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    吐溫對(duì)不同精粗比底物體外發(fā)酵特性的影響

    2013-02-20 05:54:52林陳
    飼料工業(yè) 2013年7期
    關(guān)鍵詞:氨態(tài)山梨醇吐溫

    ■李 林陳 勇

    (1.新疆科技開發(fā)交流中心,新疆烏魯木齊 830011;2.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)新疆肉乳用草食動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,新疆烏魯木齊 830052)

    如何提高反芻動(dòng)物對(duì)粗飼料的利用對(duì)于提高反芻家畜的生產(chǎn)效率具有重要意義。研究表明,表面活性劑具有提高纖維降解的作用(Chun等,2003;Jo?han等,2003),吐溫是表面活性劑的一種,是通過山梨醇與不同的脂肪酸酯化生成的多聚化合物,主要包括山梨醇酐單月桂酸酯(吐溫20)、山梨醇酐單棕櫚酸酯(吐溫40)、聚氧乙烯山梨醇酐單硬脂酸酯(吐溫60)、聚氧乙烯山梨醇酐單油酸酯(吐溫80)。對(duì)吐溫80的研究表明,它的作用主要表現(xiàn)在促進(jìn)纖維素的水解、改變厭養(yǎng)真菌細(xì)胞膜的流動(dòng)性(Reese等,1969)、促進(jìn)真菌和細(xì)菌的生長(zhǎng)、加快秸稈的發(fā)酵速度(Wang等,2003),這表明,吐溫80可能是一種值得開發(fā)的新型反芻動(dòng)物飼料添加劑,但是目前對(duì)吐溫20、吐溫40、吐溫60的研究還未見報(bào)道,而且這4種吐溫對(duì)不同精粗比發(fā)酵底物的研究也未見報(bào)道。因此,吐溫20、吐溫40、吐溫60對(duì)不同精粗比發(fā)酵底物在人工瘤胃中發(fā)酵的影響有助于認(rèn)識(shí)其對(duì)瘤胃發(fā)酵調(diào)控的作用,闡明其是否具有作為反芻動(dòng)物瘤胃發(fā)酵調(diào)控劑的潛力。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    試驗(yàn)采用隨機(jī)單位組試驗(yàn)設(shè)計(jì)。試驗(yàn)分為3種不同精粗比的發(fā)酵底物,底物組成見表1。

    表1 不同精粗比的發(fā)酵底物組成(g DM/瓶)

    每種發(fā)酵底物分別添加吐溫20、40、60或80,使終濃度為0.2%。對(duì)照組不添加任何吐溫。每種發(fā)酵底物設(shè)置4個(gè)重復(fù)。

    1.2 人工唾液的配制

    人工唾液的配制根據(jù)McDougall(1948)的配方配制,配好后再通入CO2使溶液澄清備用。

    1.3 綿羊混合瘤胃液的制備

    選用裝有永久性瘤胃瘺管的羯羊4只,自由采食玉米秸稈,補(bǔ)飼精料200 g/(d·只)。于晨飼前用過瘤胃瘺管采集瘤胃內(nèi)容物500 g/只左右,瘤胃液用四層紗布過濾于保溫瓶中,混勻,在39℃下運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室備用。

    1.4 體外培養(yǎng)方法與樣品采集

    根據(jù)表1準(zhǔn)確稱取發(fā)酵底物于125 ml培養(yǎng)瓶中,再量取50 ml過綿羊混合瘤胃液和50 ml人工唾液。輕輕混勻后,用橡膠塞密封培養(yǎng)瓶,置39℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。體外培養(yǎng)采用許琴(2002)的方法,分別在培養(yǎng)后的3、6、9 h搖勻測(cè)pH值,并采樣10 ml,于-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.5 測(cè)定指標(biāo)及方法

    取出于-20℃保存的樣品,室溫解凍后用于測(cè)定還原糖、氨態(tài)氮、微生物蛋白。還原糖測(cè)定采用吳遜等(2001)的方法、氨態(tài)氮測(cè)定采用馮宗慈等(1993)的方法,微生物蛋白測(cè)定采用Makkar等(1981)的方法。

    1.6 數(shù)據(jù)處理

    試驗(yàn)數(shù)據(jù)均以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示。統(tǒng)計(jì)分析采用DPS5.02軟件(唐啟義等,2002)中的“隨機(jī)區(qū)組設(shè)計(jì)分析”進(jìn)行。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 吐溫對(duì)不同時(shí)間點(diǎn)培養(yǎng)液中pH值的影響(見表2)

