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    PCR-Targeting體系構(gòu)建棒狀鏈霉菌基因突變株

    2013-05-05 11:28:00左志晗鄭津輝趙海龍李玉珊
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2013年3期
    關(guān)鍵詞:安普棒狀霉菌

    左志晗,鄭津輝,趙海龍,李玉珊

    (天津師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,天津市動(dòng)植物抗性重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津,300387)

    棒狀鏈霉菌可產(chǎn)生多種抗生素,如異青霉素N、去乙?;蠕h霉素C、頭霉素C、克拉維酸和棒烷類(lèi)衍生物等。其中,克拉維酸本身的抗菌活性很弱,但它具有強(qiáng)力廣譜且不可逆的 β-內(nèi)酰胺酶抑制活性[1],使其成為臨床上治療耐藥細(xì)菌性疾病的主要方法之一。但我國(guó)長(zhǎng)期以來(lái)使用的克拉維酸復(fù)方制劑主要依靠進(jìn)口產(chǎn)品,究其原因是我國(guó)目前沒(méi)有好的適合于工業(yè)化生產(chǎn)的克拉維酸高產(chǎn)菌株,并且后期克拉維酸的分離提取工藝相對(duì)落后[2]。

    由于克拉維酸的生物合成受到某些基因的級(jí)聯(lián)調(diào)控,故某些調(diào)控基因的變化可能會(huì)使克拉維酸產(chǎn)量獲得顯著提高[3],隨著對(duì)克拉維酸生物合成途徑研究的不斷深入,采用基因工程的方法構(gòu)建棒狀鏈霉菌的克拉維酸高產(chǎn)突變株越來(lái)越受到各國(guó)學(xué)者的廣泛關(guān)注??死S酸合成基因簇和頭霉素C合成基因簇相鄰,且受相同的調(diào)節(jié)蛋白CcaR的調(diào)控,研究表明,在發(fā)酵過(guò)程中降低或消除棒狀鏈霉菌中頭霉素C的合成能夠提高克拉維酸的產(chǎn)量[4],并可以有效減少發(fā)酵液中的干擾物質(zhì),簡(jiǎn)化提取工藝,對(duì)工業(yè)上克拉維酸的生產(chǎn)具有重要意義。

    本課題組曾采用插入突變的方法成功構(gòu)建了棒狀鏈霉菌lat基因的突變菌株,結(jié)果突變株的克拉維酸產(chǎn)量較原始菌株提高了1.3倍[5],本實(shí)驗(yàn)仍然從影響棒狀鏈霉菌克拉維酸代謝的頭霉素C的早期合成基因lat入手,采用PCR-Targeting體系對(duì)S.clavuligerus的lat基因進(jìn)行了突變。PCR-Targeting是2002年由Gust和Kieser等人[6]創(chuàng)建的,用于突變鏈霉菌中的野生型基因。該體系中的λRED(gam,bet,exo)功能啟動(dòng)子能夠極大地提高線(xiàn)性DNA的重組率,使得胞內(nèi)重組酶BCD、外切核酸酶分解線(xiàn)狀DNA,導(dǎo)致重組率低的問(wèn)題得以解決。采用該體系最終構(gòu)建得到了lat基因被敲除的無(wú)抗性標(biāo)記的突變菌株S.clavuligerus lat::scar,其克拉維酸產(chǎn)量最高達(dá)到了出發(fā)菌株的2.83倍。

    1 材料與方法

    1.1 菌株與質(zhì)粒

    菌株:克拉維酸產(chǎn)生菌棒狀鏈霉菌Streptomyces clavuligerus NRRL3585,由沈陽(yáng)藥科大學(xué)何建勇教授惠贈(zèng);大腸桿菌 E.coli DH5α 和 E.coli ET12567,E.coli BW25113/pIJ790均為本實(shí)驗(yàn)室保存菌種。

    質(zhì)粒:pIJ773,提供阿泊拉抗性模板質(zhì)粒,在其抗性基因兩側(cè)包含轉(zhuǎn)移復(fù)制起始點(diǎn)oriT以及FLP重組酶的識(shí)別位點(diǎn) FRT序列,阿泊拉抗性(AprR);pGH112,大腸桿菌-鏈霉菌穿梭質(zhì)粒載體,帶有氨芐抗性(AmpR)和硫鏈絲菌肽抗性(tsrR);pELA,lat基因中插入阿泊拉抗性基因(lat::apr)的重組質(zhì)粒,帶有氨芐(AmpR)、硫鏈絲菌肽(tsrR)和阿泊拉抗性(AprR)。

