周廣舟,徐蘇麗,譚曉榮,陳小兵
2.鄭州大學附屬腫瘤醫(yī)院,鄭州 450008
環(huán)介導等溫擴增技術(Loop-mediated isothermal amplification,LAMP)是日本學者 Notmomi等[1]于2000年首先報道的一種新的核酸擴增技術。LAMP技術采用能特異識別靶序列上6個位點的4條引物及1種具有鏈置換活性的DNA聚合酶,在恒溫條件(一般為60~65℃左右)下,1 h內其擴增效率可達到109~1010個數(shù)量級。區(qū)別于傳統(tǒng)的PCR方法,LAMP技術不需要昂貴的PCR儀器,特異性強、等溫靈敏、操作簡單、擴增反應時間較短且易于觀察結果,利于在基層實驗室推廣使用等優(yōu)點,近來在各類醫(yī)學病原包括病毒、細菌、真菌、支原體和寄生蟲等傳染性疾病的檢測等領域得到了廣泛的應用,在疫病診斷領域顯示了廣闊的應用前景。目前在醫(yī)學(食品)微生物和寄生蟲等領域的檢測鑒定等方面已有較多的總結,如對日本血吸蟲、副溶血弧菌等的檢測[2-3]。本文主要就在臨床和科研實踐中利用基于LAMP的技術對各類醫(yī)學病毒的檢測及鑒定工作的報道做一綜述。
2.1 肝炎病毒 常見的如乙肝病毒和丙型肝炎病毒等均為常見的RNA病毒,可以通過血液和母嬰傳播等方式感染人而造成肝炎流行。臨床上目前對這類病毒的針對往往采取傳統(tǒng)的ELISA方法和套式RT-PCR等方法進行檢測,但往往由于低特異性和易交叉污染,結果往往并不可靠,造成臨床上的錯檢或漏檢。李啟明等[4]利用Reverse Transcription-LAMP(RT-LAMP)技術對60份經 Real-time PCR或RT-PCR驗證陽性的血清樣品進行檢測,陽性符合率達98%,檢測靈敏度可達到10個拷貝的RNA分子。Lan等[5]對68個包括糞便、血清、肝臟和膽汁等樣品內的HEV病毒進行檢測,檢出限為0.045 fg,比巢式(nest)RT-PCR的靈敏度高100倍。近來,不同研究小組在對肝炎病毒的RT-LAMP檢測上做了更多的探索和實踐,使之檢測更靈敏快速[6-7]。
2.2 流感病毒 流感是人類目前最重要的病毒性疾病之一,每年幾乎全世界10%-20%的人口都會遭受到季節(jié)性流感的侵襲并造成大約50~100萬人的死亡,帶來巨大的經濟負擔。有效的流感病毒檢測和疫苗接種是迅速建立人群免疫屏障、阻斷流感大流行蔓延、減少和降低其危害性的有效手段。針對2009年大流行的H1N1流感病毒血凝素(HA)基因,Kubo等[8]建立了 HA基因的 RT-LAMP檢測方法,檢測限與Taq Man RT-PCR類似,達到目標RNA的10個拷貝/反應體系,260個樣品中RTLAMP檢測到136個陽性,靈敏度和特異性分別達到97.8%和100%。最近,Hatano等[9]對 H1N1流感病毒的RT-LAMP檢測技術進行了新的改進和嘗試,使之操作更方便,結果更精確。除此之外,一些科學家還相繼建立了H5N1、H3型豬流感病毒等多株人獸(鳥)共感染病毒的RT-LMAP檢測技術[10-11],大大推動了對這些病原的鑒定及致病機制研究的進程。
2.3 艾滋病毒 Curtis等[12]設計了針對 HIV-1病毒的6個蛋白酶和p24基因的特異性引物,利用RT-LAMP技術直接檢測細胞內和血清樣品里的HIV-1病毒,結果顯示在30 min內就可實現(xiàn)對HIV-1 DNA和RNA的檢測,在60 min時間內每個反應體系的檢測限為10和100個拷貝,并且不需要核酸提取步驟,節(jié)約了整個檢測時間。最近,該研究小組又建立了針對HIV-1特異性序列片段檢測的 RT-LAMP 技 術[13]。Hosaka等[14]也 建 立 了 類似的針對HIV-1病毒pol整合酶基因的快速一步RT-LAMP檢測技術。
