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    低溫低氧復合應(yīng)激對大鼠肺微血管內(nèi)皮細胞的損傷作用研究*

    2013-03-19 09:07:22張競丹楊丹鳳曹燕卿安玉林劉嘉瀛
    中國應(yīng)用生理學雜志 2013年3期
    關(guān)鍵詞:肺水腫微血管低氧

    張競丹,楊丹鳳,曹燕卿,李 曦,安玉林,劉嘉瀛,汪 海

    (1.中南大學公共衛(wèi)生學院,湖南長沙410078;2.軍事醫(yī)學科學院衛(wèi)生學環(huán)境醫(yī)學研究所,天津300050)

    高原肺水腫(high altitude pulmonary edema,HAPE)是高原病中最具有代表性的一型,比較常見且發(fā)病急驟,病死率較高。關(guān)于誘發(fā)高原肺水腫的機制尚不完全清楚,較為肯定的有血液動力學改變、體液潴留和循環(huán)障礙等[1]。一般認為機體缺氧引起肺小動脈收縮而產(chǎn)生的肺動脈高壓和血管內(nèi)皮細胞損傷是高原肺水腫發(fā)生的基本原因[2]。而寒冷對高原肺水腫發(fā)生的影響的研究甚少。本文采用2×2析因設(shè)計[3],通過觀察低溫和低氧對大鼠肺微血管內(nèi)皮細胞(pulmonary microvascular endothelial cells,PMVECs)在細胞膜通透性和血管活性物質(zhì)變化方面的影響,以及二者之間的協(xié)同作用,以探討低溫和低氧兩個因素在高原肺水腫發(fā)生中所起的作用。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑及儀器

    主要試劑:高糖DMEM培養(yǎng)基、胰蛋白酶、I型膠原酶(美國Gibco公司);胎牛血清(美國 Hyclone公司);內(nèi)皮細胞生長添加劑 ECGS(Upstate公司);肝素(Amresco公司);中性蛋白酶、DMSO、MTT、明膠(美國SIGMA公司);內(nèi)皮細胞鑒定試劑盒(武漢原生代生物醫(yī)藥科技有限公司);TRIZOL、PCR引物(美國 Invitrogen公司);PCR相關(guān)試劑(天根生化科技有限公司);LDH、SOD、MDA、NO檢測試劑盒(南京建成生物工程研究所)。

    主要儀器設(shè)備:三氣培養(yǎng)箱(美國 Thermo公司),顯微攝像系統(tǒng)(成都儀器廠),電子天平、酶標儀(瑞士 Tecan公司),PCR儀(美國 Biorad公司)。

    1.2 PMVECs的培養(yǎng)、傳代及鑒定

    參照相關(guān)文獻[4],選用體重 100~130 g的健康雄性Wistar大鼠,頸椎脫臼法處死后,迅速打開胸腔,左心耳剪一小口,從右心室注入 15~25 ml DMEM培養(yǎng)基,至肺臟發(fā)白,然后將肺取出,0.25%胰蛋白酶37℃消化5min后,pH為7.0的PBS溶液沖洗2遍,剪取2~3mm的邊緣肺組織并剪成1 mm×1 mm×1 mm的小塊,加入2 ml I型膠原酶(2.5 mg/ml)37℃消化 15 min。然后用滴管吸出膠原酶,加入 2 ml中性蛋白酶(10 mg/ml)37℃消化 15 min。待組織塊消化完全后加入5 ml培養(yǎng)基終止消化,2 000 r/min離心 10 min,棄上清。用 3 ml胎牛血清重懸沉淀并吹打使內(nèi)皮細胞聚集,1 000 r/min離心5min,取沉淀細胞加入含有20%血清的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng)。3 d后換液,以后隔天換液,待細胞生長至單層即可傳代。

    棄去細胞培養(yǎng)液,pH為7.0的 PBS溶液洗2遍,加入0.25%胰酶1 ml,顯微鏡下觀察,待細胞間隙逐漸增大,細胞變圓鈍后立即加入1 ml含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中止消化,用吸管將細胞輕輕吹落并充分混勻,細胞懸液移入離心管中,1 000 r/min離心10min。棄上清,以1∶2分裝接種進行傳代。

    采用FITC標記的CD31綠色熒光及植物凝集素結(jié)合實驗進行鑒定。

    1.3 實驗分組

    選取2~7代生長良好的PMVECs用于實驗,用無血清培養(yǎng)基進行細胞同步化2 h,根據(jù)2×2析因設(shè)計進行實驗,按低溫和低氧兩因素的有無,分為四組:正常對照組(37℃、21%O2)、低溫組(28℃、21%O2)、低氧組(37℃、3%O2)、低溫低氧組(28℃、3%O2)。所有實驗組分別在不同條件的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。