    1.2 培養(yǎng)基

    E.coli ET12567/pUZ8002,E.coli BW25113 以及E.coliDH5α所用為L(zhǎng)B培養(yǎng)基[6];棒狀鏈霉菌所用產(chǎn)孢培養(yǎng)基為YMGA培養(yǎng)基[7],種子培養(yǎng)采用TSB培養(yǎng)基,發(fā)酵培養(yǎng)采用SS培養(yǎng)基[8]。大腸桿菌-鏈霉菌接合培養(yǎng)基采用AS-1培養(yǎng)基(g/L)[9]。

    培養(yǎng)基中抗生素的使用濃度如下:氨芐青霉素終濃度為 100 μg/mL,阿泊拉霉素為 25 μg/mL,卡那霉素為 50 μg/mL,氯霉素為 25 μg/mL,萘啶酮酸為 25 μg/mL。

    1.3 常規(guī)分子操作

    棒狀鏈霉菌總DNA的提取、質(zhì)粒向鏈霉菌的接合轉(zhuǎn)移、鏈霉菌原生質(zhì)體的制備及轉(zhuǎn)化均按Kieser等人[8]的方法進(jìn)行,大腸桿菌質(zhì)粒DNA的提取、限制性?xún)?nèi)切酶消化、連接、PCR以及轉(zhuǎn)化等操作均按Sambrook 等人[10]的方法進(jìn)行。

    1.4 引物設(shè)計(jì)及PCR

    1.4.1 lat基因的 PCR 擴(kuò)增

    參照棒狀鏈霉菌編碼賴(lài)氨酸ε-轉(zhuǎn)氨酶的lat基因相應(yīng)的核苷酸序列,設(shè)計(jì)合成如下引物:

    引物 1:5’-GAATTC CCATAATTCAGCCTGATCCCCCAGGAGTTCTCA-3’

    引物 2:5’-GGATCC AGCGCGTCCTTCACAGCGGTGTACTCCCGCCCGTCGACG-3’

    其中引物1和引物2中劃線(xiàn)部分分別為EcoR I和BamH I酶切位點(diǎn),以棒狀鏈霉菌的基因組DNA為模板,引物1和引物2進(jìn)行PCR擴(kuò)增,退火溫度n=61℃。

    1.4.2 安普抗性框的PCR擴(kuò)增

    根據(jù)棒狀鏈霉菌中l(wèi)at基因的序列及質(zhì)粒pIJ773中安普抗性基因的序列(該序列中還包含轉(zhuǎn)移復(fù)制起始點(diǎn)oriT以及FLP重組酶的識(shí)別位點(diǎn)FRT序列,oriT便于后面重組質(zhì)粒的接合轉(zhuǎn)移)設(shè)計(jì)一對(duì)長(zhǎng)59nt及58nt的引物(引物3和引物4),其中引物3包含20nt的安普抗性基因上游的FRT序列以及l(fā)at基因上游的一段39nt的互補(bǔ)序列,引物4包含19nt的安普抗性基因下游的FRT序列以及l(fā)at基因下游的一段39nt的互補(bǔ)序列(圖1.a),兩引物序列如下:

    引物 3:5’-CCATAATTCAGCCTGATCCCCCAGGAGTTCTCACCCATGATTCCGGGGATCCGTCGACC-

    3’;引物 4:5’-TGTAGGCTGGAGCTGCTTCGACCGCTCGTCACAGTGCGGCCAGCGGCTCTCGCAGACT-3’。

    按此引物PCR所得產(chǎn)物中應(yīng)包含一個(gè)安普抗性基因,并且在它的兩端含有各帶有39bp的lat基因上下游的同源序列,將此PCR產(chǎn)物稱(chēng)為安普抗性框。

    以含有安普抗性基因的質(zhì)粒pIJ773作為模板,引物3和引物4進(jìn)行PCR擴(kuò)增,退火溫度n=50℃,進(jìn)行安普抗性框的擴(kuò)增。