2.4 狂犬病毒 狂犬病是迄今為止人類唯一病死率高達100%的急性傳染病,由狂犬病病毒引發(fā)的人與溫血動物的一種急性、致死性的自然疫源性疾病。但由于狂犬病毒往往是較長的潛伏感染狀態(tài),易造成檢測不及時而未采取治療措施引起死亡。國外對狂犬病毒的RT-LAMP檢測鑒定工作在2009年就已開始有報道[15-16]。在國內,許丹等[17]針對狂犬病毒I型核蛋白(N)保守區(qū)設計了4條識別靶序列上6個位點的特異性引物,建立了該病毒的LAMP檢測方法,結果顯示,病毒基因的最低檢出量可達到10個拷貝數(shù),反應特異性較強,已用于狂犬病毒的實驗室檢測和臨床初步診斷。最近,黃元等[18]就狂犬病毒大轉錄酶蛋白基因(L)的高度保守區(qū)設計引物,同樣成功建立了該病毒的快速一步式RT-LAMP檢測方法,靈敏度比RT-nest PCR高10倍以上,取得了較好的檢測效果。
2.5 單純皰疹病毒 單純皰疹病毒(HSV)是一類能引起皮膚病和性病的常見病原體,常見的有I型和II型兩個血清型,其中I型HSV在成年人血清中陽性率高達85%以上,感染后引起人的皰疹性角膜炎、口唇皰疹、皮膚皰疹等。常用的血清學檢測、病毒分離培養(yǎng)或PCR檢測方法往往費時繁瑣或需昂貴的儀器而不能大規(guī)模推廣,限制了這些技術的應用。周支香等[19]提取HSV-2病毒基因組后,設計了4條針對病毒糖蛋白基因的LAMP引物,建立了檢測HSV病毒的LAMP技術,檢測HSV-2的敏感性可達到0.01 ng/μL。彭丁晉等[20]利用 LAMP技術檢測了3例具HSV-1感染的臨床樣本,同樣顯示了較好的檢測效果。
2.6 冠狀病毒 最具代表性的例子是已建立的針對的嚴重急性呼吸綜合征病毒SARS-Co V的LAMP檢測技術。Hong等[21]在2003年SARS流行期間搜集的49個病人的口漱液、咽拭子和鼻咽拭子樣品中,RT-LAMP的檢測限為0.01PFU,靈敏度比傳統(tǒng)的RT-PCR高100倍,并且大多在不到1 h內完成檢測,最快的只有11 min。此后,Poon等[22]還建立了新的 Real-time LAMP 技術來 檢 測SARS-Co V,比較了傳統(tǒng)的熒光定量PCR技術同LAMP技術的檢測靈敏度差異,結果顯示并沒有明顯的分別,提示LAMP技術可以做為一個實用簡便的檢測手段進行大規(guī)模應用。目前,其它一些冠狀病毒的LAMP檢測方法也相繼建立起來[23-24]。
2.7 登革病毒 登革病毒(Dengue virus,DEN)是登革熱、登革出血熱/登革休克綜合征(DHF/DSS)的病原體,廣泛流行于全球熱帶及亞熱帶的國家和地區(qū),已造成這些地區(qū)嚴重的公共衛(wèi)生問題。為了快速檢測和區(qū)分登革病毒血清型,Parida等[25]建立了一步法實時定量血清型特異性RT-LAMP檢測方法,分別用實時濁度儀監(jiān)測、瓊脂糖凝膠電泳、自然光和紫外光下肉眼觀察SYBR GreenI顏色變化判定結果。對總共63例臨床診斷病人和疑似病例血清樣本的檢測中發(fā)現(xiàn),RT-LAMP的檢測靈敏度為100%,同比RT-PCR和病毒培養(yǎng)法檢測提高13%和19%,而且特異性也較高,能夠確定不同血清型的登革病毒。
2.8 乙腦病毒 流行性乙型腦炎病毒,簡稱為乙腦病毒,本病毒首先于1953年在日本從患者腦組織中分離獲得,又稱為日本乙型腦炎(Japanese encephalitis virus,JBE)屬于蟲媒病毒黃病毒科黃病毒屬,蚊是其傳播的媒介和貯存宿主。不同的研究小組早在2006年就分別獨立地建立了針對JEV病毒的RT-LAMP檢測方法,并顯示有較好的診斷效果[26-27]。最近,Chen等[28]就 RT-LAMP 診斷方法同傳統(tǒng)RT-PCR和熒光定量PCR檢測方法進行了比較分析。結果顯示RT-LAMP的檢測靈敏度同熒光定量PCR相當,但是傳統(tǒng)RT-PCR的10倍,檢測限達到24拷貝/微升。交叉檢測也表明RTLAMP技術的特異性也較高,同登革2型病毒、狂犬病毒、諾如病毒、星狀病毒和人腸道71型病毒均無交叉反應,表明RT-LAMP技術可以作為臨床分子水平檢測的重要工具用于乙腦病毒的診斷。而Perera等[29]利用 RT-LAMP技術篩查攜帶病毒的蚊蟲也取得了很好的效果,以整個蚊體為模板在30min內就可以快速簡便地鑒定是否為攜毒蚊。
