH、溫度、組織的硬度以及酶的濃度、消化時(shí)間和消化液濃度等因素的影響,導(dǎo)致細(xì)胞損傷,不易貼壁。因此,在使用酶消化法分離的細(xì)胞作為供體細(xì)胞時(shí),會(huì)影響核移植胚胎的發(fā)育潛力。組織塊培養(yǎng)法獲得細(xì)胞生長狀態(tài)良好,形態(tài)規(guī)則整齊,取材方便,成本低,但原代細(xì)胞生長慢,細(xì)胞傳代時(shí)間長。研究表明,組織塊的采樣為1 cm2左右為宜,這可降低對(duì)動(dòng)物健康狀況和應(yīng)用價(jià)值的影響[37-40]。蔡文琴[41]研究發(fā)現(xiàn),組織塊法進(jìn)行培養(yǎng)可提高培養(yǎng)成功率。本試驗(yàn)中,采用酶消化法和組織塊法分離得到的供體細(xì)胞構(gòu)建的重構(gòu)胚胎的融合率(60.15%和67.72%)、分裂率(64.34%和60.63%)和囊胚率(17.39%和14.92%)沒有顯著差異,這說明兩種胎兒成纖維細(xì)胞分離培養(yǎng)方法均為有效的分離培養(yǎng)方法,可支持重構(gòu)胚胎的構(gòu)建和發(fā)育。
結(jié)果表明,100%長滿匯合培養(yǎng)是較好的豬胎兒成纖維細(xì)胞培養(yǎng)處理方法;豬胎兒成纖維細(xì)胞解凍后不宜直接進(jìn)行核移植;組織塊法和酶消化法均可用于分離培養(yǎng)豬體細(xì)胞核移植的胎兒成纖維細(xì)胞。
參考文獻(xiàn):
[1] Oback B, Wells D. Donor cells for nuclear cloning: many are celled, but few are chosen[J].Cloning Stem Cells,2002,4(2):147-168.
[2] Willmut I, Campbell K H. Quiescence in nuclear transfer[J]. Science,1998, 281: 1611.
[3] Kasinathan P, Knott J G, Moreira P, et al. Effects of fibrobalst donor cell age and cell cycle on development of bovine nuclear transfer in vitro[J]. Biol Reprod,2001, 64: 1 487-1 493.
[4] Lai L X, Kolber-Simonds D, Park R J, et al. Production of α-1,3-galactosyltransferase knockout pigs by nuclear transfer cloning[J]. Science, 2002, 295:1 089-1 092.
[5] Woods G L, White K L, Vanderwall D K, et al. A mule cloned from fetal cells by nuclear transfer[J]. Science,2003, 301:1063.
[6] 李勁松,韓之明,朱子玉,等.未經(jīng)休眠處理的體細(xì)胞用于異種核移植(簡報(bào))[J].實(shí)驗(yàn)生物學(xué)報(bào),2002,35(1):62-65.
[7] 黃雅瓊,石德順,譚世儉,等.豬卵母細(xì)胞體外成熟和孤雌培養(yǎng)體系的建立和優(yōu)化[J].中國畜牧雜志,2007,43(7):13-16.
[8] 黃雅瓊,石德順,張曉溪,等.豬卵母細(xì)胞體外成熟的發(fā)育潛力及核移植重構(gòu)胚構(gòu)建方法的研究[J].基因組學(xué)與應(yīng)用生物學(xué),2009,28(5):835-844.
[9] 黃雅瓊,王曉麗,崔奎青,等.豬卵丘細(xì)胞和胎兒成纖維細(xì)胞的分離培養(yǎng)及傳代[J].中國獸醫(yī)科學(xué),2007,37(3): 255-259.
[10] 黃雅瓊,石德順,陳旭健,等.供體細(xì)胞形態(tài)、直徑和傳代次數(shù)對(duì)豬體細(xì)胞核移植效果的影響[J].中國獸醫(yī)科學(xué),2011,41(5):530-535.
[11] 黃雅瓊,石德順,陳旭健,等.供體細(xì)胞種類及性別對(duì)豬體細(xì)胞核移植效果的影響[J].中國畜牧雜志,2011,47(11):25-28.
[12] Kubota C, Yamakuchi H, Todoroki J, et al. Six cloned calves produced from adult fibroblast cells after long-term culture[J]. Proc Natl Acad Sci USA,2000,97:990-995.
[13] Shin T, Kraemer D, Pryor J, et al. A cat cloned by nuclear transplantation[J]. Nature,2002, 415:859.
[14] Lee B C, Kim M K, Jang G, et al. Dog cloned form adult somatic cells[J]. Nature,2005(4):436:641.
[15] Collas P, Balise J J,Robl J M. Influence of cell cycle stage of donor nucleus on development of nuclear transplant rabbit embryos[J]. Biol Reprod,1992,46: 492-500.
[16] Campbell K H, Loi P, Otaegui P J, et al. Cell cycle co-ordination in embryo cloning by nuclear transfer[J]. Dev Reprod,1996,1(1):40-46.