    1.4 培養(yǎng)液中LDH活力的測定

    取2~7代生長良好的PMVECs以1×106cells/ml接種至六孔板中,每組設(shè)3個復孔。不同條件下分別培養(yǎng)24 h后,收集各孔細胞培養(yǎng)上清液,按照LDH檢測試劑盒說明書立即檢測。

    1.5 硝酸還原酶法檢測NO

    取2~7代生長良好的PMVECs以2×105cells/well接種至24孔板,每組設(shè)6個復孔,80%融合后,換無血清培養(yǎng)基,四個條件下培養(yǎng)24 h。收集各孔細胞培養(yǎng)上清液,用NO試劑盒(硝酸還原酶法)檢測 NO2-/NO3-的水平。

    1.6 RT-PCR法檢測VEGF、ET-1mRNA表達水平

    取2~7代生長良好的PMVECs以1×106cells/ml接種至六孔板中,每組六孔。每2個孔提取一個mRNA樣本。總RNA的提取嚴格按Trizol試劑說明書操作,紫外分光光度計測定其純度并定量。采用降落 PCR法:(1)94℃ 5min;(2)94℃ 30 s,61℃ 40 s,每次下降0.2℃直至55℃,72℃延伸50 s,共30個循環(huán);(3)72℃ 10min。PCR產(chǎn)物在2%瓊脂糖(TAE緩沖液)凝膠中進行電泳。用凝膠成像系統(tǒng)檢驗各條帶的積分吸光度值,以VEGF、ET-1與β-actin灰度的比值作為RT-PCR的半定量結(jié)果。引物設(shè)計如下:VEGF上游引物 5’-CAGGGAAGACAATGGGATGA-3’,下游引物 5’-AGGAAGTGGGGTAGGGAGAG-3’,擴增基因片段長度為 470 bp;ET-1上游引物5’-CTGCCACCTGGACATCATCT-3’,下 游 引 物 5’-GCTCGGAGTTCTTTGTCTGC-3’,擴增基因片段長度為198 bp;β-actin上游引物 5’-CAGGTCATCACTATCGGCAA-3’,下游引物5’-AAGAAAGGGTGTAAAACGCA-3’,擴增基因片段長度為430 bp。以上引物均由Invitrogen公司合成。

    1.7 統(tǒng)計分析

    實驗數(shù)據(jù)以均數(shù) ±標準差(±s)表示,利用SPSS 20.0軟件進行分析和處理,對測得的數(shù)據(jù)進行完全隨機設(shè)計的方差分析和t檢驗。

    2 結(jié)果

    2.1 大鼠PMVECs形態(tài)學觀察及鑒定

    培養(yǎng)4 h后更換培養(yǎng)液時可見內(nèi)皮細胞團塊聚集貼壁(圖1-A),3 d后內(nèi)皮細胞團塊已經(jīng)擴增成內(nèi)皮細胞島(圖1-B)。生長至5~7 d時細胞可基本融合成片,鋪滿培養(yǎng)皿底。細胞在倒置顯微鏡下,呈典型的內(nèi)皮細胞形態(tài),以多角形和短梭形為主,鋪路石樣鑲嵌狀排列生長(圖1-C)。第3代細胞進行FITC標記的CD31免疫熒光鑒定(圖1-D),綠色熒光即為內(nèi)皮細胞,顯示純度幾乎為100%;植物凝集素(BSI)結(jié)合實驗(圖1-E),呈明亮的綠色熒光,表示所培養(yǎng)的細胞確實為PMVECs(圖1見彩圖頁Ⅰ)。

    Fig. 1 Rat pulmonary microvascular endothelial cell cultures

    2.2 不同因素對PMVECs的LDH活性的影響

    低溫組、低溫低氧組(Complex)的LDH活性與對照組相比均上升,且在統(tǒng)計學上具有顯著差異(P<0.01);與低溫組、低氧組相比,低溫低氧組的 LDH活性升高的更明顯,且具有顯著地統(tǒng)計學差異(P<0.01)。析因方差分析結(jié)果顯示,低溫和低氧對PMVECs細胞的 LDH活性都有影響(P<0.01),而且兩者之間存在協(xié)同作用(P<0.01,表1)。

    2.3 不同因素對PMVECs的NO釋放量的影響

    低溫組、低氧組、低溫低氧組的NO釋放量與對照組相比均有所下降,且在統(tǒng)計學上具有顯著差異(P<0.01)。析因方差分析結(jié)果顯示,低溫和低氧對PMVECs細胞的NO的釋放量都有影響(P<0.01),而且兩因素之間存在協(xié)同作用(P<0.05,表1)。