2.9 其它病毒 近年來,學者們對其它的一些不常見的醫(yī)學病毒也陸續(xù)建立了類似的LAMP檢測方法用于病毒的鑒定和病例的診斷,如風疹病毒[30]、諾如病毒[31]、嗜 T 淋巴細胞病毒(HTLV)[32]、柯薩奇病毒[33]等,在特異性和靈敏度上都具很高的水平。
當前,諸如SARS、人感染高致病性禽流感、新型H1N1流感等一些新發(fā)病毒性傳染病疫情不斷出現(xiàn),對社會公眾健康造成了嚴重損害。對這些影響大的傳染病疫情,快速、準確地做出病原學診斷是及時有效控制疫情,將損害降到最低限度的保證。作為一種快速、簡便、靈敏、特異,無需貴重檢測設備而易普及的檢測技術,LAMP診斷方法將在很大程度上發(fā)揮重要的作用。它的整個過程均在恒溫條件下進行,避免了常規(guī)PCR對于溫度循環(huán)的特殊要求所帶來的各種不便。雖然對于某些病毒的檢驗,LAMP的靈敏度和特異性尚未超越熒光定量PCR等方法,但在很大程度上LAMP已經符合了臨床所需的要求。
但LAMP檢測技術同樣存在一些不足,主要體現(xiàn)在:LAMP檢測陽性反應呈現(xiàn)梯度條帶,不像PCR呈現(xiàn)單帶,一旦產生非特異性擴增則不易鑒別。此外,由于反應靈敏度高,外界物質的介入很容易造成假陽性,尤其要防止電泳過程中氣溶膠的污染。但是,隨著LAMP技術的不斷發(fā)展完善,必將在檢驗檢疫乃至整個生物學檢測領域占有一席之地,特別是在一些基層實驗室、床邊檢測和流行病學調查等領域具有廣闊的應用前景。
[1]Notomi T,Okayama H,Masubuchi H,et al.Loop-mediated isothermal amplication of DNA[J].Nucleic Acids Res,2000,28:e63.DOI:10.1093/nar/28.12.e63
[2]Wang C,Yu CY,Ji MJ,et al.Loop-mediated isothermal amplification assay ofSchistosomajaponicaDNA[J].J Pathog Biol,2010,5(10):749-753.(in Chinese)
王岑,余傳信,季旻珺,等.環(huán)介導同溫擴增檢測全血日本血吸蟲DNA的研究[J].中國病原生物學雜志,2010,5(10):749-753.
[3]Yamazaki W,Kumeda Y,Uemura R,et al.Evaluation of a loop-mediated isothermal amplification assay for rapid and simple detection ofVibrioparahaemolyticusin naturally contaminated seafood samples[J].Food Microbiol,2011,28:1238-1241.DOI:10.1016/j.fm.2011.04.007
[4]Li QM,Ma XJ,Zhou R,et al.Detection of HCV gene by reverse transcription loop-mediated isothermal amplification method[J].Chin J Virol,2006,22(5):334-338.(in Chinese)
李啟明,馬學軍,周蕊,等.環(huán)介導逆轉錄等溫擴增技術(RTLAMP)在丙型感染病毒基因檢測中的應用[J].病毒學報,2006,22(5):334-338.