[17] Wilmut I, Schnieke A E, Mcwhir J, et al. Viable offspring derived from fetal and adult mammalian cells[J]. Nature,1997, 385: 810-813.
[18] Wakayama T, Perry A C F, Zueeotti M,et al. Full-term development of mice from enucleated oocytes infected with cumulus cell nuclei[J]. Nature,1998, 394:369-374.
[19] Beyhan Z, Mitalipova M, Chang T, et al. Developmental potential of bovine nuclear transfer embryos produced using different types of adult donor cells[J]. Theriogenology,2000, 53: 210.
[20] Ono Y, Shimozawa N, Ito M, et al. Cloned mice from fetal fibroblast cells arrested at metaphase by a serial nuclear transfer[J]. Biol Reprod , 2001, 64:44-50.
[21] Prather R S, Boquest A C, Day B N. Cell cycle analysis of cultured procine mammol/Lary cells[J]. Cloning,1996, 1:17-24.
[22] Boquest A C, Day B N,Prather R S. Flow cytometric cell cycle analysis of cultured porcine fetal fibroblast cells[J]. Biol Reprod,1999, 60: 1 013-1 019.
[23] Kues W A, Anger M, Carnwath J W, et al. Cell synchronization of porcine fetal fibroblasts: Effects of serum deprivation and reverible cell cycle inhibitors[J]. Biol Reprod,2000, 62: 412-419.
[24] Peura T T. Serum starvation can cause excessive DNA damage in sheep fetal fibroblasts[J]. Theriogenology,2001,55(5):285.
[25] Bochenek M, Katska L, Kania G, et al. Cell cycle analysis of somatic cell lines in the cloning of the domestic cat[J]. Theriogenology,2001, 55: 256.
[26] Kuhholzer B, Hawley R J, Lai L, et al. Clonal lines of transgenic fibroblast cells derived from the same fetus result in different development when used for nuclear transfer in pigs[J]. Biol Reprod, 2001, 64(6): 1 695-1 698.
[27] Hyun S H, Lee G S, Kim D Y, et al. Effect of maturation media and oocytes derived from sows or gilts on the development of cloned pig embryos[J]. Theriogenology, 2003,59:1 641-1 649.
[28] Koo D B, Kang Y K, Choi YH, et al. In vitro development of reconstructed porcine oocytes after somatic cell nuclear transfer J[J]. Biol Reprod, 2000, 63 (4):986-992.
[29] 張運(yùn)海.利用體細(xì)胞核移植技術(shù)生產(chǎn)豬克隆胚胎的研究[D].北京:中國農(nóng)業(yè)大學(xué),2005.
[30] Vignon X, LeBourhis D, Chesne P, et al. Development of bovine nuclear transfer embryos reconstituted with quescent and proliferative skin fibroblasts[J].Theriogenology,1999, 51(1): 216.
[31] Cibelli J B, Stice S L, Golueke P J, et al. Cloned transgenic calves produced from nonquiestent fetal fibroblasts[J]. Science, 1998, 280: 1 256-1 258.
[32] Enright B P, Jeong B S, Yang X, et al. Epigenetic characteristics of bovine donor cells fore nuclear transfer: levels of histone acetylation[J]. Biol Reprod,2003,69:1 525-1 530.
[33] Liu L, Wang M K ,Chen D Y. Packged nuclear transfer (PNT)-bovine oocyte as mid-vehicle in mouse serial cloning[J]. Theriogenology,2001,55:279.
[34] Guo J T, An Z X, Li Y,et al. Cloned goats (Capra hircus ) from adult ear cells[J]. Science China,2002,45:260-267.
[35] 王立芳.首例冷凍胚胎亞種間克隆水牛在廣西誕生[J].廣州醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2008,23(2):39.
[36] 王啟鳳,王 鋒.消毒處理及培養(yǎng)方法對(duì)SD大鼠尾尖皮膚成纖維細(xì)胞原代培養(yǎng)的影響[C]∥第二屆全國動(dòng)物胚胎生物技術(shù)暨第九屆獸醫(yī)產(chǎn)科學(xué)研討會(huì)論文集.2003:164-167.
[37] 劉冀瓏,王敏康,廉 莉,等.非休眠期成年牛耳成纖維細(xì)胞用于核移植[J].科學(xué)通報(bào),1999,44(12):1 284-1 287.
[38] 王紅梅,黃俊成,劉明軍,等.利用動(dòng)物耳皮膚組織培養(yǎng)成纖維細(xì)胞的研究[J].草食家畜,2001(S2):210-214.
[39] 李雪峰.牛卵母細(xì)胞孤雌激活與體細(xì)胞核移植[D].陜西楊凌:西北農(nóng)林科技大學(xué),2001.
[40] 任芳麗,李 熤,張 涌,等.牛皮膚成纖維細(xì)胞的體外培養(yǎng)與凍存[J].黃牛雜志,2002,28(1):8-10.
[41] 蔡文琴.現(xiàn)代實(shí)用細(xì)胞與分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M].北京:人民軍醫(yī)出版社,2003:3-8.