    Tab.1 LDH leakage and releasing of NO2-/NO3-from PMVECs under the four conditions(±s,n=3)

    Tab.1 LDH leakage and releasing of NO2-/NO3-from PMVECs under the four conditions(±s,n=3)

    LDH:Lactate dehydrogenase;PMVEC:Pulmonary microvascular endothelial cell**P<0.01 vs control group; ##P<0.01 vs hypothermia group;△△P<0.01 vs hypoxia group

    Group LDH viability(U/ml) Releasing of NO2-/NO3-(μmol/L )Control 12.49±2.24 1.237±0.035 Hypothermia 26.42±0.78** 0.653±0.020**Hypoxia 14.10±2.87 0.654±0.040**Complex 48.37±4.42**#?!鳌?0.292±0.040**##△△

    2.4 不同因素對 PMVECs的 VEGF、ET-1 mRNA表達的影響

    2.4.1 不同因素對PMVECs的VEGFmRNA表達的影響 可見低溫組、低氧組、低溫低氧組的VEGF mRNA表達與對照組相比上調(diào),且差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。低溫組與低溫低氧組之間亦有著差異,并有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。

    2.4.2 不同因素對 PMVECs的 ET-1 mRNA表達的影響 可見低溫組、低氧組、低溫低氧組的 ET-1 mRNA表達與對照組相比上調(diào),低溫低氧組與對照組之間的差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01),而低溫組和低氧組與對照組之間沒有顯著的統(tǒng)計學差異。方差分析結(jié)果顯示,低溫和低氧都會使PMVECs細胞的ET-1mRNA表達上調(diào)(P<0.01),而且低溫和低氧之間具有協(xié)同作用(P<0.01,圖 3)。

    Fig.2 Effectsof hypothermia,hypoxia and hypothermia combined with hypoxia on expression of VEGFmRNA in PMVECs(±s,n=3)

    Fig.3 Effectsof hypothermia,hypoxia and hypothermia combined with hypoxia on expression of ET-1 mRNA in PMVECs(±s,n=3)

    3 討論

    隨著西部大開發(fā)和旅游業(yè)的發(fā)展,進入高原地區(qū)人員也越來越多,而高原地區(qū)的低溫低氧的惡劣環(huán)境對人體的健康構(gòu)成了很大的威脅,因此各種高原病也越來越受到重視。在高原病中高原肺水腫是比較具有代表性的一型,高原肺水腫是從低海拔地區(qū)快速進入高海拔地區(qū)后發(fā)生的一種非心源性肺水腫,如不及時救治,很有可能危及生命[5]。多年來科研人員對高原肺水腫的發(fā)病機制做了大量的研究,取得了長足進展和很多成果,但仍有一些不明之處。目前認為血管通透性增加是高原肺水腫發(fā)病過程中的關(guān)鍵環(huán)節(jié),大量水分進入肺泡而來不及重吸收導致肺水腫的發(fā)生。以往研究的重點偏向于低氧對高原肺水腫發(fā)生的影響,但在環(huán)境如此復雜的高原,低溫低氧復合因素的存在是不可忽視的。當機體急進高原環(huán)境的時候,首先呼吸加深加快,肺通氣、潮氣量和每分通氣量瞬時增加,可較安靜時增大上千倍,將有大量低溫低氧氣體進入呼吸道。由此,我們推想在急進高原時發(fā)生的高原肺水腫是否由于呼氣量的增加,導致肺微血管內(nèi)皮細胞瞬間感受大量低溫低氧氣體的傷害性刺激,從而導致血管內(nèi)皮損傷及其功能改變,進而誘發(fā)了高原肺水腫?因此,本實驗通過研究低溫低氧對PMVEC的損傷作用并分析其交互作用,以進一步探討兩因素在高原肺水腫發(fā)生中的作用。

    血管內(nèi)皮細胞是血管內(nèi)壁覆蓋的一層上皮細胞,是循環(huán)血液與血管平滑肌間的機械屏障,對維持血管內(nèi)壁完整性、調(diào)節(jié)血管通透性、防止凝血和血栓形成等有重要作用。其中,血管內(nèi)皮細胞分泌的血管活性物質(zhì)NO、ET-1、VEGF在維持血管張力和內(nèi)皮細胞功能方面有重要作用。以往,研究人員傾向于選擇大血管內(nèi)皮細胞模擬進行心腦血管與其他器官血管疾病機制的研究,但隨著近年來各個器官微血管內(nèi)皮細胞培養(yǎng)方法的成功建立,選擇疾病發(fā)生所在部位的微血管內(nèi)皮細胞能夠更好的模擬發(fā)病過程。肺微血管內(nèi)皮細胞結(jié)構(gòu)和功能的完整性對于維持正常肺功能至關(guān)重要,在病理條件下,肺微血管內(nèi)皮細胞是炎癥反應(yīng)的主要靶細胞。因此,本實驗采用復合酶消化法原代培養(yǎng)的大鼠肺微血管內(nèi)皮細胞(PMVEC)來進行低溫、低氧以及低溫低氧復合因素對其影響的研究,以探討高原肺水腫發(fā)生過程中低溫和低氧所起的作用。