    表2 吐溫對(duì)不同時(shí)間點(diǎn)培養(yǎng)液中pH值的影響

    隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng),各組的pH值均呈現(xiàn)不同程度的下降。當(dāng)發(fā)酵底物的精粗比為15∶85和30∶70時(shí),添加吐溫對(duì)發(fā)酵后的3 h和6 h均無顯著影響,在發(fā)酵后的9 h,吐溫20組的pH值顯著高于對(duì)照組,吐溫40組僅當(dāng)精粗比為15∶85時(shí)顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。但3個(gè)吐溫組間無顯著差異。當(dāng)精粗比為45∶55時(shí),添加吐溫對(duì)發(fā)酵后3、6、9 h的pH值均無顯著影響。

    2.2 吐溫對(duì)不同時(shí)間點(diǎn)培養(yǎng)液中還原糖濃度的影響(見表3)

    表3 吐溫對(duì)不同時(shí)間點(diǎn)還原糖濃度的影響(μg/ml)

    當(dāng)精粗比為15∶85時(shí),添加吐溫對(duì)培養(yǎng)后3 h的還原糖水平無顯著影響,在培養(yǎng)后6 h時(shí)吐溫40組的還原糖水平最高,顯著高于對(duì)照組、吐溫20組和吐溫60組(P<0.05),在培養(yǎng)后9 h時(shí),添加吐溫組的還原糖水平均較對(duì)照組有不同程度的下降,其中吐溫80組的還原糖水平顯著低于對(duì)照組和吐溫60組(P<0.05)。當(dāng)精粗比為30∶70時(shí),吐溫60組的還原糖水平在培養(yǎng)后的3 h和6 h均最高,并顯著高于對(duì)照組和吐溫20組(P<0.05)。在培養(yǎng)后9 h時(shí),吐溫40組的還原糖水平最高,并顯著高于吐溫20組(P<0.05)。當(dāng)精粗比為45∶55時(shí),對(duì)照組的還原糖水平在培養(yǎng)后的3 h和6 h均最高,其中3 h時(shí),對(duì)照組顯著高于吐溫20組(P<0.05)。在培養(yǎng)后6 h和9 h時(shí),各組間還原糖水平無顯著差異。由此可見,吐溫40最高可提高還原糖濃度為45.68%(P<0.05,精粗比1中的 6 h),吐溫60最高可提高25.65%(P<0.05,精粗比2中的3 h),吐溫80最高可提高28.70%(精粗比1的6 h),而吐溫20對(duì)各時(shí)間點(diǎn)還原糖濃度均無顯著影響。

    2.3 吐溫在各時(shí)間點(diǎn)對(duì)氨態(tài)氮濃度的影響(見表4)

    表4 吐溫對(duì)不同時(shí)間點(diǎn)氨態(tài)氮濃度的影響(mg/100 ml)

    當(dāng)發(fā)酵底物的精粗比為15∶85時(shí),在發(fā)酵后的3 h和6 h添加吐溫均增加培養(yǎng)液中的氨態(tài)氮水平,其中吐溫80組和吐溫20組的氨態(tài)氮水平分別在3 h和6 h顯著高于對(duì)照組(P<0.05),在9 h時(shí),各組間的氨態(tài)氮水平無顯著差異。當(dāng)精粗比為30∶70時(shí),在培養(yǎng)后的3 h和 6 h時(shí),各組間的氨態(tài)氮均無顯著性差異,在9 h時(shí),添加吐溫組均高于對(duì)照組,其中吐溫20組顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。當(dāng)精粗比為45∶55時(shí),在培養(yǎng)后3 h時(shí),各組間的氨態(tài)氮也無顯著差異,但培養(yǎng)后6 h時(shí),吐溫20組、吐溫60組和吐溫80組的氨態(tài)氮水平均顯著高于對(duì)照組(P<0.05),到培養(yǎng)后9 h時(shí),吐溫80組的氨態(tài)氮水平顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。綜上,吐溫20最高可提高氨態(tài)氮濃度為16.05%(P<0.05,精粗比1中的6 h),吐溫40最高可提高8.15%(精粗比3的9 h),吐溫60最高可提高7.02%(精粗比1的3 h),吐溫80最高可提高11.20%(P<0.05,精粗比1的3 h)。

    2.4 吐溫在各時(shí)間點(diǎn)對(duì)微生物蛋白水平的影響(見表5)

    表5 吐溫對(duì)不同時(shí)間點(diǎn)微生物蛋白水平的影響(mg/ml)

    隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),微生物蛋白水平總體呈增加趨勢(shì)。在培養(yǎng)初期,無論底物精粗比如何,添加吐溫對(duì)微生物蛋白水平均無顯著影響。當(dāng)精粗比為15∶85和30∶70時(shí),培養(yǎng)后6 h的微生物蛋白水平均以對(duì)照組最高,并分別顯著高于吐溫20組以及吐溫80組(P<0.05)。在培養(yǎng)9 h時(shí),添加吐溫對(duì)精粗比為15∶85的底物產(chǎn)微生物無顯著影響;當(dāng)精粗比為30∶70時(shí),吐溫80組顯著高于吐溫60組,其它各組間無顯著差異;當(dāng)精粗比為45∶55時(shí),吐溫60組顯著低于對(duì)照組和吐溫80組(P<0.05)。

