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    陽性報(bào)警時(shí)間預(yù)測血培養(yǎng)葡萄球菌評(píng)價(jià)

    2013-11-20 01:03:28孫立穎
    檢驗(yàn)醫(yī)學(xué) 2013年12期
    關(guān)鍵詞:區(qū)分葡萄球菌準(zhǔn)確性

    黃 磊,孫立穎,嚴(yán) 巖

    (北京大學(xué)第一醫(yī)院檢驗(yàn)科,北京100034)

    金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus,SA)是引起菌血癥和膿毒血癥的常見病原菌之一,可引起嚴(yán)重后果,據(jù)統(tǒng)計(jì)SA菌血癥的死亡率約為20%[1-2]。凝固酶陰性葡萄球菌(coagulase negative Staphylococcus,CoNS)為人體皮膚的正常菌群,有研究表明在血培養(yǎng)中分離到的CoNS少數(shù)為病原菌,多數(shù)為皮膚表面的污染菌[3-4]。此外臨床上治療甲氧西林耐藥金黃色葡萄球菌(methicillin-resistant Staphylococcus aureus,MRSA)和甲氧西林敏感金黃色葡萄球菌(methicillin-susceptible Staphylococcus aureus,MSSA)感染時(shí)選用的抗菌藥物不同[5]。因此在血培養(yǎng)陽性報(bào)警后涂片觀察到葡萄球菌時(shí),早期、快速區(qū)分SA、CoNS和MRSA對(duì)指導(dǎo)臨床合理用藥具有重要意義。血培養(yǎng)陽性報(bào)警時(shí)間(time to positivity,TTP)是指把血培養(yǎng)瓶放入血培養(yǎng)儀到產(chǎn)生陽性信號(hào)所用的時(shí)間,可由儀器自動(dòng)記錄,其與細(xì)菌初始濃度和菌株自身生長速度有關(guān),并能預(yù)測感染部位和患者預(yù)后[6]。與其他鑒定方法相比,TTP具有快速、簡便、成本低廉等優(yōu)點(diǎn)。本研究分析了TTP在預(yù)測SA、CoNS和MRSA中的價(jià)值。

    材料和方法

    一、入選菌株

    收集北京大學(xué)第一醫(yī)院2008至2012年血培養(yǎng)陽性標(biāo)本中的SA和CoNS(包括表皮葡萄球菌、人葡萄球菌、溶血葡萄球菌、腐生葡萄球菌、中間葡萄球菌、施氏葡萄球菌等)??紤]到不同血培養(yǎng)瓶對(duì)TTP可能的影響,本研究僅納入需氧瓶(包括成人和兒童的需氧瓶),未納入?yún)捬跗俊?duì)同一患者血培養(yǎng)中不同時(shí)間分離到的重復(fù)菌株,僅選取首次分離株納入本研究。排除2種及2種以上細(xì)菌或真菌混合感染的情況。

    二、儀器

    所用儀器為BACTEC9240自動(dòng)化血培養(yǎng)儀及配套的血培養(yǎng)瓶(成人需氧瓶和兒童瓶),購自美國BD公司。

    三、方法

    將采血后的血培養(yǎng)瓶立即運(yùn)送至微生物室,上機(jī)培養(yǎng)。血培養(yǎng)樣本陽性報(bào)警后轉(zhuǎn)種培養(yǎng)18~24h,挑取單個(gè)菌落用VITEK 2 Compact自動(dòng)化鑒定儀進(jìn)行細(xì)菌鑒定和藥物敏感性試驗(yàn)。從BACTEC 9240自動(dòng)化血培養(yǎng)儀連接的EpiCenter數(shù)據(jù)庫中查詢并記錄各菌株的TTP。從檢驗(yàn)科的實(shí)驗(yàn)室信息系統(tǒng)(laboratory information system,LIS)中回顧不同SA菌株對(duì)苯唑西林的敏感性,據(jù)此判斷SA為MRSA或MSSA。

    四、統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    運(yùn)用SPSS 13.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。用Kolmogorov-Smirnov檢驗(yàn)判斷樣本是否為正態(tài)分布。用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)比較SA和CoNS的TTP及MRSA和MSSA 的 TTP。用 MedCalc12.4.0軟件繪制受試者工作特征(receiver operator characteristic,ROC)曲線,分析TTP的診斷價(jià)值。包括確定診斷切點(diǎn),計(jì)算曲線下面積(area under the curve,AUC),進(jìn)而判斷TTP預(yù)測不同菌株的準(zhǔn)確性。準(zhǔn)確性的判斷標(biāo)準(zhǔn)如下:AUC>0.9表示準(zhǔn)確性較高,0.7≤AUC≤0.9表示準(zhǔn)確性為中等,0.5<AUC<0.7 表示準(zhǔn)確性較低[7]。