    首先,我們以乳酸脫氫酶(LDH)作為判斷細胞損傷的指標,LDH是一種廣泛存在于細胞漿中的糖酵解酶,當細胞膜受到損傷時,LDH從細胞中釋放到細胞外的量會增加,因此測定培養(yǎng)液中的LDH含量可客觀的衡量細胞的受損程度[6]。本次實驗結(jié)果顯示,低溫、低氧以及低溫低氧復合因素都會使細胞培養(yǎng)液中的LDH活性升高,且與低溫、低氧組相比,低溫低氧復合應(yīng)激組的LDH活性升高的更明顯。而析因方差分析結(jié)果顯示低溫和低氧在對細胞釋放LDH的影響上有協(xié)同作用。說明低溫和低氧在對細胞損傷作用上均有影響,而低溫低氧復合在一起造成的影響更嚴重。

    血管內(nèi)皮細胞的功能是通過其分泌的一系列血管活性物質(zhì)實現(xiàn)的,如一氧化氮(NO)和內(nèi)皮素(ET)參與調(diào)節(jié)血管張力。NO是在血管內(nèi)皮細胞一氧化氮合酶的作用下合成,有內(nèi)皮細胞釋放的血管活性物質(zhì),具有較強的血管舒張作用[7]。ET是具有強大收縮作用的血管活性肽,分為三個亞型:ET-1、ET-2和ET-3,其中ET-1尤為重要,是目前已知的收縮血管作用最強的細胞因子。在生理狀態(tài)下,內(nèi)源性激動劑刺激內(nèi)皮細胞釋放的NO和ET-1相互作用,處于動態(tài)平衡而共同維持正常的血管張力,一旦這種平衡被打破,內(nèi)皮細胞功能就會出現(xiàn)障礙,表現(xiàn)為NO的減少或活性降低,而ET-1的釋放增加。這與本研究的結(jié)果相符,在低溫、低氧、低溫低氧復合條件下,PMVEC細胞釋放的NO大幅度減少而ET-1的mRNA表達則增加,并且低溫和低氧存在協(xié)同作用,低溫低氧復合因素作用于PMVEC細胞比單一因素作用更強。說明在低溫低氧條件的作用下,PMVEC細胞的功能受損,可能導致血管張力調(diào)節(jié)失常,血管收縮作用增強。

    血管內(nèi)皮細胞生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)是一種特異性作用于血管內(nèi)皮細胞的糖蛋白,在促進內(nèi)皮細胞增殖和增加血管通透性方面起著關(guān)鍵作用[8]。有研究表明,在低氧條件下VEGFmRNA的表達上調(diào)[9],VEGF再通過其他的多種途徑改變血管內(nèi)皮細胞間緊密連接蛋白的重新分布,導致毛細血管的通透性增加,可能是高原肺水腫發(fā)生的重要因素之一。另外有研究結(jié)果顯示,急性缺氧大鼠肺組織中的VEGF水平明顯的升高[10]。但關(guān)于低溫對體外細胞或組織中VEGF表達的影響尚無報道。本研究的結(jié)果顯示,在低溫、低氧和低溫低氧復合條件下,PMVEC細胞VEGFmRNA的表達均上調(diào),并且低溫和低氧存在協(xié)同作用。VEGF的異常升高使得血管的通透性增加,大量血漿蛋白漏出,機體超負荷就會誘發(fā)肺水腫的發(fā)生。

    綜上所述,本研究顯示,低溫和低氧兩個環(huán)境因素對PMVEC細胞均會產(chǎn)生損害作用,無論是在內(nèi)皮細胞功能還是細胞通透性方面,并且兩因素的共同作用下比單一因素對PMVEC細胞的損害作用更大,即低溫和低氧在對PMVEC細胞損傷作用上存在協(xié)同作用。PMVEC細胞功能受損是高原肺水腫發(fā)生的關(guān)鍵因素之一。因此,我們有理由相信進入高原地區(qū)時的低溫低氧復合的環(huán)境因素是造成高原肺水腫發(fā)生的重要原因,在防治方面除了及時吸氧外還要注意防寒保暖措施的有利實施。

    【參考文獻】

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