金 彪,伍成奇,唐 攀,邱淵皓,劉萬華,武 寧,王晶鈺
(西北農林科技大學動物醫(yī)學院,陜西楊凌712100)
β-內酰胺類抗生素包括青霉素及其衍生物、頭孢菌素、單酰胺環(huán)類、碳青霉烯類和青霉烯類酶抑制劑等。頭孢菌素類抗生素是從頭孢菌素的母核7-氨基頭孢烷酸連接不同側鏈而制成的半合成抗生素。藥物首先發(fā)現(xiàn)于1945年[1],經過一段時間的實驗室研究,于1963年被正式應用于臨床當中,并且根據(jù)臨床的應用情況不斷改進。由于頭孢菌素類抗生素的廣泛應用,其耐藥性問題日趨嚴重,給臨床治療帶來了困難。大腸埃希菌(E.coli)產β-內酰胺酶是β-內酰胺類抗生素產生耐藥性的主要機制,由質粒介導的超廣譜β-內酰胺酶(ESBLs)是新一代β-內酰胺酶類抗生素耐藥的主要原因,使包括第三代頭孢菌素在內的多種β-內酰胺類抗生素失活,還能水解第四代頭孢菌素以及單環(huán)類抗生素的質粒介導的β-內酰胺酶(β-lactamases,BLA)[2-3]。ESBLs是由質粒介導的,它可以通過接合、轉化、轉導等形式獲得或轉移耐藥基因。根據(jù)ESBLs基因和蛋白質的同源性將其分為四類,即TEM型、SHV型、CTX-M型、OXA型酶[4],本次研究采用了前三類酶。目前,產β-內酰胺酶是E.coli對β-內酰胺類抗生素產生耐藥性的主要機制,醫(yī)學研究較多,但國內獸醫(yī)臨床鮮有報道。因此,本研究目的是了解雞源致病性E.coli對β-內酰胺類抗生素的耐藥情況及耐藥基因與耐藥性的相關性,旨在為臨床合理用藥以及E.coli耐藥機制的研究提供理論依據(jù)。
1.1.1 菌株來源及其培養(yǎng) 108株雞源致病性E.coli,2012年8月~10月先后分離自陜西省幾個主要規(guī)?;B(yǎng)雞場的雞群。無菌操作采集上述規(guī)?;B(yǎng)雞場的雞群疑似感染E.coli的病、死雞肺臟、肝臟樣本,接種麥康凱瓊脂平板培養(yǎng)基初步分離,通過培養(yǎng)特性觀察、生化試驗、動物致病性試驗共分離鑒定出108株致病性E.coli,由西北農林科技大學動物醫(yī)學院動物性食品衛(wèi)生檢驗實驗室保存。
1.1.2 培養(yǎng)基及藥敏紙片 麥康凱瓊脂和營養(yǎng)瓊脂,購自北京奧博星生物技術有限公司;細菌微量生化反應管,購自杭州天和微生物試劑有限公司;7種β-內酰胺類藥敏紙片(頭孢派酮、頭孢他啶、頭孢噻肟、頭孢唑啉、頭孢曲松、頭孢呋肟、頭孢噻吩),購自杭州天和微生物試劑公司。
1.1.3 主要試劑 PCR Master Mix(含Taq DNA聚合 酶、dNTP、PCR buffer)、DNA Marker DL 2 000,購自寶生物工程(大連)有限公司;NaCl,購自四川西隴化工有限公司;酵母提取物和胰蛋白胨,購自英國Oxoid公司;溴化乙錠(100mg),購自廣州寶泰克生物科技有限公司;瓊脂糖,西班牙Biowest公司產品;膠回收試劑盒,購自天根生化科技有限公司。
1.1.4 耐藥基因引物設計 根據(jù)GenBank中已發(fā)表的β-內酰胺酶的耐藥基因序列,用Primer5.0軟件分別設計針對β-內酰胺酶tem、ctx-m和shv的3種特異性引物,設計的引物序列見表1。引物由南京金斯瑞生物科技有限公司合成。
表1 PCR擴增引物Table 1 The primers for PCR amplification
1.2.1 細菌的藥物敏感性試驗 參照CLSI(clinical and laboratory standards institute)推薦的K-B藥敏紙片法對108株雞源致病性E.coli進行藥物敏感性試驗,判定結果參照CLSI手冊中藥物敏感性標準[5]。
1.2.2 耐藥基因的PCR擴增 將待檢菌株劃線接種麥康凱瓊脂培養(yǎng)基平板,37℃培養(yǎng)24h,挑取菌落溶于500μL無菌純水的離心管中制成濃菌懸液,100℃煮沸10min,12 000r/min離心5min,取上清作為模板,并保存于-20℃?zhèn)溆?。PCR反應體系:2×PCR Master Mix(含有2×TaqDNA 聚合酶,2×PCR buffer 和 2×dNTP)10μL,10 pmol/μL上、下游引物各0.5μL,ddH2O 10μL,模板為4μL。PCR反應條件:95℃預變性5min;94℃50s,50s,72 ℃ 60s,共35個循環(huán);72 ℃ 10 min;4℃結束反應。取10μL產物用10g/L瓊脂糖凝膠電泳,并用凝膠成像儀成像觀察拍照。
1.2.3 PCR產物的測序分析 將耐藥基因的PCR陽性產物用膠回收試劑盒回收,送由南京金斯瑞生物科技有限公司進行序列測定,用DNA Star軟件對測序獲得的耐藥基因序列與GenBank中的相關序列進行比對分析。