    結(jié) 果

    一、菌株基本特征及TTP

    本研究共納入葡萄球菌354株,其中SA為101株(MRSA為51株,MSSA為50株),CoNS為253株。SA和 CoNS的 TTP分別為(16.63±7.47)h和(24.61±11.09)h。MRSA和 MSSA 的TTP 分別為(18.22±8.15)h和(15.01±6.40)h,TTP分布情況見圖1。各組菌株中分離自兒童瓶與成人需氧瓶的TTP差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),故不需要在各組菌株中對(duì)兒童瓶和成人需氧瓶進(jìn)行分組統(tǒng)計(jì)TTP。

    圖1 不同菌株的TTP分布圖

    二、SA和CoNS的TTP比較

    經(jīng)Kolmogorov-Smirnov檢驗(yàn),SA和 CoNS的TTP符合正態(tài)分布。經(jīng)獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),兩者的TTP差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。ROC曲線表明,TTP≤16.90 h可作為區(qū)分 SA和 CoNS的切點(diǎn),其敏感性為62.4%,特異性為79.4%,AUC為0.758(95%可信區(qū)間為0.710~0.802),準(zhǔn)確性為中等。見圖2。

    圖2 ROC曲線分析TTP對(duì)預(yù)測SA和CoNS的價(jià)值

    三、MRSA和MSSA的TTP比較

    經(jīng)Kolmogorov-Smirnov檢驗(yàn),MRSA和MSSA的TTP符合正態(tài)分布。經(jīng)獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),兩者的TTP差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。ROC曲線分析表明,TTP>12.58 h可作為區(qū)分MRSA和MSSA的切點(diǎn),其敏感性為80.4%,特異性為50.0%。AUC為0.630(95%可信區(qū)間為0.528~0.724),準(zhǔn)確度較低。見圖3。

    圖3 ROC曲線分析TTP對(duì)預(yù)測MRSA和MSSA的價(jià)值

    討 論

    血培養(yǎng)儀陽性報(bào)警后的傳統(tǒng)操作是涂片鏡檢,向臨床報(bào)告初步結(jié)果。然后傳代培養(yǎng),進(jìn)行菌株鑒定和藥物敏感性試驗(yàn),此過程通常需要2 d時(shí)間。當(dāng)涂片結(jié)果顯示為葡萄球菌時(shí),快速區(qū)分SA和CoNS對(duì)臨床治療具有重要意義。因?yàn)镃oNS大多為皮膚表面污染菌,且致病力弱,早期報(bào)告 CoNS可避免不必要的抗菌藥物使用[3-4]。本研究結(jié)果表明,TTP≤16.90 h可作為區(qū)分 SA和CoNS的切點(diǎn),準(zhǔn)確性為中等,與文獻(xiàn)[8]結(jié)果基本一致。本方法的準(zhǔn)確性雖然仍有待提高,但其具有簡便、快速、成本低廉的優(yōu)點(diǎn),可為臨床提供初步的檢測信息,指導(dǎo)抗感染早期的用藥選擇。因此可將TTP與其他反映早期感染、炎癥的實(shí)驗(yàn)室指標(biāo)(如白細(xì)胞分類計(jì)數(shù)、降鈣素原、C反應(yīng)蛋白等)綜合分析,以盡早得出正確診斷。

    由于臨床上對(duì)MRSA感染的治療方案不同于 MSSA[5],因此,早期區(qū)分 MRSA和 MSSA 具有重要意義[9]。在有關(guān)大腸埃希菌和鮑曼不動(dòng)桿菌的研究中發(fā)現(xiàn),具有不同耐藥表型的同種細(xì)菌TTP會(huì)有不同[10-11],因此,我們推測 MRSA 與MSSA的TTP可能也存在差異。在本研究中雖然MRSA與MSSA的TTP差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,但ROC曲線表明其準(zhǔn)確性較低。本研究結(jié)果與文獻(xiàn)結(jié)果[11]不同,這可能是由于MRSA與MSSA不同耐藥表型引起的TTP差異雖然有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,但他們的差異不大,導(dǎo)致用TTP區(qū)分二者的準(zhǔn)確性較低。但這仍需要更大樣本量的研究進(jìn)行驗(yàn)證,以及通過繪制細(xì)菌生長曲線來比較不同MRSA與MSSA菌株生長速度的差異。

    TTP的應(yīng)用存在一些局限性。如采血后少數(shù)血培養(yǎng)瓶未能及時(shí)運(yùn)送、上機(jī),在室溫長時(shí)間放置會(huì)影響TTP。因此,本研究采用較大樣本量,以盡量降低少數(shù)血培養(yǎng)瓶由于長時(shí)間放置對(duì)TTP造成的影響。此外TTP與細(xì)菌初始濃度(即接種量)有關(guān),在實(shí)際操作中難以達(dá)到每個(gè)血培養(yǎng)瓶的接種量完全一致,因此,也會(huì)對(duì)TTP造成一定影響。

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