    1.5 PCR-targeting構(gòu)建重組質(zhì)粒

    1.5.1 重組質(zhì)粒pGH112-lat的構(gòu)建

    將PCR獲得的lat基因片段經(jīng)純化及EcoR I和BamH I雙酶切,與經(jīng)同樣雙酶切的大腸桿菌-鏈霉菌穿梭質(zhì)粒載體pGH112連接,所得的連接產(chǎn)物用于轉(zhuǎn)化 E.coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞,得到重組質(zhì)粒pGH112-lat(圖1.b)。

    1.5.2 重組質(zhì)粒pELA的構(gòu)建

    將驗(yàn)證正確的重組質(zhì)粒pGH112–lat電轉(zhuǎn)至Ecoli BW25113/pIJ790感受態(tài)中,獲得 E.coli BW25113/pIJ790/pGH112-lat轉(zhuǎn)化子,將其制作成感受態(tài)細(xì)胞,將1.4.2中得到的帶有l(wèi)at基因同源序列的PCR產(chǎn)物安普抗性框電轉(zhuǎn)化至E.coli BW25113/pIJ790/pGH112-lat感受態(tài)細(xì)胞中,將電轉(zhuǎn)后菌株的培養(yǎng)溫度由30℃提高到37℃,并在培養(yǎng)基中添加L-阿拉伯糖(終濃度為 10 mmol/L)。在 E.coli BW25113/pIJ790/pGH112-lat的培養(yǎng)基中添加L-阿拉伯糖可誘導(dǎo)pIJ790中λRED的表達(dá),在λRED功能啟動(dòng)子的作用下,安普抗性框迅速地與重組質(zhì)粒pGH112-lat發(fā)生同源重組,即安普抗性框兩端的lat同源序列與pGH112-lat所攜帶的lat基因發(fā)生同源雙交換,從而使lat基因中插入了含有aac(3)iv基因的安普抗性框,得到了一個(gè)lat基因被插入突變的重組質(zhì)粒pELA(圖1.c)。由于pIJ790質(zhì)粒中含有一個(gè)溫敏型的復(fù)制起始子和氯霉素抗性基因,當(dāng)電轉(zhuǎn)后菌株的培養(yǎng)溫度由30℃提高到37℃并且不再向培養(yǎng)基中添加Cml抗生素后,pIJ790質(zhì)粒的復(fù)制子不再轉(zhuǎn)錄并且在沒(méi)有抗生素的選擇壓力下,它便逐漸喪失了自我復(fù)制的能力。所以重組子中僅含有一種帶有l(wèi)at突變基因的重組質(zhì)粒。

    1.5.3 lat基因內(nèi)部被敲除的重組質(zhì)粒pSCAR的構(gòu)建

    將含有安普抗性框的重組質(zhì)粒pELA(抗性框的兩端含有FRT序列,該序列為FLP重組酶的識(shí)別位點(diǎn))電轉(zhuǎn)至 E.coliDH5α/BT340中,BT340為溫敏型質(zhì)粒,因此E.coliDH5α/BT340的感受態(tài)細(xì)胞的制備及培養(yǎng)過(guò)程溫度均控制在較低的30℃。

    在42℃高溫誘導(dǎo)下質(zhì)粒BT340可以表達(dá)FLP重組酶,F(xiàn)LP重組酶可以識(shí)別質(zhì)粒pELA中安普抗性框兩側(cè)的FRT序列,將FRT之間的抗性基因敲除,在此過(guò)程中質(zhì)粒BT340消失,之后原lat基因插入抗性基因的部分僅剩下81bp的scar序列(FRT序列經(jīng)FLP酶切除后剩余的部分序列),所得為lat基因內(nèi)部被敲除的重組質(zhì)粒pSCAR(圖1.g)。

    1.6 棒狀鏈霉菌lat基因的突變

    重組質(zhì)粒pELA向棒狀鏈霉菌的轉(zhuǎn)移采用接合轉(zhuǎn)移的方法[8],即以 E.coli ET12567/pUZ8002/pELA 為供體菌株,將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)移至棒狀鏈霉菌中。篩選安普霉素抗性菌株,28℃培養(yǎng)3~5 d,直至孢子出現(xiàn),收集孢子,將孢子在不含抗生素的YMGA培養(yǎng)基上進(jìn)行松弛培養(yǎng),并在該培養(yǎng)基上傳代3次,仍具有抗性的菌株初步確定為發(fā)生了雙交換的菌株(圖1.d,e)。