[5]Lan X,Yang B,Li BY,et al.Reverse transcription-loop-mediated isothermal amplification assay for rapid detection of hepatitis E virus[J].J Clin Microbiol,2009,47:2304-2306.DOI:10.1128/JCM.00498-09
[6]Cai T,Lou G,Yang J,et al.Development and evaluation of real-time loop-mediated isothemal amplification for hepatitis B virus DNA quantification:a new tool for HBV management[J].J Clin Virol,2008,41:270-276.DOI:10.1016/j.jcv.2007.11.025
[7]Yang J,F(xiàn)ang MX,Li J,et al.Detection of hepatitis C virus by an improved loop-mediated isothermal amplification assay[J].Arch Vriol,2011,156:1387-1396.DOI:10.1007/s00705-011-1001-4
[8]Kubo T,Agoh M,Mai LQ,et al.Development of a reverse transcription-loop-mediated isothermal amplification assay for detection of pandemic(H1N1)2009 virus as a novel molecular method for diagnosis of pandemic influenza in resource-limited seetings[J].J Clin Microbiol,2010,48:728-735.DOI:10.1128/JCM.01481-09
[9]Hatano B,Goto M,F(xiàn)ukumoto H,et al.Mobile and accurate detection system for infection by the 2009 pandemic influenza A(H1N1)virus with a pocket-warmer reverse-transcriptase loopmediated isothermal amplification[J].J Med Virol,2011,83:568-573.DOI:10.1002/jmv.22031
[10]Gu H,Qi X,Li X,et al.Rapid and specific detection of H3 swine influenza virus using reverse transcription loop-mediated isothermal amplification method[J].J Appl Microbiol,2010,108:1145-1154.DOI:10.1111/j.1365-2672.2009.04520.x
[11]Li QM,Ma XJ,Gao HC,et al.Evaluation of reverse tran-scription loop-mediated isothermal amplification for detection of avian influenza A H5N1 virus[J].Chin J Virol,2008,24:178-184.
[12]Curtis KA,Rudolph DL,Owen SM.Rapid detection of HIV-1 by reverse-transcription,loop-mediated isothermal amplication(RT-PCR)[J].J Virol Methods,2008,151:264-270.DOI:10.1016/j.jviromet.2008.04.011
[13]Curtis KA,Rudolph S,Owen SM.Sequence-specific detection method for reverse transcription,loop-mediated isothermal amplification of HIV-1[J].J Med Virol,2009,81:966-972.DOI:10.1002/jmv.21490
[14]Hosaka N,Ndembi N,Ishizaki A,et al.Rapid detection of human immunodeficiency virus type 1 group M by a reverse transcription-loop-mediated isothermal amplification assay[J].J Virol Methods,2009,157:195-199.DOI:10.1016/j.jviromet.2009.01.004
[15]Boldbaatar B,Inoue S,Sugiura N,et al.Rapid detection of rabies virus by reverse transcription loop-mediated isothermal amplification[J].Jpn J Infect Dis,2009,62:187-191.
[16]Saitou Y,Kobayashi Y,Hirano S,et al.A method for simultaneous detection and identification of Brazilian dog-and vampire bat-related rabies virus by reverse transcription loop-mediated isothermal amplification assay[J].J Virol Methods,2010,168:13-17.DOI:10.1016/j.jviromet
[17]Xun D,Yang ST,F(xiàn)eng N,et al.Establishment and application of loop-mediated isothermal amplication for rabies virus[J].Chin J Vet Sci,2010,30(11):1476-1479.(in Chinese)
許丹,楊松濤,馮娜,等.狂犬病病毒LAMP檢測方法的建立及初步應用[J].中國獸醫(yī)學報,2010,30(11):1476-1479.
[18]Huang Y,Xiang H,Chen J,et al.Reverse transcription-loopmediated isothermal amplification method for rapid detection of rabies virus[J].Chin J Zoonoses,2011,27(2):108-111.(in Chinese)
黃元,向華,陳晶,等.狂犬病病毒核酸RT-LAMP檢測方法的建立[J].中國人獸共患病學報,2011,27(2):108-111.
[19]Zhou ZX,Jiang H,Wang JP,et al.Detection of herpes simple virus type 2 DNA with loop-mediated isothermal amplification assay[J].J Univ South China(Med ed),2010,38(2):180-182.(in Chinese)
周支香,姜華,王際平,等.LAMP技術檢測單純皰疹病毒-2型的初步應用[J].南華大學學報(醫(yī)學版),2010,38(2):180-182.
