邢玉華 ,戴素琴 ,劉體顏 ,王微 ,譚俊杰 ,曲國龍 ,劉剛 ,陳惠鵬
1.軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院 生物工程研究所,北京 100071;2.吉林大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,吉林 長春 130012;3.安徽大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,安徽 合肥 230039
鏈霉菌屬于放線菌,是革蘭陽性菌,其基因組中GC含量很高(>70%)。鏈霉菌能夠產(chǎn)生多種活性物質(zhì),尤其是能夠產(chǎn)生豐富的抗生素,目前75%的天然抗生素都來自鏈霉菌[1]。達(dá)托霉素(daptomycin)是一種新型環(huán)脂肽類抗生素,2003年9月經(jīng)美國食品和藥物管理局(FDA)批準(zhǔn)在美國上市。達(dá)托霉素具有在體外抗絕大多數(shù)臨床革蘭陽性菌的作用,主要用于耐藥菌的感染治療[2]。達(dá)托霉素的生物合成經(jīng)非核糖體肽合成酶(NRPS)途徑,其合成基因成簇排列在染色體上,共同調(diào)控達(dá)托霉素的合成[3]。因此,對(duì)達(dá)托霉素合成基因的克隆與分析,對(duì)了解達(dá)托霉素的調(diào)控機(jī)制,提高達(dá)托霉素的產(chǎn)量有重要意義。
達(dá)托霉素的生物合成基因簇總長128 kb,其平均GC含量為71%,我們?cè)鴩L試用常規(guī)PCR方法分段擴(kuò)增,但很難將其擴(kuò)增出來。由于許多非編碼區(qū)的序列是高度保守的,密碼子優(yōu)化的方法也受到限制。因此,我們選擇10個(gè)1 kb的片段進(jìn)行擴(kuò)增,嘗試通過對(duì)PCR反應(yīng)條件進(jìn)行優(yōu)化,包括加入不同的PCR添加劑[4-8]及調(diào)整PCR循環(huán)程序[9-10],從而實(shí)現(xiàn)對(duì)高GC含量的達(dá)托霉素生物合成基因的擴(kuò)增,同時(shí)也實(shí)現(xiàn)了對(duì)長達(dá)6 kb的高GC含量DNA的擴(kuò)增。
玫瑰孢鏈霉菌(Streptomyces roseosporus)31568菌株購自美國ATCC;大腸桿菌DH5α、DH10B化學(xué)感受態(tài)購自北京博邁德公司;pMD18-T載體和LA Taq聚合酶購自TaKaRa公司;Q5高保真DNA聚合酶、7-deaza-dGTP、dNTP、各種限制性內(nèi)切酶均購自NEB公司;質(zhì)粒小提試劑盒、DNA凝膠回收試劑盒均購自Axygen公司;DyNAzymeⅡDNA聚合酶購自Thermo公司;鏈霉菌基因組提取試劑盒購自GENMED公司;DMSO及其他化學(xué)試劑均購自Sigma公司。
我們將達(dá)托霉素生物合成基因簇分成128個(gè)平均長度為1080 bp的片段,分別進(jìn)行擴(kuò)增,序列之間帶有重疊序列,方便后續(xù)拼接。用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)引物,兩端帶有XbaⅠ和HindⅢ酶切位點(diǎn),由北京奧科鼎盛公司合成,序列見表1。
用GENMED公司的鏈霉菌屬基因組DNA提取試劑盒提取玫瑰孢鏈霉菌基因組DNA,DNA的濃度和質(zhì)量經(jīng)NanoDrop 2000分光光度計(jì)測(cè)定。
LA Taq聚合酶反應(yīng)體系(共50 μL)包括25 μL 2×GC緩沖液Ⅰ、400 μmol/L dNTP、引物各0.5 μmol/L、100 ng基因組DNA、2.5 U LA Taq聚合酶。
Q5高保真聚合酶反應(yīng)體系(共50 μL)包括10 μL 5×Q5反應(yīng)緩沖液、10 μL 5×Q5 High GC En?hancer、200 μmol/L dNTP、引 物 各 0.5 μmol/L、50 ng基因組DNA、1 U Q5聚合酶。反應(yīng)體系中分別加入不同濃度的DMSO(1%~4%)、7-Deaza-dGTP∶dGTP(1∶1或 3∶1)。
LA Taq聚合酶的擴(kuò)增程序:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性30 s,固定溫度(55~68℃)退火30 s,72℃延伸1 min,30個(gè)循環(huán);72℃延伸5 min。
Q5聚合酶的擴(kuò)增程序:98℃預(yù)變性30 s;98℃變性10 s,固定溫度(55~68℃)退火30 s,72℃延伸30 s,30個(gè)循環(huán);72℃延伸2 min。