    重組質(zhì)粒pSCAR向棒狀鏈霉菌的轉(zhuǎn)移采用原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化的方法[8],以25%的PEG1000介導(dǎo),再生培養(yǎng)基采用R2YE培養(yǎng)基,由于重組質(zhì)粒pELA安普抗性框中的具有接合轉(zhuǎn)移功能的oriT基因也同時(shí)被敲除,所以得到的重組質(zhì)粒pSCAR為不具有接合轉(zhuǎn)移功能的質(zhì)粒(圖1.g),須通過(guò)原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化的方法轉(zhuǎn)入棒狀鏈霉菌中。

    轉(zhuǎn)化子于30℃培養(yǎng)36h長(zhǎng)出微小菌落后,用含8μg/mL硫鏈絲菌素(安普抗性框被敲除后采用重組質(zhì)粒pSCAR所攜帶的硫鏈絲菌素抗性基因tsr進(jìn)行篩選)的營(yíng)養(yǎng)瓊脂覆蓋各轉(zhuǎn)化平板,繼續(xù)于30℃培養(yǎng)3 d。用無(wú)菌牙簽挑取轉(zhuǎn)化子于不含抗生素的YMGA平板,30℃培養(yǎng)3~4 d后,將長(zhǎng)出的菌落分別于含有硫鏈絲菌素(Thio8)的營(yíng)養(yǎng)瓊脂平板及含有安普霉素(Apr25)的營(yíng)養(yǎng)瓊脂平板上影印妥當(dāng),對(duì)2種抗生素都敏感的菌落可初步斷定為lat基因中抗性基因被敲除的突變菌株(圖1.e~i),PCR-Targeting構(gòu)建棒狀鏈霉菌突變株的流程見(jiàn)圖1。

    圖1 PCR-Targeting突變lat基因的流程圖Fig.1 Strategy of PCR-Targeting for lat mutation

    1.7 發(fā)酵液中克拉維酸的HPLC分析

    發(fā)酵液于10 000 r/min離心10 min,所得上清液經(jīng)0.45 μm微孔濾膜過(guò)濾,按1∶5的比例與咪唑溶液混勻,30℃反應(yīng)12 min后冷卻到20℃,生成的衍生物采用Shim-pack VP-ODS(150×4.6)C18色譜柱進(jìn)行HPLC 分析[11]。

    2 結(jié)果

    2.1 重組質(zhì)粒的構(gòu)建

    將PCR獲得的lat基因片段用EcoR I和BamH I雙酶切,與經(jīng)同樣雙酶切的大腸桿菌-鏈霉菌穿梭質(zhì)粒載體 pGH112連接,轉(zhuǎn)化 E.coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞,得到重組質(zhì)粒pGH112-lat。

    將pGH112-lat及PCR獲得的安普抗性框電轉(zhuǎn)化至E.coli BW25113/pIJ790中,在 pIJ790中 λRED 的功能啟動(dòng)子的作用下,安普抗性框迅速地與重組質(zhì)粒pGH112-lat發(fā)生同源重組,從而使lat基因中插入了安普抗性框,得到了一個(gè)lat基因被插入突變的重組質(zhì)粒。以該重組質(zhì)粒為模板,以引物3、引物4進(jìn)行PCR驗(yàn)證,結(jié)果見(jiàn)圖2。

    圖2 重組質(zhì)粒pELA的PCR驗(yàn)證Fig.2 PCR verification of recombinant plasmid pELA

    由圖2可以看出,PCR產(chǎn)物大小在1.45kb處(圖中箭頭所指),與安普抗性框大小相符。表明安普抗性框已成功整合到pGH112-lat的lat基因中,將該重組質(zhì)粒命名為pELA。

    將pELA電轉(zhuǎn)至 E.coliDH5α/BT340中,BT340為溫敏型質(zhì)粒,在42℃高溫誘導(dǎo)下質(zhì)粒BT340可以表達(dá)FLP重組酶,F(xiàn)LP重組酶可以識(shí)別質(zhì)粒pELA中安普抗性框兩側(cè)的FRT序列(圖1.a),將FRT之間的抗性基因敲除,原lat基因插入抗性基因的部分僅剩下81bp的scar序列(FRT序列經(jīng)FLP酶切除后剩余的部分序列),所得為lat基因內(nèi)部被敲除的重組質(zhì)粒 pSCAR(圖 1.g),其理論大小應(yīng)為 6.98kb。對(duì)所得轉(zhuǎn)化子進(jìn)行提質(zhì)粒及酶切驗(yàn)證,結(jié)果見(jiàn)圖3,由圖可知電泳結(jié)果與其理論值大小相吻合,所得lat基因內(nèi)部被敲除的重組質(zhì)粒命名為pSCAR。