[20]Peng DJ,Luo YF,Zhou ZX,et al.Detection of herpes simplex virus type 2 DNA with a loop-mediated isothermal amplification assay[J].J Pathog Biol,2011,6(2):101-103.(in Chinese)
彭丁晉,羅永富,周支香,等.環(huán)介導等溫擴增技術檢測單純皰疹病毒I型的應用[J].中國病原生物學雜志,2011,6(2):101-103.
[21]Hong TC,Mai QL,Cuong DV,et al.Development and evaluation of a novel loop-mediated isothermal amplification method for rapid detection of severe acute respiratory syndrome coronavirus[J].J Clin Microbiol,2004,42:1956-1961.DOI:10.1128/JCM.42.5.1956-1961.2004
[22]Poon LL,Wong BW,Chan KH,et al.Evaluation of real-time reverse transcriptase PCR and real-time loop-mediated amplification assays for severe acute respiratory syndrome coronavirus detection[J].J Clin Microbiol,2005,43:3457-3459.DOI:10.1128/JCM.43.7.3457-3459.2005
[23]Li P,Ren X.Reverse transcription loop-mediated isothermal amplification for rapid detection of transmissible gastroenteritis virus[J].Curr Microbiol,2011,62:1074-1080.DOI:10.1007/s00284-010-9825-9
[24]Pyrc K,Milewska A,Potempa J.Development of loop-mediated isothermal amplification assay for detection of human coronavirus-NL63[J].J Virol Methods,2011,175:133-136.DOI:10.1016/j.jviromet.2011.04.024
[25]Parida M,Horioke K,Ishida H,et al.Rapid detection and differentiation of dengue virus serotypes by a real-time reverse transcription-loop-mediated isothermal amplification assay[J].J Clin Microbiol,2005,43:2895-2903.DOI:10.1128/JCM.43.6.2895-2903.2005
[26]Toriniwa H,Komiya T.Rapid detection and quantification of Japanese encephalitis virus by real-time reverse transcription loop-mediated isothermal amplification[J].Microbiol Immunol,2006,50:379-387.
[27]Parida MM,Santhosh SR,Dash PK,et al.Development and evaluation of reverse transcription-loop-mediated isothermal amplification assay for rapid and real-time detection of Japanese encephalitis virus[J].J Clin Microbiol,2006,44:4172-4178.DOI:10.1128/JCM.01487-06
[28]Chen Z,Liao Y,Ke X,et al.Comparison of reverse transcription loop-mediated isothermal amplification,conventional PCR and real-time PCR assays for Japanese encephalitis virus[J].Mol Biol Rep,2011,38:4063-4070.DOI:10.1007/s11033-010-0525-0
[29]Perera N,Aonuma H,Yoshimura A,et al.Rapid identification of virus-carrying mosquitoes using reverse transcription-loopmediated isothermal amplification[J].J Virol Methods,2009,156:32-36.DOI:10.1016/j.jviromet.2008.10.023
[30]Mori N,Motegi Y,Shimamura Y,et al.Development of a new method for diagnosis of Rubella virus infection by reverse transcription-loop-mediated isothermal amplification[J].J Clin Microbiol,2006,44:3268-3273.DOI:10.1128/JCM.00803-06
[31]Fukuda S,Takao S,Kuwayama M,et al.Rapid detection of Norovirus from fecal specimens by real-time reverse transcription-loop-mediated isothermal amplification assay[J].J Clin Microbiol,2006,44:1376-1381.DOI:10.1128/JCM.44.4.1376-1381.2006
[32]Bai ST,Zhang MY,Wei TZ,et al.Detection of human T-cell lymphotropic virus with loop-mediated isothermal amplification[J].Chin J Blood Transfusion,2008,21(7):516-518.(in Chinese)
白松濤,張夢妍,魏天佐,等.人類嗜T淋巴細胞病毒LAMP檢測方法的應用研究[J].中國輸血雜志,2008,21(7):516-518.
[33]Nie K,Zhang K,Luo L,et al.Visual detection of human enterovirus 71 subgenotype C4 and Coxsackievirus A16 by reverse transcription loop-mediated isothermal amplification with the hydroxynaphthol blue dye[J].J Virol Methods,2011,175:283-286.DOI:10.1016/j.jviromet.2011.05.020