Touch down PCR循環(huán)程序:98℃預(yù)變性30 s;98℃變性 10 s,71℃退火 30 s,72℃延伸 30 s,退火溫度每個(gè)循環(huán)降低0.2℃,30個(gè)循環(huán);之后98℃變性10 s,65℃退火 30 s,72℃延伸 30 s,15個(gè)循環(huán);72℃延伸2 min。
取 20 μL PCR 產(chǎn)物,加入 4 μL 6×上樣緩沖液,行1%瓊脂糖凝膠電泳,EB染色,用凝膠成像系統(tǒng)分析拍照,目的條帶用凝膠回收試劑盒回收。Q5高保真聚合酶擴(kuò)增的DNA需用DyNAzymeⅡDNA聚合酶加A處理,LA Taq聚合酶擴(kuò)增的片段則直接與pMD18T載體連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,次日挑克隆,酶切鑒定挑選陽性克隆測(cè)序(測(cè)序由北京奧科鼎盛公司進(jìn)行),比對(duì)測(cè)序結(jié)果,進(jìn)行保真度分析。
表1 引物及序列
以玫瑰孢鏈霉菌基因組DNA為模板,用LA Taq DNA聚合酶使用GC緩沖液進(jìn)行擴(kuò)增,能擴(kuò)增出2個(gè)片段(401和678),其他均沒有目的條帶。對(duì)401和678進(jìn)行測(cè)序,發(fā)現(xiàn)有大量突變和錯(cuò)配。
鑒于后續(xù)的克隆表達(dá),我們選用了高保真的Q5 DNA聚合酶進(jìn)行擴(kuò)增。首先摸索了不同退火溫度對(duì)PCR擴(kuò)增的影響,發(fā)現(xiàn)較高的溫度能極大地提高擴(kuò)增量和產(chǎn)物特異性(圖1)。但單獨(dú)提高退火溫度對(duì)于某些DNA(如067和1245)的擴(kuò)增是無效的,因此,針對(duì)這些片段還須進(jìn)行其他條件優(yōu)化。
有文獻(xiàn)報(bào)道,在反應(yīng)體系中加入增強(qiáng)劑可以提高反應(yīng)的特異性和產(chǎn)量。常用的增強(qiáng)劑有甘油、DMSO、甲酰胺、7-deaza-dGTP和鎂離子等,對(duì)減少高GC區(qū)域的二級(jí)結(jié)構(gòu)等都有一定的功效。我們主要探討了不同濃度的DMSO和7-deaza-dGTP對(duì)擴(kuò)增效率的影響。由于我們使用的商品化聚合酶試劑盒中的GC增強(qiáng)劑成分不明,按照說明書嘗試加入1%~4%的DMSO,結(jié)果表明DMSO能顯著地提高1245的擴(kuò)增量(圖2),但多次結(jié)果也表明DMSO對(duì)擴(kuò)增的特異性沒有太大幫助,甚至有時(shí)會(huì)降低產(chǎn)物的特異性。同時(shí),我們探討了7-deaza-dGTP對(duì)擴(kuò)增的影響。7-deaza-dGTP[11-12]是dGTP的類似物,能夠減少二級(jí)結(jié)構(gòu)形成。我們?cè)诜磻?yīng)體系中分別加入100 μmol/L 7-deaza-dGTP和100 μmol/L dGTP,及150 μmol/L 7-deaza-dGTP和50 μmol/L dGTP。對(duì)于片段067,在加入7-deaza-dGTP后,在較高的退火溫度下能夠看到有目的條帶擴(kuò)增出來,但仍然很弱(圖3A)。因此,我們選用touch down PCR進(jìn)行擴(kuò)增,結(jié)果表明能將067擴(kuò)增出來。用touch down PCR并同時(shí)添加7-deaza-dGTP進(jìn)行擴(kuò)增,發(fā)現(xiàn)目的條帶的擴(kuò)增量沒有增加反而降低了,但產(chǎn)物特異性有很大提高(圖3B)。測(cè)序表明加入7-deaza-dGTP后擴(kuò)增的突變及錯(cuò)配堿基數(shù)減少,而且原本測(cè)序經(jīng)常信號(hào)中斷的克隆也大大得到改善(圖4),可見7-deaza-dGTP能夠提高產(chǎn)物的特異性及確保測(cè)序反應(yīng)的順利進(jìn)行。
我們?cè)鴩L試將DMSO與7-deaza-dGTP組合添加到PCR反應(yīng)體系中,結(jié)果發(fā)現(xiàn)擴(kuò)增效果沒有改變,說明DMSO與7-deaza-dGTP在這種體系中并不存在協(xié)同作用,或者可能會(huì)相互抑制,其原因目前還不清楚。因此,考慮到后續(xù)拼接、克隆及表達(dá),我們選用touch down PCR及添加7-deaza-dGTP作為我們克隆達(dá)托霉素生物合成基因簇的常規(guī)方法。應(yīng)用這種方法,我們將選擇的10個(gè)DNA片段全部擴(kuò)增出來,繼而擴(kuò)增了所有的達(dá)托霉素合成基因。電泳圖中雖然還存在一些非特異性條帶,但每個(gè)片段的擴(kuò)增量均能達(dá)到克隆的要求,無須重新設(shè)計(jì)引物擴(kuò)增。圖5為PCR產(chǎn)物純化后的電泳結(jié)果。