    3 討論

    研究發(fā)現(xiàn),吐溫80能促進(jìn)瘤胃厭氧真菌和部分細(xì)菌的生長(zhǎng)、刺激纖維素降解酶的釋放、抑制酶活性下降、增加酶活性、促進(jìn)底物與酶的附著(Re?ese,196;Chun等,2004;Johan等,2004)。在體外培養(yǎng)條件下,吐溫80和吐溫20對(duì)棉花秸稈的降解具有顯著的促進(jìn)作用(陳勇等,2005、2006),并且其最佳添加水平為0.2%。有關(guān)吐溫在不同精粗比條件下對(duì)體外瘤胃發(fā)酵的影響還未見報(bào)道。

    瘤胃pH值是瘤胃發(fā)酵的重要指標(biāo),對(duì)于粗飼料的消化有重要影響。一般情況下,瘤胃pH值為6.2~6.8。纖維分解菌對(duì)于pH值的變化比較敏感,當(dāng)pH值較低時(shí),其活性會(huì)受到影響,使粗飼料的消化率下降,瘤胃pH值的降低還使瘤胃微生物區(qū)系受到影響,從而抑制纖維素的分解(刁其玉等,2004)。本試驗(yàn)中,培養(yǎng)基中的pH值水平在6.4~6.8之間,均處于有利于纖維降解的范圍內(nèi)。隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng),各組的pH值均呈現(xiàn)不同程度的下降。在發(fā)酵后期,吐溫20和吐溫40在低精粗比條件下有增加pH值的作用。

    Lee等(2003)發(fā)現(xiàn),添加吐溫80顯著提高胞外羧甲基纖維素酶(CMCase)和木聚糖酶活力(P<0.01),顯著降低胞內(nèi)羧甲基纖維素酶和木聚糖酶活力(P<0.01),其它胞外酶如蛋白酶、淀粉酶和大麥葡聚糖酶活性也顯著提高(P<0.01)。但是,Hris?tov等(2000)報(bào)道,在動(dòng)物試驗(yàn)中吐溫對(duì)瘤胃羧甲基纖維素酶、木聚糖酶和淀粉酶沒有顯著影響(P>0.05)。當(dāng)瘤胃中羧甲基纖維素酶和木聚糖酶活力提高后,必然導(dǎo)致培養(yǎng)液中還原糖水平的升高。在本試驗(yàn)中雖然沒有對(duì)培養(yǎng)基中的酶活力進(jìn)行研究,但是從還原糖水平看,吐溫40和吐溫60在培養(yǎng)前期可增加還原糖水平,表明這兩種吐溫對(duì)酶活力具有增強(qiáng)作用。有關(guān)吐溫40和吐溫60對(duì)瘤胃發(fā)酵的影響還鮮見報(bào)道。在本研究中吐溫對(duì)體外發(fā)酵中還原糖產(chǎn)生不顯著,這與已有的報(bào)道不同。這種差異可能是由于添加劑的劑量、孵育時(shí)間和動(dòng)物種類不同等原因造成的。

    在本試驗(yàn)中,添加吐溫有增加氨態(tài)氮濃度的作用。這與Lee等(2003)的報(bào)道相似。氨態(tài)氮濃度的升高預(yù)示著灌注非離子表面活性劑能使更多的植物性蛋白在瘤胃內(nèi)降解。這可能與吐溫可增加瘤胃蛋白酶活力有關(guān)。

    研究發(fā)現(xiàn),吐溫80顯著刺激非纖維菌菌株的生長(zhǎng)速度,同時(shí)最有效濃度為0.05%。吐溫80也可促進(jìn)纖維分解菌的生長(zhǎng),但0.1%的效果優(yōu)于0.05%的效果。因此,添加吐溫80刺激非纖維分解菌生長(zhǎng)的效果要好于纖維分解菌(Lee等,2003)。在本研究中,從微生物蛋白水平看,添加吐溫均沒有表現(xiàn)出促進(jìn)瘤胃微生物生長(zhǎng),相反在大多數(shù)時(shí)間里,添加吐溫組的微生物蛋白水平均低于對(duì)照組,這可能與添加水平有關(guān)。吐溫作為表面活性劑,具有增強(qiáng)微生物細(xì)胞膜流動(dòng)性的作用,在高濃度條件下,可破壞細(xì)胞膜的完整性,導(dǎo)致微生物生長(zhǎng)受阻。

    4 結(jié)論

    在不同精粗比底物條件下,添加吐溫的作用不同。吐溫通過提高瘤胃氨態(tài)氮和還原糖水平調(diào)節(jié)瘤胃發(fā)酵。

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