    2.2 棒狀鏈霉菌基因突變株的驗(yàn)證

    分別以棒狀鏈霉菌出發(fā)菌株、lat基因中插入安普抗性框的突變株及抗性標(biāo)記被敲除的突變株的基因組DNA作為模板,以lat基因上下游引物(引物1,引物2)進(jìn)行PCR驗(yàn)證,結(jié)果見(jiàn)圖4。由圖4可知以抗性標(biāo)記被敲除的突變株基因組為模板的PCR產(chǎn)物大小在400bp-500bp之間,與理論值481bp相一致(安普抗性框兩側(cè)的39bp距l(xiāng)at基因的上下游分別為230bp和170bp,以及81bp的scar序列),而對(duì)照菌株基因組的PCR產(chǎn)物為1.8kb,以lat基因雙交換突變株的基因組DNA作為模板的PCR產(chǎn)物為1.85kb(lat基因中的191~1 600bp被1.45kb的安普抗性基因所取代,因此PCR產(chǎn)物理論大小應(yīng)為1.85kb),證明lat基因中的抗性基因已經(jīng)被敲除,所得的抗性標(biāo)記被敲除的lat基因突變菌株,命名為S.clavuligerus lat::scar。

    圖3 重組質(zhì)粒pSCAR的酶切驗(yàn)證Fig.3 Verification of recombinant plasmid pSCAR

    圖4 突變株的PCR驗(yàn)證Fig.4 PCR verification of the mutants

    2.3 突變菌株克拉維酸產(chǎn)量的測(cè)定

    對(duì)突變菌株lat::scar及出發(fā)菌株進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng),采用HPLC法對(duì)發(fā)酵120 h的發(fā)酵液進(jìn)行克拉維酸含量的測(cè)定,結(jié)果見(jiàn)表1。

    由表1可知,對(duì)同樣的發(fā)酵液測(cè)定其克拉維酸的產(chǎn)量,結(jié)果突變菌株的克拉維酸產(chǎn)量最高可達(dá)166 mg/L,是出發(fā)菌株的2.83倍,表明采用PCR-Targeting的方法對(duì)lat基因進(jìn)行敲除有效提高了棒狀鏈霉菌的克拉維酸產(chǎn)量。

    表1 突變菌株及原始菌株發(fā)酵液中克拉維酸產(chǎn)量的HPLC測(cè)定結(jié)果Table 1 HPLC analysis of clavulanic acid production of lat mutants and the original strain

    3 結(jié)果討論

    本實(shí)驗(yàn)從影響棒狀鏈霉菌克拉維酸代謝的頭霉素C的早期合成基因lat入手,采用PCR-Targeting構(gòu)建了棒狀鏈霉菌的lat基因被敲除的無(wú)抗性標(biāo)記的突變菌株 S.clavuligerus lat::scar。

    采PCR-Targeting構(gòu)建的重組質(zhì)粒由于具有接合轉(zhuǎn)移功能,易于轉(zhuǎn)入棒狀鏈霉菌中,并且由于插入到突變的目標(biāo)基因中的選擇標(biāo)記抗性框兩端帶有FRT序列,可通過(guò)FLP重組酶的識(shí)別作用方便的將最終所得的棒狀鏈霉菌工程菌株中的抗性基因敲除,得到無(wú)抗性的lat基因敲除的突變菌株,所得的不同突變株的克拉維酸產(chǎn)量是原始出發(fā)菌株的1.82~2.83倍。由于最終所得突變株無(wú)抗性標(biāo)記,因此可以重復(fù)的將該方法應(yīng)用于突變棒狀鏈霉菌的其他基因,實(shí)現(xiàn)用一種抗性標(biāo)記突變同一菌株不同基因的目的,從而使突變同一菌株的多條基因時(shí)需要多種選擇性標(biāo)記的問(wèn)題得以解決,為鏈霉菌的基因工程方法改造提供了又一種可行的方法。

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