利用touch down PCR及添加7-deaza-dGTP的方法,我們還進(jìn)一步對(duì)不同長度的達(dá)托霉素生物合成基因簇DNA片段進(jìn)行了擴(kuò)增,1~6 kb均有目的條帶出現(xiàn)(圖6)。為了驗(yàn)證長片段高GC含量DNA的PCR產(chǎn)物的保真度,連接到pMD18-T載體上進(jìn)行測(cè)序,結(jié)果表明直到6 kb的序列全都正確,說明利用這種方法進(jìn)行長片段高GC含量DNA的PCR擴(kuò)增是可行的。利用以上條件我們嘗試擴(kuò)增更長的片段,結(jié)果7、8 kb片段的擴(kuò)增沒有成功,但也足以滿足拼接所需。
圖1 不同退火溫度對(duì)高GC含量DNA PCR的影響
達(dá)托霉素的生物合成基因簇DNA平均GC含量很高,經(jīng)常出現(xiàn)多個(gè)連續(xù)的G或C,而且還含有重復(fù)序列。筆者在前期用常規(guī)PCR方法很難(甚至不可能)擴(kuò)增出基因。高GC含量DNA的PCR擴(kuò)增的難點(diǎn)在于模板DNA形成的二級(jí)結(jié)構(gòu),使得DNA模板比較難變性,94℃下可能變性不完全;退火時(shí)引物與模板不能很好地結(jié)合,容易形成錯(cuò)配;延伸過程也不能很好地進(jìn)行,從而使擴(kuò)增效率大大降低。PCR添加劑降低熔解溫度,有助于引物退火,并輔助DNA聚合酶延伸通過二級(jí)結(jié)構(gòu)區(qū)。本研究結(jié)果表明DMSO和7-deaza-dGTP對(duì)于提高PCR擴(kuò)增效率有很大幫助,而且采用touch down PCR的方法,先高溫下退火再緩慢降溫,能極大地提高PCR產(chǎn)物擴(kuò)增的特異性。我們向反應(yīng)體系中加入1%~4%的DMSO,對(duì)大多數(shù)的DNA片段均能提高其擴(kuò)增產(chǎn)量,而且以4%的DMSO效果最佳。但同時(shí)我們還發(fā)現(xiàn),雖然擴(kuò)增量提高,但反應(yīng)的特異性降低,出現(xiàn)了很多非特異性條帶,可能是降低了熔解溫度所致。我們繼續(xù)加大DMSO的量,發(fā)現(xiàn)幾乎擴(kuò)增不出任何條帶,經(jīng)分析認(rèn)為可能是DMSO抑制了聚合酶的活性。文獻(xiàn)報(bào)道7-deaza-dGTP會(huì)增加PCR擴(kuò)增的產(chǎn)量和特異性[13],但我們的研究表明7-deaza-dGTP的加入不會(huì)增加產(chǎn)物的擴(kuò)增量,反而會(huì)降低,原因還有待于考察。然而7-deaza-dGTP確實(shí)可以提高產(chǎn)物的特異性和保真度,而且使測(cè)序反應(yīng)更容易進(jìn)行。
圖2 DMSO對(duì)PCR擴(kuò)增高GC含量DNA模板(1245)的影響
圖3 7-deaza-dGTP對(duì)PCR擴(kuò)增高GC含量DNA模板(067)的影響
圖4 片段1245測(cè)序的部分結(jié)果
圖5 達(dá)托霉素生物合成基因簇部分片段的PCR擴(kuò)增結(jié)果
圖6 PCR擴(kuò)增不同長度高GC含量DNA的結(jié)果
以上結(jié)果表明我們建立了采用touch down PCR并添加7-deaza-dGTP或DMSO進(jìn)行高GC含量DNA擴(kuò)增的程序。基于此方法,我們成功地將達(dá)托霉素的生物合成基因簇(128 kb)分段擴(kuò)增出來,經(jīng)內(nèi)切酶消化后可用于后續(xù)拼接。此外,我們還嘗試用該方法進(jìn)行長片段DNA的擴(kuò)增,實(shí)現(xiàn)了長達(dá)6 kb的高GC含量DNA的擴(kuò)增,但對(duì)于更長片段的擴(kuò)增(>8 kb)沒有成功,還須進(jìn)一步摸索,比如探討反應(yīng)過程中添加聚合酶等方法。綜上,我們建立了擴(kuò)增長片段高GC含量DNA的方法,對(duì)研究達(dá)托霉素的作用機(jī)制以及提高其產(chǎn)量將有很大的幫助。
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