108株雞源致病E.coli分離株的藥敏試驗結果見表2。
從表2可以看出,7種β-內酰胺類藥物中,致病性E.coli對頭孢噻吩的耐藥率最高(95.7%),對頭孢他啶的耐藥率最低(18.5%),其余的耐藥率均超過70%??偟膩砜矗虏⌒訣.coli對頭孢菌素類藥物的耐藥率均較高。
表2 分離的致病性E.coli的耐藥情況Table 2 Antimicrobial resistance of pathogenic Escherichia coli isolated from chickens
采用PCR技術,對108株雞源致病性E.coli分離株進行了3種β-內酰胺酶耐藥基因的擴增檢測,tem和ctx-m2種耐藥基因被檢出,獲得與預期目的片段大小相符的擴增條帶(圖1,圖2),檢出率分別為98.1%和74.1%,未檢測到shv基因
耐藥基因在雞源致病性E.coli耐藥菌株中的檢出情況見表3。從表3可以看出,耐藥基因tem在頭孢他啶和頭孢呋肟耐藥菌株中檢出率最高,達100%,除了在頭孢曲松耐藥菌株中為79.6%外,其余的檢出率都超過了95%,與菌株耐藥性有顯著相關性(P<0.05);耐藥基因ctx-m在頭孢噻吩耐藥菌株中檢出率最高達86.3%,最低的是在頭孢他啶耐藥菌株也達到了50%,與菌株耐藥性有顯著相關性(P<0.05);tem+ctx-m兩種耐藥基因的檢出率除了在頭孢他啶耐藥菌株中與ctx-m的一樣外,其余的都比ctx-m的檢出率略低。耐藥基因shv的檢出率為0。
圖1 tem陽性菌株PCR產物擴增圖Fig.1 PCR products of tem positive isolates
圖2 ctx-m陽性菌株PCR產物擴增圖Fig.2 PCR products of ctx-m positive isolates
表3 致病性E.coli耐藥株耐藥基因的檢出率Table 3 Detection rates of resistance genes in resistant isolates of pathogenic Escherichia coli
檢出的2種β-內酰胺酶耐藥基因的特異性目的條帶,經回收測序后,分別與GenBank中的相應序列進行比對,結果顯示,陽性菌株攜帶的β-內酰胺酶耐藥基因與GenBank中提供的相應基因序列相似性均高達98%以上,其中tem基因為99.3%,ctx-m為98.6%。
β-內酰胺類藥物是醫(yī)學臨床上應用最為廣泛的抗菌藥物之一,在獸醫(yī)臨床上也發(fā)揮著及其重要的作用,隨著該類藥物的大量使用,耐藥性問題也越來越突出,嚴重影響了該藥物的臨床療效,已成為國內外耐壓性研究關注的焦點。目前在許多國家和地區(qū)有大量關于E.coli耐藥性的研究[6-7],E.coli的耐藥性已經成為全球性問題。目前,在已發(fā)現(xiàn)的ESBLs基因型中,tem有168種,shv有114種,ctx-m有89種[8]。tem已是ESBLs中最常見的基因型廣譜抗生素,特別是第三代頭孢菌素在臨床上的廣泛使用以來,使得質粒介導的產ESBLs細菌在中國不同地區(qū)廣泛傳播[9]。本文PCR結果顯示陜西部分地區(qū)tem基因檢出率最高。
張利勃等[10]研究發(fā)現(xiàn),遼寧省ESBLs雞源E.coli基因亞型以tem為主,其次為ctx-m型,未發(fā)現(xiàn)shv型基因,與本研究結果一致。
國內外對E.coli中質粒介導的耐藥基因已有報道,但是種類單一,對于雞源致病性E.coli耐藥基因的全面研究和報道相對較少。Meunier D等[11]對法國E.coli分離株進行β-內酰胺酶基因研究,發(fā)現(xiàn)blaTEM和blaCTX-M的檢出率分別為62.5%和100%。
Li L等[12]研究發(fā)現(xiàn),我國雞源E.coli中β-內酰胺酶基因blaTEM和blaSHV在1970年-2003年檢出率有所下降,2004年-2007年又逐漸上升。Tang X等[13]對我國2004年-2007年豬源致病性E.coli耐藥基因檢測時發(fā)現(xiàn),β-內酰胺類耐藥基因以blaTEM為主,檢出率為87%;楊澍等[14]對人源E.coliβ-內酰胺酶耐藥基因進行檢測發(fā)現(xiàn),耐藥基因以blaTEM為主,本研究結果與其基本一致,這可能與耐藥基因在細菌間轉移有關。Jacob S等[15]報道,ESBLs菌可通過接合、轉化和轉導等方式使耐藥菌基因在細菌間快速傳播擴散,給臨床治療帶來困難,進一步說明加強β-內酰胺酶監(jiān)測的迫切性和必要性。本研究結果為β-內酰胺類抗生素的合理使用和耐藥機制的研究提供了數(shù)據(jù)支持。
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